Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Kateteryzacji tętniczej w ocenie nadciśnienia płucnego u wcześniaków jagniąt

157 wyświetleń

DOI:

10.3791/70620

8 maja 2026

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

Przedstawiamy protokół oceny nadciśnienia płucnego poprzez kateterizację serca w wcześniackim modelu owieczki ewoluującego nadciśnienia płucnego związanego z dysplazją płatkowo-pęcherzykową. Opisana metoda umożliwia bezpośrednie pomiary średniego ciśnienia tętnicy płucnej oraz ciśnienia klinowego kapilarnego płucnego i obliczanie oporu naczyń płucnych.

Streszczenie

Dysplazja bronchopulmonalna z nadciśnieniem płucnym (BPD-PH) jest niszczycielskim powikłaniem przedwczesnego porodu, które wiąże się ze zwiększoną morbidytetem i mortalitetem. Przedwczesny poród zakłóca normalny rozwój płuc i układu krążenia, a ekspozycje pooperacyjne takie jak wentylacja mechaniczna i terapia tlenową mogą dalsze upośledzać wzrost płuc i naczyń płucnych, przyczyniając się do rozwoju BPD-PH. W przedwczesnym modelu owieczek ewoluującej BPD, owieczki są rodzone przedwcześnie i wentylowane mechanicznie przez do 21 dni, łącząc przerwany rozwój płuc z uszkodzeniem związanym z wentylacją mechaniczną i stresem oksydacyjnym, aby naśladować kluczowe cechy ewoluującego BPD-PH.

Celem protokołu cewnikowania sercowego jest bezpośrednia ocena hemodynamicznej sytuacji płucnej u przedwcześnie urodzonych i pełnoletnich owieczek. Owczki są intubatowane, wentylowane mechanicznie i sedowane przez cały czas trwania badania. W czasie cewnikowania sercowego, cewnik Swan-Ganz jest przesuwany przez zewnętrzną żyłę szyjną do żyły głównej i następnie przez prawe przedsionek, prawe komorę i główną tętnicę płucną. Pozycja cewnika jest potwierdzana przez identyfikację charakterystycznych fali ciśnienia uzyskanych podczas przesuwania przez komory po prawej stronie serca. Średnie ciśnienie tętnicy płucnej i ciśnienie klinowe węzła kapilarnego są mierzone za pomocą transdukcji ciśnienia, a wydalanie sercowe jest określane przez termodylucję, aby umożliwić obliczenie oporu naczyń płucnych.

Protokół zapewnia reproduktywalne pomiary hemodynamicznej sytuacji płucnej, które są zgodne z tymi uzyskanymi podczas klinicznego cewnikowania sercowego u ludzkich noworodków. Umożliwiając bezpośrednią ocenę ciśnienia i oporu naczyń płucnych, ta metoda zwiększa przydatność przedwczesnego modelu owieczkowego do ewaluacji mechanyzmu potencjalnych terapii dla BPD-PH.

Wprowadzenie

Dysplazja oskrzelowo-płucna (BPD) występuje u maksymalnie 45% wcześniaków urodzonych przed 28. tygodniem ciąży, jej zapadalność w Stanach Zjednoczonych rośnie, a schorzeniu temu może towarzyszyć nadciśnienie płucne (PH, BPD-PH)1,2,3. Przewlekły proces choroby sercowo-płucnej rozpoczyna się w momencie przerwania prawidłowego dojrzewania płuc wskutek przedwczesnego urodzenia i jest potęgowany przez postnatalne uszkodzenia wynikające z wentylacji mechanicznej oraz stresu oksydacyjnego. Utrwalające się uszkodzenie płuc prowadzi do przebudowy naczyń płucnych i rozwoju PH4,5.

Pediatryczne nadciśnienie płucne (PH) definiuje się jako średnie ciśnienie w tętnicy płucnej (mPAP) ≥20 mmHg u dzieci w wieku >3 miesięcy. Jeśli wskaźnik oporu naczyniowego płuc (PVR) wynosi również >3 jednostek Wooda (WU) x m2, a ciśnienie zaklinowane w tętniczkach płucnych (PCWP) < 15 mmHg, u pacjentów rozpoznaje się przedkapilarne PH, prawdopodobnie wtórne do choroby naczyniowej płuc w kontekście BPD-PH6. Opór naczyniowy płuc oblicza się na podstawie pomiarów hemodynamicznych uzyskanych podczas cewnikowania serca, stosując równanie

Równanie oporu naczyniowego płuc, PVR=(mPAP−PCWP)/CO, obliczenia hemodynamiczne.

Częstość występowania BPD-PH wzrasta wraz z ciężkością BPD, występując u 25–41% niemowląt z ciężką postacią BPD7,8. BPD-PH wiąże się ze znacznie zwiększoną zachorowalnością i śmiertelnością. Metaanalizy wskazują na iloraz szans dla śmiertelności na poziomie 4,4–6,4 w porównaniu do BPD bez PH, a wskaźniki śmiertelności w ciągu dwóch lat dla noworodków z BPD i ciężkim, uporczywym PH wynoszą 40–47%9. BPD-PH prowadzi również do dłuższych hospitalizacji, większego zapotrzebowania na tlen domowy, zwiększonego ryzyka tracheostomii oraz wyższego wskaźnika zaburzeń neurorozwojowych7,10,11.

Z uwagi na wysoką zapadalność i śmiertelność związaną z BPD-PH, dokładna ocena nadciśnienia płucnego (PH) jest niezbędna w celu przeprowadzenia stratyfikacji ryzyka, monitorowania i zarządzania terapeutycznego, a także w celu ułatwienia optymalnego doboru kandydatów do badań klinicznych mających na celu poprawę wyników leczenia. Chociaż echokardiografia jest często stosowana do wstępnego przesiewu w kierunku PH, cewnikowanie prawej komory serca pozostaje złotym standardem w diagnozowaniu PH we wszystkich grupach wiekowych, w tym u noworodków, ponieważ umożliwia bezpośredni pomiar mPAP, PCWP i CO12. Cewnikowanie serca pozwala na dokładne i precyzyjne określenie PVR, dlatego jest niezbędne w badaniach klinicznych i translacyjnych, zwłaszcza w modelach na dużych zwierzętach, w których testowane są potencjalne środki terapeutyczne na PH12,13.

Model przedwcześnie urodzonych jagniąt jest unikalnym modelem dużego zwierzęcia w badaniach nad rozwijającym się BPD-PH, który może być wykorzystywany do pogłębienia zrozumienia mechanizmów choroby oraz testowania nowych terapii14. Jagnięta przedwcześnie urodzone są wyciągane w późnej fazie kanalikowej lub wczesnej fazie pęcherzykowej rozwoju płuc (co odpowiada około 24 do 28 tygodniom ciąży) poprzez cięcie cesarskie po podaniu sterydów prenatalnych. Jagnięta są intubowane i reanimowane przy użyciu zstandaryzowanej techniki opartej na wytycznych neonatologicznych. W ramach standardowej opieki na oddziale intensywnej terapii noworodków otrzymują one egzogenny surfaktant, kofeinę oraz wczesne żywienie enteralne (dodatkowo do dożylnego (IV) podawania glukozy)15. Wcześniejsze badania z wykorzystaniem tego modelu wykazały, że po 21 dniach wentylacji mechanicznej z parametrami fizjologicznymi zbliżonymi do tych stosowanych u wcześniaków, pomiary ciśnień w naczyniach płucnych oraz pośmiertna histologia płuc ujawniły podwyższone PVR, uproszczenie pęcherzyków płucnych oraz inne zmiany histologiczne zgodne z rozwijającym się BPD-PH15,16. Jednakże we wcześniejszych podejściach wykonywano torakotomie w celu bezpośredniego wprowadzenia przewodu termistora i cewnika do pnia płucnego, co samo w sobie mogło przyczynić się do rozwoju BPD-PH.

W niniejszym materiale opisano mniej inwazyjny protokół cewnikowania prawego serca poprzez zewnętrzną żyłę szyjną w celu bezpośredniego pomiaru hemodynamiki płucnej i obliczenia PVR u przedwcześnie i w terminie urodzonych jagniąt. Technika ta pozwala na uzyskanie powtarzalnych pomiarów ciśnień w naczyniach płucnych oraz CO, które odpowiadają wynikom uzyskiwanym podczas klinicznego cewnikowania serca u noworodków ludzi. Protokół ten zwiększa użyteczność translacyjną modelu przedwcześnie urodzonych jagniąt w badaniach mechanistycznych i przedklinicznych testach terapeutycznych w przypadku BPD-PH.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie procedury eksperymentalne zostały zatwierdzone z góry i przeprowadzane zgodnie ze standardami dotyczącymi postępowania z zwierzętami i szkoleń Komitetu Opieki nad Zwierzętami Instytucjonalnymi Uniwersytetu Utah.

1. Ustawienie pozycji

  1. Umieść jagnięte na brzuchu w smyczy i upewnij się, że wcześniej umieszczony dostęp naczyniowy działa (pępkowy lub żyła szyjna centralna).
  2. Utrzymuj infuzję deksymedetomidyny na poziomie 0,2 do 1,0 mcg/kg/h w celu sedacji i dostosuj szybkość infuzji, aby osiągnąć pożądany poziom sedacji.
  3. Zastosuj dodatkową szybko działającą sedacje i analgezję za pomocą pentobarbitalu (1 mg/kg/dawka w trybie IV) i buprenorfiny (5 μg/kg/dawka w trybie IV) w razie potrzeby.
  4. Ogolić prawą lub lewą szyję nad zewnętrzną żyłą szyjną i wstrzyknąć 0,5 ml 1% lidokainy podskórnie nad miejscem. Wysterylizuj miejsce za pomocą trzech na przemian robionych roztworów betadyny i alkoholu.
  5. Założyć sterylne rękawiczki i odpowiednie środki ochrony osobistej. Usuwać wszystkie igły i inne ostre narzędzia natychmiast po użyciu do zatwierdzonego pojemnika na ostre przedmioty.
  6. Napełnij kateter Swan-Ganz 2% heparynowym roztworem fizjologicznym i podłącz dystalne gniazdo do przetwornika ciśnienia dla ciągłego rejestrowania w LabChart.
  7. Wyzeruj przetwornik ciśnienia.
  8. Monitoruj nasycenie tlenem (SpO2), ciśnienie tętnicze i częstość akcji serca podczas całego zabiegu. Wstrzymaj zabieg, aby pozwolić na ustabilizowanie się wskaźników życiowych lub przerwij zabieg, jeśli SpO2 <60% przez 2 min, częstość akcji serca <60 uderzeń na minutę lub częstość oddechu >100 oddechów na minutę pomimo dostosowań wentylatora i frakcji tlenu wdechowego lub jeśli ciśnienie tętnicze spada >15% w porównaniu z poziomem wyjściowym przed zabiegiem.

2. Wprowadzenie i wprowadzenie katetrum

  1. Użyj ostrza nr 11, aby wykonać nacięcie 1 cm nad zewnętrzną żyłą szyjną i odsłoń naczynie.
  2. Zdziel zewnętrzną żyłę szyjną, a następnie izoluj ją, przepuszczając 3,0 jedwabny sznurek pod żyłą. Użyj tego sznurka, aby utrzymać kontrolę nad naczyniem w przypadku krwawienia podczas wprowadzania katetrum.
  3. Wprowadź 18 G, 2,5-calową igłę do naczynia.
  4. Wprowadź drut prowadzący przez igłę za pomocą techniki Seldingera.
  5. Wprowadź 6 Fr wprowadzacz (napełniony heparynowym roztworem fizjologicznym) do naczynia nad drutem prowadzącym.
  6. Wyjmij drut prowadzący, podczas gdy wprowadzacz pozostaje na miejscu.
  7. Zszyj wprowadzacz, aby zabezpieczyć jego pozycję w naczyniu na głębokości około 3,0 cm do 3,5 cm, używając wcześniej umieszczonego jedwabnego węzła.
  8. Potwierdź powrót krwi z wprowadzacza poprzez aspirację, a następnie spłucz wprowadzacz heparynowym roztworem fizjologicznym.
  9. Przeprowadź wcześniej przygotowane katetr Swan-Ganz przez wprowadzacz i stopniowo wprowadzaj, monitorując przetworzone fale ciśnienia.
    UWAGA: Sprawdź i ponownie sprawdź wypoziomowanie i zero przetwornika przed wprowadzeniem katetrum. Małe błędy w wypoziomowaniu przetwornika mogą zmienić ciśnienie w tętnicy płucnej, PCWP, mPAP i PVR. Nawet 1-2 cm błąd wypoziomowania może znacząco zmienić wyniki.

3. Pomiar ciśnień i wydału serca (CO)

  1. Wprowadź katetr Swan-Ganz, aż do charakterystycznego śladu ciśnienia żylnego zostanie zastąpiony charakterystycznym śladem ciśnienia w prawym przedsionku (Rysunek 1). Zauważ, że ciśnienie w prawym przedsionku zwykle nie sięga zera (choć może to wystąpić w przypadku ciężkiego niedokrwienia). Rejestruj przetworzone ciśnienia.
  2. Wprowadź katetr Swan-Ganz dalej, aż zostanie zobaczony charakterystyczny ślad ciśnienia w prawej komorze (komorowy) (Rysunek 1). Zauważ, że ciśnienie w prawej komorze sięga zera. Rejestruj przetworzone ciśnienia.
    UWAGA: Artefakt biczenia katetrum spowodowany ruchem końcówki katetrum z przepływem krwi może powodować fałszywie wysokie wzrosty skurczowe.
  3. Powoli wprowadź katetr Swan-Ganz, aż uzyskany zostanie ślad tętnicy płucnej. Zauważ, że ciśnienie w tętnicy płucnej (tętnicowej) nie sięga zera. Rejestruj przetworzone ciśnienia.
    UWAGA: Jeśli istnieją trudności z wprowadzaniem katetrum do tętnicy płucnej, balon może być krótkotrwale napompowany, aby zachęcić końcówkę katetrum do ruchu w kierunku zastawki płucnej. Inną techniką rozwiązywania problemów jest przemieszczenie zwierzęcia. Przetłumienie fali może wystąpić z powodu zgięć w przewodzie i wyprodukować fałszy

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Przewidywane zapisy ciśnień z prawego przedsionka, prawej komory, tętnicy płucnej oraz z miejsca pomiaru ciśnienia zaklinowania w naczyniach płucnych przedstawiono na Rysunku 1. Po wprowadzeniu do żyły centralnej zapis ciśnienia powinien wykazywać falujący przebieg o bardzo niskim ciśnieniu (nieprzedstawiony na rysunku). Możliwe są zmienności oddechowe. Nie powinny występować gwałtowne wzrosty ciśnienia (charakterystyczne dla zapisu tętniczego). Po wprowadzeniu do prawego przedsionka przebie...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Kateteryzacji serca zapewnia bezpośrednie pomiary mPAP i obliczanie CO w modelu wcześniaka owieczki ewoluującego BPD-PH. Procedura jest technicznie skomplikowana i wymaga specjalistycznego sprzętu, ale zapewnia dokładne i możliwe do powtórzenia pomiary, dlatego jest preferowaną procedurą diagnostyczną u ludzi i jest uważana za lepszy punkt końcowy badania klinicznego. Kiedy kateteryzacji serca dokonuje się w modelu wcześniaka owieczki, kluczowe kroki procedury to pomyślne przesunięcie katetra do prawej komory, dokładna o...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają żadnych istotnych konfliktów interesów do ujawnienia.

Podziękowania

Wyrażamy uznanie dla licznych studentów na Uniwersytecie w Utah, którzy pomagają w obsłudze jagniąt i umożliwiają przeprowadzenie tych badań. Wyrażamy również uznanie dla Wydziału Pediatrii na Uniwersytecie w Utah za jego ciągłe wsparcie dla naszego laboratorium.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
0.45% Sodium Chloride Injection USPBaxter2B1313
3-Way Stopcock w/ Swivel Male Luer LockMedexMX5311L
48 in (121.9 cm) Extension SetMedexMX048
5 mL SyringeTerumoSS-05L
Bridge AmpADInstrumentsFE221/CS
CONTINU-FLO Solution Set with CONTROL-A-FLOW RegulatorBaxter2C6895
DB9M - DB9F Cable (400 mm)ADInstrumentsMLAC02
DIN(8) to MLT0699 or MLT0670 Cable (3.9 m)ADInstrumentsMLAC06
Disposable BP Transducer (Stopcock)ADInstrumentsMLT0670
Injectate Temperature ProbeEdwards Lifesciences9850A
LabChart 8.1.30 for WindowsADInstrumentsPro Upgrade
Patient CCO CableEdwards Lifesciences70CC2
Percutaneous Sheath Introducer Kit with Integral Hemostasis Valve/Side Port for use with 4 - 6 Fr. CathetersArrowAK-09601
Power Lab CADInstrumentsPLC01
Swan-Ganz True Size Thermodilution CatheterEdwards Lifesciences132F56 Fr, 10 cm, Ballon Volume 0.7 mL
Vigilance II MonitorEdwards LifesciencesVIG2

Bibliografia

  1. Lee, S. M., et al. Evaluation of trends in bronchopulmonary dysplasia and respiratory support practice for very low birth weight infants: a population-based cohort study. J Pediatr. 243, 47-52.e2 (2022).
  2. Lapcharoensap, W., et al. Hospital variation and risk factors for bronchopulmonary dysplasia in a population-based cohort. JAMA Pediatr. 169 (2), e143676 (2015).
  3. Moreira, A., et al. Rates of bronchopulmonary dysplasia in very low birth weight neonates: a systematic review and meta-analysis. Respir Res. 25 (1), 219 (2024).
  4. Mourani, P. M., et al. Early pulmonary vascular disease in preterm infants at risk for bronchopulmonary dysplasia. Am J Respir Crit Care Med. 191 (1), 87-95 (2015).
  5. Altit, G., et al. Pathophysiology, screening and diagnosis of pulmonary hypertension in infants with bronchopulmonary dysplasia: a review of the literature. Paediatr Respir Rev. 23, 16-26 (2017).
  6. Hansmann, G., et al. 2019 updated consensus statement on the diagnosis and treatment of pediatric pulmonary hypertension: the European Pediatric Pulmonary Vascular Disease Network (EPPVDN), endorsed by AEPC, ESPR, and ISHLT. J Heart Lung Transplant. 38 (9), 879-901 (2019).
  7. Arjaans, S., et al. Identification of gaps in the current knowledge on pulmonary hypertension in extremely preterm infants: a systematic review and meta-analysis. Paediatr Perinat Epidemiol. 32 (3), 258-267 (2018).
  8. Hansmann, G., et al. Pulmonary hypertension in bronchopulmonary dysplasia. Pediatr Res. 89 (3), 446-455 (2021).
  9. Mascarenhas, D., et al. Pulmonary hypertension in preterm neonates with bronchopulmonary dysplasia: a meta-analysis. Arch Dis Child Fetal Neonatal Ed. 110 (4), 344-352 (2025).
  10. Abman, S. H., et al. Pediatric pulmonary hypertension: guidelines from the American Heart Association and American Thoracic Society. Circulation. 132 (21), 2037-2099 (2015).
  11. Khemani, E., et al. Pulmonary artery hypertension in formerly premature infants with bronchopulmonary dysplasia: clinical features and outcomes in the surfactant era. Pediatrics. 120 (6), 1260-1269 (2007).
  12. Abman, S. H., Ivy, D. D., Archer, S. L., Wilson, K. Executive summary of the American Heart Association and American Thoracic Society joint guidelines for pediatric pulmonary hypertension. Am J Respir Crit Care Med. 194 (7), 898-906 (2016).
  13. Sirajuddin, A., et al. ACR appropriateness criteria suspected pulmonary hypertension: 2022 update. J Am Coll Radiol. 19 (11 Suppl), S502-S512 (2022).
  14. Albertine, K. H. Utility of large-animal models of BPD: chronically ventilated preterm lambs. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 308 (10), L983-L1001 (2015).
  15. Albertine, K. H., et al. Chronic lung disease in preterm lambs: effect of daily vitamin A treatment on alveolarization. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 299 (1), L59-L72 (2010).
  16. Bland, R. D., et al. Inhaled nitric oxide effects on lung structure and function in chronically ventilated preterm lambs. Am J Respir Crit Care Med. 172 (7), 899-906 (2005).
  17. Nasr, V. G., DiNardo, J. A. Sedation and analgesia in pediatric cardiac critical care. Pediatr Crit Care Med. 17 (8 Suppl 1), S225-S231 (2016).
  18. Odegard, K. C., et al. SCAI/CCAS/SPA expert consensus statement for anesthesia and sedation practice: recommendations for patients undergoing diagnostic and therapeutic procedures in the pediatric and congenital cardiac catheterization laboratory. Anesth Analg. 123 (5), 1201-1209 (2016).
  19. But, A. K., et al. The effects of pre-operative dexmedetomidine infusion on hemodynamics in patients with pulmonary hypertension undergoing mitral valve replacement surgery. Acta Anaesthesiol Scand. 50 (10), 1207-1212 (2006).
  20. Lazol, J. P., et al. Effect of dexmedetomidine on pulmonary artery pressure after congenital cardiac surgery: A pilot study. Pediatr Crit Care Med. 11 (5), 589-592 (2010).
  21. Ebert, T. J., et al. The effects of increasing plasma concentrations of dexmedetomidine in humans. Anesthesiology. 93 (2), 382-394 (2000).
  22. Janda, S., Shahidi, N., Gin, K., Swiston, J. Diagnostic accuracy of echocardiography for pulmonary hypertension: a systematic review and meta-analysis. Heart. 97 (8), 612-622 (2011).
  23. Nawaytou, H., et al. Clinical utility of echocardiography in former preterm infants with bronchopulmonary dysplasia. J Am Soc Echocardiogr. 33 (3), 378-388.e1 (2020).
  24. Douglass, M., et al. Folic acid, either solely or combined with L-citrulline, improves NO signaling and ameliorates chronic hypoxia-induced pulmonary hypertension in newborn pigs. Physiol Rep. 9 (21), e15096 (2021).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

dysplazja oskrzelowo p ucnahemodynamika p ucnawentylacja mechanicznaop r naczyniowy p uccewnik Swan Ganzaci nienie w t tnicy p ucnejmetoda termorozcie czenia
Film wkrótce dostępny