Artykuł metodologiczny

Infekcja stawu mostkowo-obojczykowego spowodowana gronkowcem capitis

DOI:

10.3791/70566

⸱

8 maja 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1The Second School of Clinical Medicine, Zhejiang Chinese Medical University, 2Department of Orthopaedic Surgery, Zhejiang Hospital, 3The Second Affiliated Hospital of Zhejiang Chinese Medical University, Xinhua Hospital, 4Department of Orthopedics, No.903 Hospital of PLA Joint Logistic Support Force, 5Department of Orthopedics, The First Affiliated Hospital, Zhejiang University

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Przedstawiamy tutaj przypadek zakażenia stawu mostkowo-obojczykowego z zapaleniem kości szpikowej spowodowanym Staphylococcus capitis. Pacjentka przeszła chirurgiczne oczyszczanie i drenaż, a następnie 10 tygodni antybiotyków, co zakończyło się całkowitym ustąpieniem objawów i satysfakcjonującym gojeniem rany.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

74-letnia pacjentka pojawiła się z "kołatáním serca i uciskiem w klatce piersiowej przez pół dnia." Objawy pojawiły się nagle podczas jazdy windą, towarzyszyły im duszności, ale bez zawrotów głowy i bólu w klatce piersiowej. Pacjent miał 5-letnią historię cukrzycy, leczoną metforminą. 20 lat temu przeszła prawą mastektomię z powodu raka piersi. Po przyjęciu jej parametry życiowe były stabilne. Badanie fizykalne wykazało wrażliwą, opuchniętą masę po prawej stronie szyi, miękką w strukturze, z gnojowym odpływem. Badania krwi wykazały podwyższony poziom białka C-reaktywnego (CRP) (51,47 mg/L). Badania obrazowe (tomografia komputerowa [TK], ultrasonografia, rezonans magnetyczny [MRI]) wykazały masę tkanek miękkich w prawym obszarze obojczyka, z możliwym zapaleniem szpiku i szpiku. U pacjenta zdiagnozowano zakażenie skóry stawu mostkowo-obojczykowego po prawej stronie, skomplikowane przez zapalenie kości i szpiku.

Przeprowadzono chirurgiczne oczyszczanie i drenaż chirurgiczny, a badania patologiczne potwierdziły zakażenie Staphylococcus capitis . Pacjent był leczony 10-tygodniową kuracją antybiotykową, początkowo dożylnym ertapenemem, a później przeszedł na doustny linezolid. Przez cały czas leczenia nie zaobserwowano żadnych działań niepożądanych. Miesiąc później obserwacje kontrolne wskazują, że rana chirurgiczna pacjenta goi się dobrze. Objawy pacjenta znacznie się poprawiły, całkowicie ustąpiły kołatania, ucisk w klatce piersiowej oraz duszności. Leczenie było dobrze tolerowane. Niniejszy raport przypadku ma na celu zwiększenie świadomości lekarzy na temat zakażeń stawów mostkowo-obojczykowych wywołanych przez Staphylococcus capitis oraz podkreślenie znaczenia wczesnej diagnozy i indywidualnych strategii leczenia.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zakażenie stawu mostkowo-obojczykowego (SCJI) to rzadka forma septycznego zapalenia stawów, stanowiąca mniej niż 1% wszystkich przypadków zakaźnego zapalenia stawów 1,2. Pomimo niskiej częstości występowania, SCJI może prowadzić do poważnych powikłań, takich jak śródpiersie śródpiersiowe, ropień ściany klatki piersiowej czy zawszenie płucne 2,3,4. Gronkowec capitis, gronkowec koagulazowo-ujemny (CoNS) i powszechny organizm komensalny ludzkiej skóry, jest coraz częściej powiązany z infekcjami krwiobiegu związanymi z cewnikami, infekcjami stawów protetycznych oraz infekcjami ran 5,6,7. Jednak SCJI wywołany przez Staphylococcus capitis rzadko był opisywany w literaturze8. Do częstych czynników ryzyka SCJI należą cukrzyca, immunosupresja oraz historia dożylnego stosowania leków 2,9,10. Niemniej jednak, przypadki zgłaszano także u zdrowych osób bez schorzeń podstawowych 11,12,13. Chociaż Staphylococcus capitis jest powszechnie uważany za łagodny kolonizator skóry, może działać jako oportunistyczny patogen w określonych warunkach5.

Niniejszy opis opisuje zakażenie stawu mostkowo-obojczykowego wywołane przez Staphylococcus capitis u pacjenta, który objawił się głównie z uczuciem ucisku w klatce piersiowej i kołataniem serca. Diagnoza została ostatecznie ustalona na podstawie badań obrazowych i badań mikrobiologicznych, potwierdzając infekcję stawu mostkowego związaną ze Staphylococcus capitis. Pacjent przeszedł chirurgiczne oczyszczanie, a następnie łącznie 10 tygodni terapii antybiotykami, co zakończyło się całkowitym ustąpieniem infekcji. Ten przypadek jest klinicznie istotny i odpowiedni do raportowania, ponieważ dotyczy typowej grupy wysokiego ryzyka (osoby starsze, cukrzycowe i z wybiegiem nowotworów) z nietypowym początkowym objawem, co wypełnia kluczową lukę w wiedzy dotyczącej SCJI wywołanego przez S. capitis. Niniejszy raport ma na celu zwiększenie świadomości klinicystów na temat zakażeń stawów mostkowo-obojczykowych wywołanych przez Staphylococcus capitis oraz podkreśla znaczenie wczesnej diagnozy i indywidualnych strategii leczenia 14,15,16.

PREZENTACJA PRZYPADKU:

74-letnia pacjentka zgłosiła się do Pierwszego Szpitala Afiliowanego Uniwersytetu Zhejiang z główną dolegliwością – kołatanie serca i ucisk w klatce piersiowej, który utrzymywał się od pół dnia. Objawy pojawiły się nagle podczas jazdy windą, charakteryzujące się kołatáním serca, uciskom klatki piersiowej i dusznością. Zaprzeczała zawrotom głowy, zamglonemu widzeniu, bólowi w klatce piersiowej czy innym dyskomfortom. Pacjentka miała 5-letnią historię cukrzycy typu 2, leczonej metforminą (dwie tabletki dziennie), oraz wywiad raka piersi po prawej stronie, z którego 20 lat temu przeszła radykalną mastektomię.

Po przyjęciu badanie fizykalne wykazało następujące wyniki: Temperatura: 37,2 °C; Pulse: 78 uderzeń/min; Częstość oddechu: 19 oddechów na minutę; Ciśnienie krwi: 128/79 mmHg. Pacjent był czujny, zorientowany i miał normalny stan psychiczny. Na prawym stawie mostkowo-obojczykowym zaobserwowano czerwono-fioletową masę o średnicy około 2 cm. Masa była miękka, z miejscowym ciepłem skóry i ropną, krwawą wydzieliną. Nie stwierdzono żółtaczki na skórze ani twardówce. Źrenice były równe i reagowały na światło. Okult płuc był czysty bez wybuchów, a rytm serca był regularny, bez patologicznych szmerów. Brzuch był miękki, nietkliwy i bez bólu odbicia. Nie zaobserwowano obrzęku kończyn dolnych, a siła mięśni i napięcie mięśni były prawidłowe we wszystkich kończynach, bez ograniczeń ruchowych.

Badania laboratoryjne wykazały następujące wyniki: białe krwinki (WBC): 6,43 × 109/L; Neutrofile: 67,8%; Białko C-reaktywne (CRP): 51,47 mg/L (normalne < 6,00 mg/L); elektrokardiogram (EKG): Tachykardia supraventrikularna (tętno > 200 uderzeń na minutę); Mycobacterium tuberculosis Badanie PCR reakcji łańcuchowej polimerazy (PCR) tkanki zakażonej: Negatywne.

Tomografia komputerowa brzucha nie wykazała ostrych patologii brzusznych. USG wykazało mieszaną masę torbielowato-stałą w prawym obszarze podobojczykowym, sugerującą stan zapalny. Rezonans magnetyczny ściany klatki piersiowej (3,0 T) wykazał zmianę zajmującą na przednim brzegu prawego obojczyka bliższego i stawu mostkowo-obojczykowego, z zalecanym obrazowaniem z dodatkiem kontrastu. Wydzieliny zapalne zaobserwowano w prawej ścianie klatki piersiowej, tkankach podskórnych górnych ramion oraz płaszczyznach powięzi. Zauważono powiększone węzły chłonne w lewej pachie i śródpiersiu. Postawiono wstępną diagnozę infekcji skóry dotyczącej prawego stawu mostkowo-obojczykowego, a pacjent został przyjęty na dalsze leczenie.

Pacjent otrzymał dożylny ertapenem (1,0 g/dzień) przed operacją i przeprowadzono chirurgiczne oczyszczanie zakażonej zmiany. Wewnątrzoperacyjnie zidentyfikowano dwa ropnie ropnie ropne w prawym stawie mostkowo-obojczykowym, a także miejscowe ropnie kanały zatok oraz martwicę zarówno powięzi, jak i kości. Obserwacje wewnątrzoperacyjne potwierdziły, że stabilność stawu mostkowo-obojczykowego została zachowana i nie została zagrożona infekcją ani odbrzęceniem. Zabieg obejmował usunięcie martwiczej tkanki, oczyszczanie powięzi osteomielitycznej i martwiczej oraz zapalnej tkanki podskórnej. Rana została przepłukana i przeprowadzono hemostazę. Klap został zamknięty, a następnie umieszczono dwie rury odpływu o ujemnym ciśnieniu.

Diagnoza pooperacyjna potwierdziła zapalenie kości śródszpikowej obojczyka. Drenaż ropy został wysłany do posiewu i identyfikacji bakteryjnej, która wykazała Staphylococcus capitis, wrażliwego na ertapenem. Pacjentka kontynuowała przyjmowanie ertapenemu (1,0 g dożylnie) i otrzymywała wsparcie terapeutyczne, w tym leczenie bólu, ochronę żołądka oraz wsparcie żywieniowe. Markery zapalne gwałtownie spadały po operacji, a poziom CRP spadł z 51,47 mg/L do 17,38 mg/L w ciągu 4 tygodni.

Pacjent pomyślnie ukończył 10-tygodniową kurację antybiotykową, obejmującą 2 tygodnie dożylnego ertapenemu, a następnie 8 tygodni doustnego linezolidu. Podczas leczenia nie zaobserwowano żadnych działań niepożądanych ani powikłań lekowych. Po miesiącu kontroli rana dobrze się zagoiła, a objawy pacjenta znacznie się poprawiły – kołatanie serca, ucisk w klatce piersiowej i duszność całkowicie ustąpiły.

Diagnoza, ocena i plan:

U pacjenta zdiagnozowano rzadką pierwotną infekcję stawu mostkowo-obojczykowego skomplikowaną przez osteomielitis, początkowo podejrzewaną klinicznie i radiologicznie jako bakteryjną infekcję piogenną. Badania chirurgiczne potwierdziły materię ropną, martwiczą tkankę miękką oraz osteomielitis obejmujące obojczyk przyśrodkowy. Pacjentka to starsza kobieta z wieloma czynnikami ryzyka, w tym długotrwałą cukrzycą oraz historią nowotworów, które predysponowały ją do infekcji oportunistycznej. Obraz kliniczny był nietypowy, z uciskiem w klatce piersiowej i kołataniem jako głównymi dolegliwościami, podczas gdy miejscowe objawy zapalne i podwyższone markery zapalne wspierały aktywny proces zakaźny. Badania obrazowe potwierdziły głębokie zaangażowanie tkanek miękkich i kości, a pochówka mikrobiologiczna wskazała Staphylococcus capitis jako czynnika wywołującego. Plan leczenia obejmował pilne chirurgiczne usunięcie martwiczej kości i tkanek miękkich, ukierunkowaną terapię antybiotykową opartą na wynikach hodowli oraz rekonstrukcję tkanek miękkich za pomocą szyszczkowego płata mięśniowo-powięziowego, aby zapewnić trwałe zamknięcie rany. Terapia antybiotykowa obejmowała 2 tygodnie dożylnego ertapenemu, a następnie 8 tygodni doustnego linezolidu, z dokładnym monitorowaniem markerów zapalnych i gojenia ran. Zaplanowano kontrolę pooperacyjną, aby ocenić gojenie, ustąpienie infekcji oraz potencjalny nawrót. Długoterminowe leczenie obejmuje regularne badania ambulatoryjne, edukację w zakresie leczenia ran oraz szkolenie dotyczące objawów ostrzegawczych nawracających infekcji.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zabieg ten został zatwierdzony przez komisję etyki szpitala i przeprowadzony zgodnie z obowiązującymi wytycznymi etycznymi. Wszyscy indywidualni uczestnicy badania uzyskali świadomą zgodę.

1. Wstępna ocena i pobieranie próbek

  1. Kompleksowe badanie skóry
    1. Przeprowadz dokładną inspekcję dotkniętej skóry, zwracając szczególną uwagę na obecność rumieniania, obrzęku, martwicy tkanek oraz ropnego wydzieliny.
      UWAGA: Uchwyć podstawową dokumentację wizualną (np. zdjęcia i wymiary zmian) oraz zapisać początkowe objawy kliniczne, w tym rumień i obrzęk.
  2. Historia medyczna i choroby współistniejące
    1. Uzyskaj szczegółową historię medyczną, dokumentującą wcześniejsze schorzenia, obecne i wcześniejsze leki stosowane w leczeniu objawów, historię chirurgiczną oraz wszelkie związane z tym komplikacje.
  3. Zbieranie wydzieliny rany
    1. Pobierz wydzielinę z rany za pomocą sterylnego wymazu. Delikatnie obracaj wymaz przez co najmniej 5 sekund, pobierając pobieranie podstawy i brzegów wrzodów. Natychmiast umieść wymaz w medium transportowym Amies i przechowuj w temperaturze 4 °C.
    2. Sprawdź wymaz wizualnie, aby potwierdzić wystarczającą ilość wysięku; Jeśli próbka jest niewystarczająca, powtarzaj procedurę pobierania bez zwłoki.
      UWAGA: Przetransportuj próbki do laboratorium mikrobiologicznego w ciągu 2 godzin. Jeśli natychmiastowe przetwarzanie nie jest możliwe, przechowuj próbki w warunkach chłodnych i przetwarzaj je w ciągu 24 godzin.

2. Obrazowanie i leczenie empiryczne

  1. Badania obrazowe
    1. Wykonaj obrazowanie rezonansu magnetycznego (3,0T MRI) z użyciem sekwencji z obniżeniem tłuszczu z T1, T2 i kontrastem w celu oceny zaangażowania tkanek miękkich i potencjalnego wydłużenia kości.
      UWAGA: Zweryfikować obecność głębokiego nagromadzenia płynu lub powstawania ropnia tkanek miękkich na badaniach obrazowych.
  2. Terapia antybiotykowa empiryczna
    1. Rozpocznij leczenie empiryczne antybiotykiem, podając dożylnie 1 g ertapenemu, rozcieńczonego w 100 ml soli fizjologicznej i podawanego raz dziennie przez 30 minut.
      UWAGA: Dostosuj schemat antybiotyku zgodnie z lokalnymi wzorcami podatności na środki przeciwdrobnoustrojowe oraz wynikami hodowli.

3. Procedury chirurgicznego oczyszczania

  1. Przygotowanie przedoperacyjne
    1. Wykonaj zabieg w znieczuleniu ogólnym tchawicowym, aby zapewnić odpowiednią relaksację mięśni, stabilną hemodynamikę oraz unieruchomienie pacjenta podczas oczyszczania i rekonstrukcji płatem.
      UWAGA: Anestezjolog utrzymywał odpowiednią głębokość znieczulenia i ściśle monitorował funkcje oddechowe i krążenia przez cały czas trwania zabiegu.
    2. Ułóż pacjenta w pozycji leżącej na plecach, odpowiednio odsłoniając staw mostkowo-obojczykowy, przyśrodkowy odcinek obojczyka oraz przednią ścianę klatki piersiowej. Wykonaj rutynową dezynfekcję skóry z użyciem povidonu jodu, a następnie sterylne zasłonięcie, aby ustanowić standardowe pole chirurgiczne.
    3. Wykonuj rutynowe monitorowanie w trakcie operacji, w tym pomiar tętna, nieinwazyjne ciśnienie krwi, elektrokardiografię, pulsoksymetrię oraz cząstkowe ciśnienie dwutlenku węgla na końcu pływu.
  2. Oczyszczanie
    1. W warunkach sterylnej sali operacyjnej usuwać widocznie zakażoną lub martwiczą tkankę skalpelem w połączeniu z elektrokauterem dwubiegunowym ustawionym na 30–40 W. Łączkować i usuwać zakażoną zmianę obejmującą przyśrodkowy segment obojczyka o średnicy 2 cm, aż usunięto wszystkie zdewilizowane kości.
    2. Kontynuuj oczyszczanie do momentu, gdy wszystkie nieżywotne tkanki zostaną usunięte i zdrowa, krwawiąca tkanka będzie wyraźnie widoczna.
  3. Operacja miofascialna z szypkami
    1. Wykonaj rekonstrukcję płata miofascialnego z opryskową w standardowych warunkach sterylnych na sali operacyjnej, używając sterylnych rękawiczek, fartucha, maski i dedykowanego sterylnego pola, wykorzystując część mostkowo-kostlową mięśnia mięśnia piersiowego większego jako mięsień dawcy dla płata mięśniowo-skórnego z opuką ostroskórą.
    2. Przeprowadz powierzchowne rozwarstwienie powięzi obojczykowej, zachowując tętnicę piersiową i żyłę jako szypkę naczyniową, aby zapewnić odpowiedni dopływ krwi. Następnie obróć płat przyśrodkowo, aby uzyskać beznapięciowe pokrycie wady stawu mostkowo-obojczykowego po debridenie.
  4. Pobieranie próbek tkanek
    1. Pobierz co najmniej trzy próbki tkanek z anatomicznie odmiennych miejsc, w tym podstawy wrzodu, brzegu owrzodzenia oraz głębokich warstw tkanek.
    2. Każdy próbek umieszcza się w indywidualnie oznakowanych pojemnikach sterylnych do późniejszej hodowli mikrobiologicznej i oceny histopatologicznej.
      UWAGA: Potwierdź, że próbki tkanek dokładnie reprezentują różne obszary, w tym żywotne marginesty, martwiczą tkankę oraz głębokie struktury podskórne.
  5. Monitorowanie postępu oczyszczania
    1. Monitoruj i dokumentuj cechy ran, w tym stan gojenia się nacięcia oraz objętość i charakter drenażu, a także trendy w markerach zapalnych, takich jak CRP (<10 mg/L) i liczba białych krwinek (<10 × 109/L).

4. Identyfikacja patogenów

  1. Barwienie i badanie mikroskopowe
    1. Do barwienia wykorzystaj zakażone tkanki miękkie oraz zdevitalizowaną tkankę kostną pobraną podczas operacji. Przetworzyć próbki tkanek w następujący sposób: utrwalić w 10% neutralnej formalinie buforowanej, zagłębić w parafinę i pociąć na sekcje o grubości 4 μm. Następnie odparafinuj fragmenty ksylenem i nawodnij przez oklasyfikowany etanol (100% > 95% > 75%), aby zakończyć przygotowanie do wstępnego barwienia.
    2. Wykonaj barwienie Grama.
      1. Nałóż crystal violet przez 60 sekund, a następnie spłuknij bezpłodną solą fizjologiczną. Następnie dodaj jod grama przez 60 sekund i dokładnie przepłucz.
      2. Wykonaj odbarwienie przez 1–2 sekundy, aż nie wydzieli się purpurowy barwnik, po czym natychmiast spłukaj solą fizjologiczną. Na koniec nałóż safraninę przez 60 sekund; opłucz fragmenty i susz na powietrzu, aby zakończyć barwienie Gramem.
    3. Wykonaj barwienie methenaminy w srebrze Gomori (GMS).
      1. Inkubować fragmenty tkanek, które przeszły wspomnianą wstępną obróbkę (deparafinizację i rehydratację) w roztworze roboczym GMS (przygotowanym przez mieszanie roztworu metenaminowego srebra i buforu cytrynianowego w stosunku 1:1) w temperaturze pokojowej przez 30 minut.
      2. Następnie umyj te fragmenty trzy razy sterylną solą fizjologiczną, aby usunąć niewiązane plamy. Następnie nałóż roztwór chlorku złota 0,5% przez 30 sekund dla różnicowania.
      3. Po płukaniu użyj 5% roztworu tiosiarczanu sodu przez 1 minutę, aby zakończyć reakcję barwienia. Na koniec dokładnie opłucz fragmenty wodą destylowaną i susz na powietrzu, aby zakończyć barwienie GMS.
      4. Po zakończeniu barwienia obserwuj przekroje pod mikroskopem świetlnym przy powiększeniu 200×. Dokumentuj cechy morfologiczne obszarów pozytywnie zabarwionych, aby zapewnić dokładną identyfikację zmian związanych z infekcją.
        UWAGA: Głównym tematem były roztrzaski grzybowe, zarodniki oraz rozmieszczenie patogenów w tkance.

5. Terapia antybiotykowa

  1. Podawanie antybiotyków
    1. Podawaj ertapenem dożylnie w dawce 1 g w 100 mL soli fizjologicznej 0,9%, podawano raz dziennie przez 30 minut.
    2. Monitoruj poziom CRP w surowicy i prokalcytoniny co 3–7 dni.
    3. Po wypisie przepisz doustny linezolid 600 mg dwa razy dziennie przez okres 8 tygodni.
      UWAGA: Potwierdź skuteczność leczenia poprzez poprawę radiologiczną (np. zmniejszenie obrzęku zapalnego w MRI), normalizację markerów zapalnych oraz całkowite wyeliminowanie klinicznych objawów infekcji.

6. Odbudowa i obserwacja

  1. Kontrola ambulatoryjna
    1. Umów wizyty kontrolne ambulatoryjne na 1, 2 i 4 tygodnie po wypisie, a następnie comiesięczne oceny przez łączny czas trwania 6 miesięcy.
    2. Oceń stan gojenia rany, nawroty infekcji, nasilenie bólu (za pomocą skali analogowej wzroku [VAS]) oraz funkcjonalną regenerację (np. zakres ruchu stawów).
      UWAGA: Dokumentuj cotygodniowy postęp gojenia ran, potwierdź pełną epitelizację w oczekiwanym czasie (<8 tygodni) oraz oceniaj adekwatność kontroli bólu (VAS ≤ 3).
  2. Rejestrowanie i analiza danych
    1. Rejestruj wygląd rany, objętość drenażu, markery zapalne oraz wyniki obrazowe podczas każdej wizyty kontrolnej.
    2. Bezpiecznie przechowuj zanonimizowane dane pacjentów w ustandaryzowanym formularzu raportu przypadku do późniejszej analizy i publikacji.
      UWAGA: Przeglądaj końcowe wyniki kliniczne co miesiąc, aby potwierdzić całkowite gojenie rany, brak nawrotów infekcji podczas 6-miesięcznej kontroli oraz dokumentację satysfakcji pacjenta i funkcjonalnego powrotu do zdrowia.

7. Utylizacja odpadów biohazardowych

  1. Usuwać odpady biohazardowe (tkanki, wymazy, ostre narzędzia) zgodnie z przepisami szpitala dotyczącymi bezpieczeństwa biologicznego.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

74-letnia kobieta miała półdniową historię nagłych palpitacji, ucisku w klatce piersiowej i duszności, bez zawrotów głowy czy bólu w klatce piersiowej. Miała historię cukrzycy typu 2 leczonej metforminą oraz wcześniejszą operację raka piersi. Badanie fizykalne wykazało ~2 cm czerwono-fioletową, tkliwą masę nad prawym stawem mostkowo-obojczykowym z miejscowym ciepłem i ropną wydzieliną. Elektrokardiografia wykazała tachykardię supraventrikularną (>200 uderzeń/min). Badania obrazowe, w tym USG i MRI, wykazały zapalną masę ...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zakażenie stawu mostkowo-obojczykowego (SCJI) to stosunkowo rzadkie zakażenie stawów, jednak jego częstość występowania może być wyższa w niektórych populacjach. Według literatury zakażenie stawu mostkowo-obojczykowego może występować w różnych kontekstach klinicznych, w tym w infekcjach pooperacyjnych (takich jak rozszerzenie zapalenia mostka i kości obojczykowej na staw mostkowo-obojczykowy po operacji serca)17, stanach immunosupresyjnych (np. po zastosowaniu inhibitorów punktów kontrolnych immu...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają żadnych podziękowań.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Amies Transport MediumThermo Fisher9805-200Wykorzystywany do transportu próbek wydzieliny ran do laboratorium mikrobiologicznego
Elektrokauteryzacja dwubiegunowaValleylab (Medtronic)1190-0001Stosowany do usuwania martwiczej lub zakażonej tkanki podczas operacji
Crystal Violet (0,5% w/v)Sigma-AldrichC-5810Odczynnik barwiący do barwienia Grama
Etanol (70%)Sigma-AldrichE7023Stosowane do odwodnienia tkanek i ich utrwalania w protokołach barwienia
Faropenem (ustny)Nie maNie maAntybiotyk stosowany w drugiej fazie leczenia
Formalina (10%)Sigma-AldrichF-1635Stosowany do utrwalania tkanek przed analizą histopatologiczną
Plama srebra Grocotta z metenaminySigma-Aldrich3953-000-5Wykorzystywane do identyfikacji grzybów w próbkach tkanek
Proteinaza KSigma-Aldrich25560-039Wykorzystywane do ekstrakcji DNA z próbek tkanek
Safranina (0,25% w/v)Sigma-AldrichS8884Kontrast stosowany w barwieniu Grama
Sekwencja MRI ważona T1Siemens HealthineersNASekwencja obrazowa do oceny tkanek miękkich
Sekwencja MRI ważona T2Siemens HealthineersNASekwencja obrazowa do oceny tkanek miękkich i kości
VITEK SystemBioMé rieux4112118Zautomatyzowany system identyfikacji bakterii

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Ahmic, E., et al. Management and outcomes of sternoclavicular joint infections: a retrospective study. J Clin Med. 14 (6), 1893(2025).
  2. Metsugi, Y., Shigemitsu, K., Hirata, T., Iwamoto, Y., Sato, H. Septic arthritis of the sternoclavicular joint complicated by empyema and bronchopleural fistula: a case report. Cureus. 16 (12), e76358(2024).
  3. Koike, S., Miyazawa, M., Kobayashi, N. A rare case of empyema caused by septic arthritis of the sternoclavicular joint, successfully treated with surgical drainage. J Surg Case Rep. 2024 (5), rjae359(2024).
  4. Saishoji, Y., Mori, K., Izumi, Y. Sternoclavicular septic arthritis caused by Parvimonas micra and Fusobacterium nucleatum infection with intra-articular corticosteroid administration. Intern Med. 63 (2), 341-344 (2024).
  5. Wan, Y., et al. Complete genome assemblies and antibiograms of 22 Staphylococcus capitis isolates. BMC Genom Data. 26 (1), 12(2025).
  6. Yapar, A., et al. Increased involvement of Staphylococcus epidermidis in the rise of polymicrobial periprosthetic joint infections. J Arthroplasty. 39 (12), 3056-3061 (2024).
  7. Zahornacky, O., et al. Occurrence of bacteria belonging to the genus Enterococcus and Staphylococcus on inanimate surfaces of selected hospital facilities and their nosocomial significance. Cent Eur J Public Health. 30 (Supplement), S57-S62 (2022).
  8. Vujic, J., Hojski, A., Dackam, S. V. C., Bachmann, H., Lardinois, D. Functional outcomes of patients with sternoclavicular joint infection after extended resection. Ann Thorac Surg Short Rep. 2 (2), 193-196 (2024).
  9. Alghamdi, H. M., Alghamdi, E. A., Chowdhary, S. K., AlQahtanii, S., AlMohaini, R. Salmonella sternoclavicular septic arthritis in a non-sickle cell disease patient. Cureus. 15 (1), e34094(2023).
  10. Cydylo, M., Ivanov, I., Chineme, J. Sternoclavicular septic arthritis: a case report. Cureus. 15 (4), e38130(2023).
  11. Jlidi, M., et al. Sternoclavicular septic arthritis in a healthy adult: a case report and a review of the literature. SAGE Open Med Case Rep. 11, 2050313X231212831(2023).
  12. Mustfar, S. N. S., Haroon, R., Abd Aziz, A. The nomadic bug: a case report of Salmonella septic arthritis of sternoclavicular joint in a healthy patient. Cureus. 16 (4), e57685(2024).
  13. Yamane, T., Miyamoto, C. Escherichia coli sternoclavicular septic arthritis secondary to colon cancer-associated bacteremia. Intern Med. 64 (22), 3306-3310 (2025).
  14. Alnasser, A., Alamari, Z. S., Almutairi, T. M., Aljohani, H. T., Almulla, A. M. Sternoclavicular septic arthritis and surgical intervention: a case report. Cureus. 16 (1), e53002(2024).
  15. Khalid, N., Afzal, M. A., Haider, S. U., Michael, P., Abdullah, M. A challenging case of managing septic arthritis of the sternoclavicular joint in a patient with a history of intravenous opioid use disorder: a case report and literature review. Cureus. 15 (7), e42635(2023).
  16. Sugihara, T., et al. Successful conservative management of advanced pyogenic sternoclavicular joint arthritis with osteomyelitis and pulmonary infiltration: a case report. J Med Case Rep. 18 (1), 394(2024).
  17. Gatti, G., et al. When surgical option is not provided: a successful multidisciplinary approach to a refractory case of sternal osteomyelitis following coronary surgery. Infection. 52 (1), 265-269 (2024).
  18. Kachi, S., Sumitomo, S., Oka, H., Hata, A., Ohmura, K. Case report: inflammatory sternoclavicular joint arthritis induced by an immune checkpoint inhibitor with remarkable responsiveness to infliximab. Front Immunol. 15, 1400097(2024).
  19. Oguni, K., et al. Disseminated septic arthritis caused by Ureaplasma urealyticum in an immunocompromised patient with hypogammaglobulinemia after rituximab therapy. Infection. 52 (6), 2495-2499 (2024).
  20. Wei, L. W., Zhu, P. Q., Chen, X. Q., Yu, J. Mucormycosis in mainland China: a systematic review of case reports. Mycopathologia. 187 (1), 1-14 (2022).
  21. Canetti, D., Riccardi, N., Antonello, R. M., Nozza, S., Sotgiu, G. Mycobacterium marinum: a brief update for clinical purposes. Eur J Intern Med. 105, 15-19 (2022).
  22. Zhang, Z., et al. Facial Balamuthia mandrillaris infection with neurological involvement in an immunocompetent child. Lancet Infect Dis. 22 (3), e93-e100 (2022).
  23. Gunnlaugsdottir, S. L., et al. Native joint infections in Iceland 2003–2017: an increase in postarthroscopic infections. Ann Rheum Dis. 81 (1), 132-139 (2022).
  24. Wang, R., Tang, P., Tian, R. FDG PET/CT showing a primary lymphoma of the sternoclavicular joint. Clin Nucl Med. 46 (7), 603-604 (2021).
  25. Tabaja, H., Abu Saleh, O. M., Osmon, D. R. Periprosthetic joint infection: what's new? Infect Dis Clin North Am. 38 (4), 731-756 (2024).
  26. Hinz, M., et al. Good clinical and functional outcomes with low rates of recurrent instability and revision surgery after sternoclavicular reconstruction or repair for the treatment of instability: a systematic review. Arthroscopy. 41 (10), 4292-4302 (2025).
  27. Zhang, Q., et al. Diagnosis and treatment of chronic skin infection caused by Scedosporium apiospermum. J Vis Exp. (225), e68901(2025).
  28. Zheng, J., et al. Scrotal gangrene secondary to Staphylococcus aureus infection: a case report. Ann Ital Chir. 95 (6), 1061-1066 (2024).
  29. Wan, Y., et al. Whole-genome sequencing reveals widespread presence of Staphylococcus capitis NRCS-A clone in neonatal units across the United Kingdom. J Infect. 87 (3), 210-219 (2023).
  30. Wang, Z., et al. Development of a novel core genome MLST scheme for tracing multidrug resistant Staphylococcus capitis. Nat Commun. 13 (1), 4254(2022).
  31. Ferreira, I., et al. Oxacillin-resistant Staphylococcus spp.: impacts on fatality in a NICU in Brazil - confronting the perfect storm. Biomed Pharmacother. 179, 117373(2024).
  32. He, L., et al. Antibiotic treatment can exacerbate biofilm-associated infection by promoting quorum cheater development. NPJ Biofilms Microbiomes. 9 (1), 26(2023).
  33. Rahim, M. I., et al. Commensal microflora coating endows implants with biofilm-repellent, immunomodulatory and osteogenic properties. Acta Biomater. 212, 266-280 (2026).
  34. Tian, J., Meng, Q., Zhang, P. Therapeutic biomaterials for chronic osteomyelitis: time-space-control strategies for infection control and bone repair-a narrative review. J Funct Biomater. 17 (3), 142(2026).
  35. Yi, J., et al. Orthopedic implant infection management: prevention, barrier breakthrough, and immunomodulation. ACS Nano. 19 (30), 27009-27032 (2025).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Zapalenie ko cichirurgiczne oczyszczenie ranydrena ropnybia ko C reaktywneobrazowanie metod rezonansu magnetycznegotomografia komputerowaantybiotykoterapiazindywidualizowane leczenie

Powiązane artykuły