Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Niedroga alternatywa do badania preferencji społecznych u Danio pręgowanego (Danio rerio) przy użyciu zadania wolnego pływania w trzykomorowym otwartym zbiorniku

194 wyświetleń

DOI:

10.3791/70610

7 sierpnia 2026

W tym artykule

Podsumowanie

Zadania preferencji społecznych wielokomorowych zostały dostosowane od szczurów do rybek zebra, ułatwiając badania nad zachowaniami społecznymi w organizmach modelowych. Ten protokół waliduje niskobudżetowe zadanie trójkomorowe z otwartym zbiornikiem przy użyciu kamer internetowych i oprogramowania open-source w celu zmierzenia preferencji społecznych rybek zebra, czyniąc je dostępnymi dla badań i nauczania na poziomie licencjackim.

Streszczenie

Rozumienie zachowania społecznego jest podstawowym celem w badaniach neurobehawioralnych, często badanym za pomocą zadań preferencji społecznych. Zadania te, pierwotnie opracowane dla gryzoni, a później zaadaptowane dla rybki zwojowej, są szeroko stosowane do badania dynamiki społecznych interakcji i reakcji. Zadanie wolnego pływania w trzech komorach (OTFST) składa się z centralnego zbiornika, który jest flankowany przez dwa zbiorniki ze stymulacją, z kamerą umieszczoną w celu rejestracji zachowania obiektu w centralnym zbiorniku, polaryzacją filmu i podświetleniem, aby poprawić jakość i ważność wideo. Ten protokół wykorzystuje niskobudżetowy zestaw z kamerami USB i łatwo dostępnymi materiałami. Prezentujemy użycie DeepLabCut, narzędzia open-source do estymacji pozycji bez markerów, które umożliwia dokładne śledzenie wideo ruchów zwierząt i dostarcza danych serii czasowych pozycji do analizy różnych wskaźników. Sesje pilotażowe potwierdzają zdolność systemu do rejestrowania solidnego zachowania preferencji społecznych. Ten przyjazny budżetowi podchód oferuje dostępną i skalowalną platformę dla laboratoriów badających interakcje społeczne u rybek zwojowych, a wszechstronność i względna prostota 3-izbowego OTFST czyni go odpowiednim dla laboratoriów dydaktycznych na poziomie studiów licencjackich i projektów badawczych.

Wprowadzenie

Preferencja społeczna to skłonność jednostki do angażowania się, szukania lub unikania bodźców społecznych i jest fundamentalnym aspektem zachowania społecznego, odgrywając krytyczną rolę w ustalanie więzi i hierarchii w grupach zwierząt, w tym ludzi1,2,3,4. Zrozumienie preferencji społecznych jest istotne dla opisania mechanizmów neuronowych i behawioralnych leżących u podstaw interakcji społecznych. Poprzednie badania wskazują, że niedobory w preferencjach społecznych mogą być związane z zaburzeniami rozwojowymi i psychiatrycznymi5,6,7,8. Modele zwierzęce mogą dostarczyć informacji na temat biologicznej podstawy zachowania społecznego i pomóc w opracowaniu narzędzi translacyjnych do diagnozowania i leczenia upośledzeń społecznych. Te modele zwierzęce, począwszy od gryzoni9,10 po gatunki wodne11,12, zapewniają przydatne ramy dla odkryć.

Gryzonie były po raz pierwszy wykorzystywane do badań behawioralnych na początku XIX wieku13, ze względu na ich fizjologiczne podobieństwa do ludzi14,15. Podczas gdy zachowania takie jak agresja były pierwotnie badane, systematyczne pomiary preferencji społecznych pozostały minimalne. Badacze wypełnili tę lukę, opracowując zadanie preferencji społecznych w trzech komorach, wprowadzone przez Nadlera i in.16. Urządzenie składa się z trzech połączonych komór. Zazwyczaj jedna komora boczna zawiera nowego osobnika tego samego gatunku, podczas gdy druga komora pozostaje pusta. Podmiotowi pozwala się swobodnie zwiedzać wszystkie komory, gdzie czas spędzony w każdej komorze jest rejestrowany i oceniany jako wskaźnik preferencji. To urządzenie i procedura, wraz z kilkoma odmianami, zyskały szeroką popularność i zostały wykorzystane do badania różnych aspektów wydajności społecznej17,18,19 oraz niedoborów społecznych w modelach gryzoni spektrum autyzmu5,20,21. Jednak badania na gryzoniach są droższe i wymagają znacznej przestrzeni. Z tego powodu wielu badaczy zaczęło korzystać z gatunków wodnych do badań neurobehawioralnych.

Gatunki wodne, przede wszystkim danio pręgowany (Danio rerio), posiadają rozbudowany repertuar behawioralny, w tym złożone interakcje społeczne22. Ze względu na ich użyteczność jako modelu badań biomedycznych i znaczenie interakcji społecznych w ich ekologii behawioralnej, danio pręgowany zapewniają znaczącą ramę dla reakcji społecznych, które mogą być porównywane z ludźmi23. Danio pręgowany stały się coraz bardziej popularne w badaniach neurobiologii behawioralnej, ponieważ są tanie w utrzymaniu i wymagają stosunkowo niewielkiego miejsca, co sprawia, że ten gatunek jest opłacalnym i praktycznym modelem do dużych badań nad zachowaniem społecznym i preferencjami24. W niektórych badaniach konfiguracja sąsiednich zbiorników była wykorzystywana do badania interakcji społecznych w gatunkach wodnych25,26; jednak to ustawienie zapewniało dość ograniczoną wydajność w ocenie preferencji społecznych, ponieważ prezentowana była tylko jedna stymulacja. Ta ograniczona wydajność została rozwiązana poprzez adaptację zadania w trzech komorach u myszy dla danio pręgowanych w 2018 roku27. Zmodyfikowane urządzenie do zadania 3-komorowego pływania wolnego w otwartym zbiorniku (OTFST) składało się z pojedynczego zbiornika akrylamidowego podzielonego sztywnymi barierami akrylamidowymi, aby zapewnić neutralną strefę startową i dwie komory boczne, z których każda zawierała albo znajomego, albo nowego osobnika tego samego gatunku. Aby zmierzyć preferencje społeczne, rejestrowano łączny czas spędzony w pobliżu każdej komory bocznej, co wykazało, że ekspozycja na etanol i usunięcie genu sam2 zmniejszyło preferencję nowości u danio pręgowanych27. Podczas gdy test interakcji społecznych w trzech komorach u gryzoni pozwala na złożone interakcje multimodalne między podmiotem a stymulacyjnym(ymi) osobnikiem(i) przez tryb wizualny, chemiczny, dotykowy i akustyczny, użycie oddzielnych komór dla wodnego zadania 3-komorowego OTFST ogranicza interakcję między podmiotem a zwierzętami stymulacyjnymi tylko do trybu wizualnego. Chociaż ta interakcja jednomodalna może mieć niższą ważność ekologiczną, zapewnia większą kontrolę eksperymentalną i zwiększa prostotę dla projektów prowadzonych przez studentów licencjackich. W literaturze różni badacze od tego czasu badali adaptacje zadania 3-komorowego OTFST, aby zbadać czynniki genetyczne i środowiskowe wpływające na zachowanie społeczne u danio pr

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie procedury eksperymentalne zostały zatwierdzone przez Instytucjonalny Komitet ds. Opieki nad Zwierzętami i ich Użytkowania (IACUC) na Christopher Newport University (Protokół nr 2025-23).

1. Zwierzęta

  1. Uzyskaj dorosłe dziko żyjące ryby z krótkim płetwiami typu dzikiego23,36,37, choć można użyć innych ras. Alternatywnie, uzyskaj zarodki i wyhoduj je w domu.
  2. Umieść ryby w wolno stojących zbiornikach 10-galonowe (38 L) o gęstości około dwóch ryb na galon (3,8 L) wody. Wyposażyć zbiorniki w aktywne filtry biologiczne, kamienie powietrzne i grzejniki zanurzeniowe. Alternatywnie, umieść ryby na wodnym systemie stojakowym.
  3. Utrzymuj parametry jakości wody w następujących zakresach: pH 7,0–8,0, przewodność 400–700 µS, temperatura 25–27 °C, <40 ppm azotanów, <0,2 ppm azotynów i 0,01–0,1 ppm amoniaku.
  4. Trzymaj zwierzęta w cyklu 12-godzinnego światła:12-godzinnego ciemności i karm je codziennie komercyjnymi płatkami.
  5. Wybierz zwierzęta losowo z tych zbiorników do przypisania do eksperymentu.
  6. Po zakończeniu eksperymentu, przeznacz zwierzęta na inne cele badań/nauczania lub eutanazjuj je zanurzeniem w 250-500 mg/mL buforowanego trikainu na 30 min, a następnie metodą fizyczną (np. ścięcie), aby zapewnić śmierć. Użyj eutanalizowanych zwierząt do kolejnych bioanaliz i/lub analiz neurochemicznych.

2. 3-komorowe urządzenie do swobodnego pływania w otwartym zbiorniku i oprogramowanie

  1. Konstrukcja komór testowych
    1. Zdejmij ostrożnie plastikową obręcz ze spodniej części każdego 5,5-galonowym zbiornika. Użyj narzędzia rotacyjnego z kołem odciągającym, aby naciąć plastik w narożnikach, aby ułatwić jego usunięcie. Po nacięciu plastiku, oddziel plastik od silikonowego kleju za pomocą wspólnego noża do masła.
    2. Aby rozproszyć podświetlenie, przykryj tył wszystkich trzech zbiorników, lewy koniec jednego zbiornika i prawy koniec drugiego zbiornika białą taśmą samoprzylepną. Pozostaw zakończenia bez pokrycia na zbiorniku, który będzie używany jako komora środkowa.
    3. Narysuj czarną poziomą linię, aby wskazać poziom napełnienia 4,5 cm poniżej górnego brzegu na froncie każdej komory za pomocą markera emaliowego lub czarnej taśmy do układania grafiki.
    4. Wytnij jeden arkusz filtru polaryzacyjnego, aby pasował do odsłoniętej strony końcowej każdego zbiornika bocznego. Ułóż arkusze filtra pod kątem 90° względem siebie. Użyj przezroczystej taśmy wzdłuż wszystkich czterech krawędzi, aby zapobiec wnikaniu wody do przestrzeni między szybą akwarynem a materiałem filtra.
      UWAGA: Przesunięta orientacja filtrów polaryzacyjnych uniemożliwi zwierzętom stymulowaną w jednej bocznej komorze stymulacji widzenie zwierząt (lub innych bodźców) w drugiej bocznej komorze stymulacji, jednocześnie pozwalając im widzieć podmiot. Podmiot w środkowym zbiorniku może widzieć bodźce wzrokowe w obu komorach bocznych.
    5. Zbuduj podstawę z polichlorku winylu (PVC) w celu wyrównania dokładnego umiejscowienia zbiorników na stojaku. Wytnij spód podstawy z 1/4 cala (0,635 cm) grubości białej arkuszy PVC na 21 cm x 122,5 cm i wytnij końcówki z 1 x 2 PVC taśmy dekoracyjnej na długość 21 cm.
    6. Przetestuj dopasowanie końcówek na podstawie ze wszystkimi trzema zbiornikami na miejscu. Upewnij się, że łatwo można włożyć i wyjąć panele dzielące (poniżej) i potwierdź, że zbiorniki boczne nie są ściśle przyciśnięte do boków środkowego zbiornika. Po zakończeniu dopasowywania, połącz końcówki z podstawą PVC za pomocą cementu PVC.
    7. Aby wykonać przezroczyste pokrywy dla każdej komory, wytnij arkusz poliwęglanu na trzy kawałki o wymiarach zewnętrznych górnego brzegu 5,5-galonowego zbiornika (40 cm x 21 cm). Wytnij kanał stykowy (6 mm x 4 mm) wokół krawędzi każdej pokrywy, aby zapewnić bezpieczne umiejscowienie pokrywy na górze komory.
    8. Pokrzyj komory pokrywami za każdym razem, gdy zwierzęta są przetrzymywane w komorach. Umieść grzejnik zanurzeniowy i kamień powietrzny podłączony do pompy akwariowej, podczas gdy zwierzęta są przetrzymywane w swoich odpowiednich komorach, aby zapewnić kontrolę temperatury i aeracje. Użyj trójstronnego zaworu powietrznego, aby skorygować przepływ powietrza przez wszystkie trzy kamienie powietrzne.
    9. Wykonaj proste nieprzezroczyste ścianki dzielące do umieszczenia między komorą środkową a każdą boczną komorą, aby kontrolować, kiedy podmioty

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

W celu walidacji opisanych powyżej niskokosztowych metod, jeden z warunków eksperymentalnych przeprowadzonych przez Velkey i wsp.33 został odtworzony z wykorzystaniem obecnej niskokosztowej aparatury. Podmiotom (N = 23, 11 samców i 12 samic) zaprezentowano sztuczne, ruchome mobilne (niska wierność) bodźce społeczne po lewej stronie oraz żywą ławicę (wysoka wierność) stanowiącą bodźce społeczne po prawej stronie (Rycina 2); ponieważ poprzednie badania...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Obecny protokół pokazuje, że obecna nisko-kosztowalna adaptacja 3-izbowego OTFST może być używana do niezawodnego charakteryzowania preferencji społecznych u dorosłych danioni rerio, mierzonej przez czas spędzony w danej strefie. Korzystając z niedrogich materiałów budowlanych, kamery internetowej podłączonej przez USB oraz oprogramowania do nabywania i analizy danych, obecny system z powodzeniem potwierdził, że danioni rerio preferują ławicę żywych spokrewnionych osobników nad mniej wiernymi ruchomymi modelami. Te wynik...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy deklarują brak konfliktów interesów. Fundatorzy nie mieli wpływu na projekt badań; w zbieraniu, analizach czy interpretacji danych; w pisaniu manuskryptu; ani w decyzji o publikacji wyników.

Podziękowania

Autorzy dziękują Rommelowi Pagkalinawanowi, Robbymu Buckowi, Elizabeth Hiltz, Haley Dewitt, Maia Tankersley, Alexis Thai-Nguyen, Grady Fleming, Jacob Youngowi i Jackowi Medlinowi z zespołu TheFishLab na Christopher Newport University za ich wkład w hodowlę zwierząt i zbieranie danych dla eksperymentu walidacji. Autorzy dziękują również Samancie Commons za pomoc podczas jej Programu dla Kapitanów Społeczności Latem 2025, w tym za przeprowadzenie inwentaryzacji wszystkich komponentów istniejącego kosztownego setupu, jak również niskobudżetowego setupu. Autorzy chcieliby również podziękować Biuru Badań Studenckich i Działalności Twórczej na Christopher Newport University za finansowanie przekazane K.K. w ramach programu dla stypendystów letnich dla studentów. Rysunek 2 został stworzony w BioRender przez Kinslow, K. (2025). https://BioRender.com/wbf0wph.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
10-Gallon AquariumAqueon, Inc. Franklin, WI, USA#100110010kupione w lokalnym sklepie zoologicznym (1 do 4)
12 Pieces 1-inch T-Pipe ClampsJoyHua Trade, ChinaASIN #B0DF19DJF1zakupione na Amazon.com (1)
2-gang electrical boxSigma Engineered Solutions, Raleigh, NC, USA# 14350kupione w lokalnym sklepie żelaznym (1)
3/4" Silver-Metallic electrical metallic(EMT) Conduit - 10-footWheatland Tube, Inc., Wheatland, PA, USA #0550110000kupione w lokalnym sklepie żelaznym (3)
3-conductor cordUtilitech, Inc., Charlotte, NC, USAUT010710kupione w lokalnym sklepie żelaznym (1)
3-prong receptacleEaton, Inc., Beachwood, OH, USA#270W-SP-LWkupione w lokalnym sklepie żelaznym (1)
3-way Air ValvePenn-Plax, Inc. 35 Marcus Blvd. Hauppauge, NY, USAModel VN3kupione w lokalnym sklepie zoologicznym (1)
A4 Cardstock (white), laminatedvariesvarieskupione na kampusowym sklepie z książkami (2)
Active bio-filter Penguin 100Spectrum Brands Pet, LLC, Blacksburg, VA, USA#PF00100Bkupione w lokalnym sklepie zoologicznym (1 do 4)
Air stonesPenn-Plax, Inc. 35 Marcus Blvd. Hauppauge, NY, USAModel AS6Qkupione w lokalnym sklepie zoologicznym (3)
Aquarium Air TubingPenn-Plax, Inc. 35 Marcus Blvd. Hauppauge, NY, USAModel STD8kupione w lokalnym sklepie zoologicznym (1)
Black Fabric Twin Sheets (167.6 cm X 243.8 cm)Royale Linens, Inc., Melville, NY, USA#00011342258875zakupione na Amazon.com (3)
Brio 4k WebcamLogitech International S.A., Lausanne, Switzerland960-001419zakupione na Amazon.com (1 do 3)
Computer (sufficient for running Open Broadcaster Studio & 1-3 Webcams)Dell, Inc., Round Rock, TX, USAOptiPlex Micro 7010zakupione na dell.com (1)
Dimmable light-emitting diode (LED) flat-panel lightLithonia Lighting-Acuity Brands, Inc. Conyers, GA, USACTCL-153P-WHzakupione na Amazon.com (1)
E-Z Up Dust Containment Pole (2 Pack)Trimaco, Inc., Cary, NC, USA# 00047034547330zakupione na Amazon.com (1)
Feet Hardware TwinevariesVarieskupione w lokalnym sklepie żelaznym (1)
Linear polarizing filtersB&H Foto & Electronics, Inc., New York, NY USARosco #7300kupione online (7)
Open Broadcaster SoftwareOBS Projectv32.0.0pobrane z https://obsproject.com (1)
Polycarbonate Sheet (0.38"/9.6mm thick)Spectraglass, ltd., Perth, ScotlandUPC # 608037376817zakupione na Amazon.com (1)
polyvinyl chloride (PVC) Cement, 4 oz canisterThe AZEK Co, Chicago, IL, USA#ARAD0004OZkupione w lokalnym sklepie żelaznym (1)
Rimless 5.5-Gallon AquariumAqueon, Inc. Franklin, WI, USA#100541424kupione w lokalnym sklepie zoologicznym (3)
Self-adhesive white plastic film CON-TACT Brand, La Miranda, CA, USA#16F-C9A952-06kupione w lokalnym sklepie żelaznym (1)
Slider Dimmer switchLutron, Inc., Cooperburg, PA, USA#LECL-150H-WHkupione w lokalnym sklepie żelaznym (1)
small pulleyvariesVarieskupione w lokalnym sklepie żelaznym (1)
Submersible 50W heaters (preset to 26C)Aqueon, Inc. Franklin, WI, USA#100106251kupione w lokalnym sklepie zoologicznym (3 do 7)
Super Clamp Camera MountJINSUI, ChinaX0040GEYLRzakupione na Amazon.com (1 do 3)
Tetra Whisper 10 Aquarium Air PumpSpectrum Pet, Home & Garden, Inc., Middleton, WI, USAUPC #046798778516kupione w lokalnym sklepie zoologicznym (1)
Weatherproof 2-gang electrical enclosureHubbell, Inc., Shelton, CT, USA#MM2420Ckupione w lokalnym sklepie żelaznym (1)
White PVC Sheet 1/4" x 24" 48"Royal Building Products, Bristol, TN, USA#3101kupione w lokalnym sklepie żelaznym (2)
White PVC Trim Board, nominal 1 x 2 (0.75" x 1/5" x 96")Royal Building Products, Bristol, TN, USA#7832-8kupione w lokalnym sklepie żelaznym (1)

Bibliografia

  1. Seo, H., Lee, D. Neural basis of learning and preference during social decision-making. Curr Opin Neurobiol. 22 (6), 990-995 (2012).
  2. Bray, J., et al. Social bonds predict dominance trajectories in adult male chimpanzees. Anim Behav. 179, 339-354 (2021).
  3. Tibbetts, E. A., Pardo-Sanchez, J., Weise, C. The establishment and maintenance of dominance hierarchies. Philos Trans R Soc B. 377 (1845), 20200450(2022).
  4. Chase, I. D., Tovey, C., Spangler-Martin, D., Manfredonia, M. Individual differences versus social dynamics in the formation of animal dominance hierarchies. Proc Natl Acad Sci U S A. 99 (8), 5744-5749 (2002).
  5. DeLorey, T. M., et al. Gabrb3 gene deficient mice exhibit impaired social and exploratory behaviors, deficits in non-selective attention and hypoplasia of cerebellar vermal lobules: a potential model of autism spectrum disorder. Behav Brain Res. 187 (2), 207-220 (2008).
  6. Lee, J., Green, M. F. Social preference and glutamatergic dysfunction: underappreciated prerequisites for social dysfunction in schizophrenia. Trends Neurosci. 39 (9), 587-596 (2016).
  7. Fortier, A. V., et al. Prefrontal circuits guiding social preference: implications in autism spectrum disorder. Neurosci Biobehav Rev. 141, 104803(2022).
  8. Weiner, J. Social Relationships of Individuals with ADHD Across the Lifespan. Clinical Handbook of ADHD Assessment and Treatment Across the Lifespan. Matson, J. , Springer. Cham. (2023).
  9. Toth, I., Neumann, I. D. Animal models of social avoidance and social fear. Cell Tissue Res. 354, 107-118 (2013).
  10. Guo, M., Sun, L. From rodents to humans: rodent behavioral paradigms for social behavioral disorders. Brain Circ. 9 (3), 154-161 (2023).
  11. Geng, Y., Peterson, R. T. The zebrafish subcortical social brain as a model for studying social behavior disorders. Dis Model Mech. 12 (8), dmm039446(2019).
  12. Ogawa, S., Pfaff, D. W., Parhar, I. S. Fish as a model in social neuroscience: conservation and diversity in the social brain network. Biol Rev. 96 (3), 999-1020 (2021).
  13. Moss, S. M. Notes on the habits of a domesticated white rat, and a terrier dog (Flora), that lived in harmony together. Mag Nat Hist. 9, 182-185 (1836).
  14. Kietzman, H. W., Gourley, S. L. How social information impacts action in rodents and humans: the role of the prefrontal cortex and its connections. Neurosci Biobehav Rev. 147, 105075(2023).
  15. Bryda, E. C. The mighty mouse: the impact of rodents on advances in biomedical research. Mo Med. 110 (3), 201-211 (2013).
  16. Nadler, J. J., et al. Automated apparatus for quantitation of social approach behaviors in mice. Genes Brain Behav. 3 (5), (2004).
  17. Yang, M., Silverman, J. L., Crawley, J. N. Automated three-chambered social approach task for mice. Curr Protoc Neurosci. 56, 8.26.1-8.26.16 (2011).
  18. Zhao, C., Gammie, S. C. The circadian gene Nr1d1 in the mouse nucleus accumbens modulates sociability and anxiety-related behaviour. Eur J Neurosci. 48 (3), 1924-1943 (2018).
  19. Arakawa, H. Revisiting sociability: factors facilitating approach and avoidance during the three-chamber test. Physiol Behav. 272, 114373(2023).
  20. Crawley, J. N. Designing mouse behavioral tasks relevant to autistic-like behaviors. Ment Retard Dev Disabil Res Rev. 10 (4), 248-258 (2004).
  21. Ehninger, D., et al. Gestational immune activation and Tsc2 haploinsufficiency cooperate to disrupt fetal survival and may perturb social behavior in adult mice. Mol Psychiatry. 17 (1), 62-70 (2012).
  22. Ward, A. J. W., Kent, M. I. A., Webster, M. M. Social recognition and social attraction in group-living fishes. Front Ecol Evol. 8, 15(2020).
  23. Gerlai, R. Misbehaving fish: the role of these simple vertebrates in the analysis of human brain function and dysfunction. Brain Res. 1863, 149795(2025).
  24. Norton, W., Bally-Cuif, L. Adult zebrafish as a model organism for behavioural genetics. BMC Neurosci. 11 (1), 90(2010).
  25. Faustino, A. I., Tacão-Monteiro, A., Oliveira, R. F. Mechanisms of social buffering of fear in zebrafish. Sci Rep. 7, 44329(2017).
  26. Akinrinade, I. D., Varela, S. A. M., Oliveira, R. F. Sex differences in social buffering and social contagion of alarm responses in zebrafish. Anim Cogn. 26 (4), 1307-1318 (2023).
  27. Ariyasiri, K., et al. Pharmacological (ethanol) and mutation (sam2 KO) induced impairment of novelty preference in zebrafish quantified using a new three-chamber social choice task. Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry. 88, 53-64 (2018).
  28. Angiulli, E., et al. Increase in environmental temperature affects exploratory behaviour, anxiety and social preference in Danio rerio. Sci Rep. 10 (1), 5385(2020).
  29. Lindeyer, C. M., et al. Nonapeptide influences on social behaviour: effects of vasotocin and isotocin on shoaling and interaction in zebrafish. Behaviour. 152 (7-8), 897-915 (2015).
  30. Landin, J., et al. Oxytocin receptors regulate social preference in zebrafish. Sci Rep. 10 (1), 5435(2020).
  31. Aslanzadeh, M., et al. The body size of stimulus conspecifics affects social preference in a binary choice task in wild-type, but not in dyrk1aa mutant, zebrafish. Zebrafish. 16 (3), 262-267 (2019).
  32. Ribeiro, D. Oxytocin receptor signalling modulates novelty recognition but not social preference in zebrafish. J Neuroendocrinol. 32 (4), e12834(2020).
  33. Velkey, A. J., et al. High fidelity: assessing zebrafish (Danio rerio) responses to social stimuli across several levels of realism. Behav Processes. 164, 100-108 (2019).
  34. Velkey, A. J., Koon, C. H., Danstrom, I. A., Wiens, K. M. Female zebrafish (Danio rerio) demonstrate stronger preference for established shoals over newly-formed shoals in the three-tank open-swim preference test. PLoS One. 17 (9), e0265703(2022).
  35. Velkey, A. J., et al. Zebrafish (Danio rerio) prefer undisturbed shoals over shoals exposed to the synthetic alarm substance hypoxanthine-3N-oxide (C5H4N4O2). Biology. 14 (3), 233(2025).
  36. Canzian, J., Fontana, B. D., Quadros, V. A., Rosemberg, D. B. Conspecific alarm substance differently alters group behavior of zebrafish populations: putative involvement of cholinergic and purinergic signaling in anxiety- and fear-like responses. Behav Brain Res. 320, 255-263 (2017).
  37. Do Nascimento, B. G., Maximino, C. Social investigation and social novelty in zebrafish: roles of salience and novelty. Behav Processes. 210, 104903(2023).
  38. Bolgan, M., O’Brien, J., Gammell, M. The behavioural repertoire of Arctic charr (Salvelinus alpinus (L.)) in captivity: a case study for testing ethogram completeness and reducing observer effects. Ecol Freshw Fish. 25 (2), 318-328 (2016).
  39. Thomsen, H., Jensen, T. H., Ydesen, K., Madsen, N. Use of ethograms to analyse shoaling behaviour of mackerel (Scomber scombrus) in an aquarium. Genet Biodivers J. , (2020).
  40. Rodriguez, A., et al. ToxTrac: a fast and robust software for tracking organisms. Methods Ecol Evol. 9 (3), 460-464 (2018).
  41. Pereira, T. D., et al. SLEAP: a deep learning system for multi-animal pose tracking. Nat Methods. 19 (4), 486-495 (2022).
  42. Mathis, A., et al. DeepLabCut: markerless pose estimation of user-defined body parts with deep learning. Nat Neurosci. 21 (9), 1281-1289 (2018).
  43. Gerlai, R. Social behavior of zebrafish: from synthetic images to biological mechanisms of shoaling. J Neurosci Methods. 234, 59-65 (2014).
  44. Collar, D. C., Thompson, J. S., Ralston, T. C., Hobbs, T. J. Fast-start escape performance across temperature and salinity gradients in mummichog Fundulus heteroclitus. J Fish Biol. 96 (3), 755-767 (2020).
  45. Collar, D. C., Hobbs, T. J., Thompson, J. S. Scaling of fast-start performance and its thermal dependence in mummichog Fundulus heteroclitus. J Fish Biol. 104 (3), 611-623 (2024).
  46. Collar, D. C., Stanley, K. L., Thompson, J. S. Fast-start performance and its dependence on temperature and salinity in sheepshead minnow (Cyprinodon variegatus). Environ Biol Fishes. 108 (10), 1515-1530 (2025).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Zachowanie społeczne rybek zebrazadanie trzech komórśledzenie DeepLabCutbezmarkerowa estymacja pozyanaliza wideo zachowańniskokosztowa konfiguracjainterakcja społecznabadania neurobehawioralne