Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Opracowanie modelu ciężkiego urazu płuc wybuchowego u kozy do oceny ultrasonograficznej

65 wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/70656

⸱

29 maja 2026

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Trauma Medical Center, Daping Hospital, 2No. 951 Hospital of PLA

W tym artykule

Podsumowanie

Badanie to z powodzeniem ustanowiło model ciężkiego urazu płuc spowodowanego wybuchem u kóz przy ciśnieniu napędowym 4,5 MPa, powodującym poważne urazy i śmiertelność na poziomie 41,67%. Wyniki ultrasonografów płuc dynamicznie oceniały uszkodzenia, korelując z tradycyjnymi wskaźnikami, co wykazało jego wartość diagnostyczną. Ten powtarzalny model rozwija diagnostykę i terapie ostrych urazów płuc.

Streszczenie

Uszkodzenie płuc spowodowane wybuchem (BLI) powoduje poważne uszkodzenia płuc i wysoką zachorowalność, zwłaszcza w warunkach wojskowych i przemysłowych, prowadząc do krwotoków i potencjalnej niewydolności oddechowej, co podkreśla potrzebę ulepszonej diagnostyki i leczenia. Celem tego badania było opracowanie standaryzowanego modelu ciężkiego BLI u kóz, aby ocenić dokładność i wykonalność ultrasonografii w miejscu opieki do oceny dynamicznej. Kozy były poddawane kontrolowanemu nadciśnieniu wybuchowym za pomocą biologicznej rurki uderzeniowej (BST-I.) przy ciśnieniach napędowych odpowiednio 4,0 MPa (n = 4), 4,5 MPa (n = 12) i 5,0 MPa (n = 4). Zarejestrowano kluczowe parametry, takie jak szczytowe nadciśnienie. Parametry życiowe, wyniki USG płuc (LUS), wskaźnik tlenowania (PaO₂/FiO₂) oraz woda z płuc pozanaczyniowych (EVLW) były monitorowane na początku (0 godzin przed urazem) oraz 0,5 godziny, 3 godziny, 6 godzin, 9 godz. i 12 godzin po urazzie. Tomografia komputerowa klatki piersiowej (CT) w 0 i 12 godzinach określiła ilościowy stosunek urazów płuc, a badanie ogólne po eutanazji oceniało wyniki krwotoków płucnych i urazów. Przy 4,5 MPa szczytowe ciśnienie wyniosło 396,92 kPa, przy śmiertelności 41,67% po urazie, podczas gdy przy 4,0 MPa śmiertelność wynosiła 0%. LUS wzrastał z czasem, wykazując ujemną korelację z PaO₂/FiO₂ oraz dodatnią korelację z EVLW po 3h, 6h i 9h oraz dodatnią korelację z uszkodzeniem płuc po 12 h. Wskaźnik powierzchni brutto urazu płuc wynosił 42,14% w grupie z 4,5 MPa, co wskazuje na ciężkie uszkodzenie, podczas gdy 4,0 MPa wykazało umiarkowane uszkodzenie. Model 4,5 MPa nadawał się do badania poważnych urazów, w przeciwieństwie do 4,0 MPa, które powodowało jedynie umiarkowane uszkodzenie, a 5,0 MPa skutkowało 100% śmiertelnością. Stworzono powtarzalny model kozy urazu płuc spowodowanego wybuchem, skutecznie wykorzystujący LUS do nieinwazyjnej oceny uszkodzeń płuc w czasie, co stanowi podstawę do monitorowania i badania strategii terapeutycznych w przypadku ostrych urazów płuc.

Wprowadzenie

Ekspozycja na wybuchy, zarówno w warunkach wojskowych, jak i cywilnych, nadal stanowi główny czynnik przyczyniający się do zachorowalności i śmiertelności, przy czym uszkodzenia płuc są głównym czynnikiem decydującym o wyniku1. Współczesne dowody potwierdzają, że stłuczenie płuc jest krytycznym czynnikiem ryzyka poważnych powikłań układu oddechowego, takich jak zapalenie płuc i ostry zespół niedogodności oddechowej (ARDS), które znacząco wpływają na rokowanie osób dotkniętych chorobą2. Szybka i precyzyjna ocena stopnia urazu płuc jest zatem niezbędna, aby kierować leczeniem klinicznym i poprawić przeżywalność.

Tomografia komputerowa (CT) jest skuteczna w ocenie nasilenia urazu płuc spowodowanego wybuchem (BLI)3. Jednak wiąże się to z narażeniem na promieniowanie jonizujące i może być niepraktyczne w scenariuszach związanych z masowymi ofiarami lub ograniczonymi zasobami medycznymi. Badanie kliniczne perforacji błony bębenkowej zostało zbadane jako potencjalny marker urazu wywołanego wybuchem płucnym, jednak badania wskazują, że izolowana perforacja błony bębenkowej nie jest wiarygodnym wskaźnikiem ukrytego urazu płucnego ani złego rokowania, a zatem nie wyklucza potrzeby dalszych badań4. Obraz kliniczny ofiar wybuchu jest bardzo zróżnicowany; Niektórzy pacjenci zgłaszają się ostro, podczas gdy inni mogą rozwinąć niewydolność oddechową 12–24 godzin później, co podkreśla kluczowe znaczenie częstych ponownych ocen na oddziale ratunkowym w celu wykrycia pominiętych urazów, szczególnie BLI5. Te ograniczenia podkreślają pilną potrzebę szybkiej, kompatybilnej z pacjentem techniki obrazowania, która pozwoli szybko ocenić nasilenie stłuczenia płuc. W przypadku masowych wypadków narzędzia zdolne do szybkiego sortowania i oceny są kluczowe dla optymalizacji alokacji zasobów i poprawy ogólnych rezultatów5.

Ultrasonografia klatki piersiowej stała się niezbędnym narzędziem w środowiskach intensywnej terapii, dziękiswojej pracy w czasie rzeczywistym, nieinwazyjnej i przenośnej 6. Jego ugruntowana rola w diagnozowaniu różnych chorób płuc opłucnej i przypuszkowej sprawia, że jest to bardzo obiecująca metoda dynamicznej oceny urazów płuc spowodowanych wybuchem. Objawy sonograficzne, takie jak konsolidacja płuc, bronchogramy, nieprawidłowości linii opłucnej oraz artefakty ogonowe-kometowe, mogą być wskaźnikami rozległości i nasilenia stłuczenia płuc oraz obrzęku7. Brak promieniowania jonizującego czyni go szczególnie odpowiednim dla pacjentów wymagających wielokrotnych ocen, a dostępność w środowiskach o ograniczonych zasobach stanowi istotną zaletę.

Chociaż istniejąca literatura wspiera stosowanie ultrasonografii w miejscu opieki (POCUS) do triage i monitorowania, ultrasonografia jest już rutynowo stosowana w ocenie urazów (np. rozszerzona ocena z użyciem sonografii urazowej, eFAST) do wykrywania odmy opłucnowej ikrzątającej 8. Niemniej jednak, rygorystyczna weryfikacja jego dokładności i wykonalności do oceny ciężkiego stłuczenia płuc wymaga translacyjnego i fizjologicznie istotnego modelu zwierzęcego. Celem tych badań jest stworzenie ustandaryzowanego modelu ciężkiego urazu płucnego wybuchowego u kóz, który będzie służył jako platforma do systematycznej oceny użyteczności ultrasonografii w miejscu opieki w szybkim triage i ciągłym monitorowaniu tego zagrażającego życiu schorzenia.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie eksperymentalne metodologie opisane w tym manuskrypcie uzyskały zgodę Komitetu ds. Dobrostanu Zwierząt Laboratoryjnych i Etyki Trzeciego Wojskowego Uniwersytetu Medycznego (SCXK (Yu) 2017-0002). Ponadto wszystkie procedury związane ze zwierzętami były przeprowadzane w ścisłej zgodności z wytycznymi dotyczącymi użytkowania zwierząt ustanowionymi przez komisję zatwierdzającą.

1. Zwierzęta doświadczalne

  1. Przygotuj zdrowe kozy, 3–6 miesięcy, samice, ważące około 15 kg.

2. Platforma kontuzji

  1. Powoduje uszkodzenia płuc za pomocą biologicznej rurki wstrząsowej (dużej) (BST-I.), która ma długość 39,4 m (Rysunek 1) i jest podzielona dwoma półsztywnymi foliami aluminiowymi na dwie sekcje – sekcję napędową i sekcję eksperymentalną, wykorzystując odpowiednio ciśnienie napędowe 4,0 MPa, 4,5 MPa i 5,0 MPa.

3. Przygotowanie zwierząt

  1. Stawiaj na czczenie przez 24 godziny i pozbawiaj je wody przez 8 godzin przed eksperymentem.
  2. Waż i zapisuj.
  3. Do wprowadzenia znieczulenia stosuj midazolam (zastrzyk domięśniowy: 1 mg/kg).
  4. Ogol sierść na klatce piersiowej, szyi i pachwinach kozy, a następnie nałóż krem depilacyjny, aby całkowicie usunąć pozostałe futro.

4. Rysowanie przegrod do wykrywania ultrasonografii

  1. Znieczulaj kozę 3% pentobarbitalu sodu (10–20 mg/kg) przez igłę wbijającą się w żyłę odpiszczelową. Trzymaj ją w rozluźnionej pozycji bocznej, z kończynami prostopadle do tułowia i głową wyprostowaną.
  2. Przesuń sondę ultradźwiękową równolegle do przestrzeni międzyżebrowej od dołu do góry, z grzbietowej na przednią, aby zaznaczyć krawędzie płuca.
  3. Narysuj kolejne prostokąty o długości 2,5 centymetra wzdłuż przestrzeni międzyżebrowej w obszarze płuca jako przegrody do wykrywania ultrasonografii. Łącznie istnieje 66 podziałów, z czego 33 po prawej i 33 po lewej, a liczba podziałów w każdej przestrzeni międzyżebrowej wynosi odpowiednio 1, 2, 2, 5, 5, 5, 5, 4, 3, 1, odpowiednio od pierwszej przestrzeni międzyżebrowej do dziesiątej (Rysunek 2).

5. Operacja chirurgiczna

  1. Upewnij się, że koza jest pod narkozą. Jeśli nie, wstrzyknij dodatkowe 3% pentobarbitalu sodu w wysokości 10 mg/kg.
  2. Cewnikowanie żyły szyjnej
    1. Ustaw kozę w pozycji lewej po boku i odpowiednio ją unieruchom.
    2. Wykonaj podłużne nacięcie skórne, o długości około 4 cm, nad środkową trzecią bruzdy szyjnej. Wykonaj tępe rozwarstwienie tkanki podskórnej oraz mięśnia skórnego colli, aby odsłonić i odizolować żyłę szyjną zewnętrzną.
    3. Należy założyć centralny cewnik żylny o podwójnym lumenie (7Fr) pod przewodnictwem igły wprowadzającej. Przesuń cewnik o około 15 do 20 cm, aż jego czubek znalazł się w żyłce przedkomorowej kozy, około 2 cm od prawego przedsionka. Podwiązuj i mocno zamocuj cewnik.
    4. Połączyć dystalny lumen za pomocą trójstopniowego zaworu z czujnikiem temperatury i przetwornikiem ciśnienia do centralnego monitorowania ciśnienia żylnego i wstrzyknięcia lodowato zimnej soli fizjologicznej. Podłącz światło proksymalne za pomocą trójkątnego zaworu z linią do infuzji dożylnej w celu podania płynu i dodatkowego znieczulenia.
  3. Intubacja tchawicowa
    1. Ustaw kozę w pozycji leżącej grzbietowej i zabezpiecz szyję w wyprostowaniu.
    2. Wykonaj podłużne nacięcie skóry o długości 5–6 cm wzdłuż linii środkowej. Użyj tępego rozwarstwienia, aby oddzielić mięśnie mostkowate i odsłonić segment tchawicy o długości 2–3 cm.
    3. Pod odsłoniętą tchawicą umieść kawałek niechłonnego szwu, aby delikatnie ją unieść i ustabilizować. Wykonaj poziome nacięcie w kształcie litery "T" przez 2–3 pierścienie tchawicowe w środku stabilizowanego segmentu.
    4. Wprowadź do lumenu tchawicy rurkę z mankietem 6.0 i przesuwaj ją dystansowo. Napompuj mankiet. Zszyj nacięcie tchawicowe luźno i mocno przyszyj rurkę do skóry. Podłącz rurkę tchawicową bezpośrednio do obwodu respiratora mechanicznego.
      UWAGA: Parametry wentylacyjne: tryb wentylacji to przerywana wentylacja dodatniego ciśnienia (IPPV); objętość pływowa (VT) jest ustawiona na 8 mL/kg; tempo oddechu (RR) utrzymuje się na poziomie 15 oddechów na minutę; stosunek wdechu do wydechu (I: E) jest skonfigurowany jako 1:1,5; przepływ (V) ustalony jest na 7,2 L/min; udział tlenu wdechowego (FIO2) jest skorygowany do 21%; dodatnie ciśnienie końcowe wydechowe (PEEP) ustawia się na 3,9 cm H2O; a ciśnienie wdechowe (Pinsp) waha się od 9 do 12 cm H2O.
  4. Cewnikowanie tętnic udowych
    1. Ustaw kozę w pozycji lewej po boku i odpowiednio ją unieruchom.
    2. Wykonaj 3–4 cm podłużne nacięcie skóry wzdłuż przyśrodkowej strony pachwiny. Stosuj techniki tępego przecięcia, aby odsłonić pęczka nerwowo-naczyniowego kości udowej, dbając o staranne oddzielenie tętnicy udowej od sąsiedniej żyły i nerwu za pomocą kombinacji tępych i ostrych metod rozwarstwienia.
    3. Wykonaj małą poprzeczną arteriotomię izolowanego segmentu tętnicy udowej i włóż cewnik termorozcieńczający Picco (4Fr) do tętnicy. Przesuń cewnik na 16 cm, upewniając się, że czubek znajduje się w tętnicy biodrowej wspólnej. Bezpiecznie przyszyj cewnik do otaczającej skóry lub tkanki podskórnej.
      UWAGA: Uważaj, aby nie wygiąć ani nie naciskać cewnika na ścianę naczynia, ponieważ może to utrudnić dokładne pomiary transdukcji ciśnienia i termorozcieńczenia.
    4. Podłącz cewnik za pomocą trójkątnego zaworu z przetwornikiem ciśnienia do ciągłego monitorowania hemodynamicznego, takiego jak pomiar ciśnienia krwi i wody pozanaczyniowej w płucach. Linia ta jest również wykorzystywana do przerywanego pobierania krwi tętniczej. Utrzymuj ciągłe płukanie soli fizjologicznej z heparyną (1–2 mL/h), aby zapobiec zatkaniu cewnika.

6. Monitorowanie i pomiary

  1. Parametry życiowe
    1. Mierz i rejestruj parametry życiowe w następujących punktach czasowych: 0 godzin przed urazem, 0,5 godziny, 3 godziny, 6 godzin, 9 godzin i 12 godzin po urazie.
    2. Podłącz wszystkie linie czujników do modułu monitorującego PiCCO. Ustaw przetwornik ciśnienia na poziomie serca. Otwórz zaworek zaworowy na przetworniku na powietrze atmosferyczne i wykonaj zerową kalibrację zarówno linii ciśnienia tętniczego, jak i żylnego.
    3. Monitoruj i rejestruj średnie ciśnienie tętnicze (MAP). Umieść elektrody do monitorowania temperatury rdzenia (T), tętna oddechowego (RR) i tętna (HR) w określonych miejscach: po lewej stronie klatki piersiowej, między drugim a trzecim żebrom; po lewej stronie klatki piersiowej, między piątym a szóstym żebrom; oraz po prawej stronie klatki piersiowej, między drugim a trzecim żebrom.
  2. Ultrasonografia (tryb B)
    1. Wykonaj badania USG płuc w następujących momentach: 0 godzin przed urazem, 0,5 godziny, 3 godziny, 6 godzin, 9 godzin oraz 12 godzin po urazie. Utrzymuj spójną sekwencję skanowania: najpierw badaj prawe płuco, a potem lewe w każdym momencie.
    2. Umieść sondę ultrasonograficzną prostopadle do powierzchni skóry, w środku każdej przegrody. Upewnij się, że kropka markerowa sondy jest skierowana w stronę grzbietu.
    3. Pobierz nagrania, skanując przestrzenie międzyżebrowe od 10. żebra do pierwszego. Zachowaj nagrania wideo obejmujące co najmniej dwa pełne cykle oddechowe.
    4. Zastosuj następujący standaryzowany wynik ultrasonografii płuc (LUS) do zapisanych obrazów9: Przydziel dwóch wykwalifikowanych sonografów do samodzielnego przeprowadzenia procesu oceniania. Oblicz średnią obu wyników do końcowej oceny.
      UWAGA: Wynik 0 oznacza obecność linii A. Wynik 1 charakteryzuje się wieloma wyraźnie oddzielonymi liniami B lub połączeniem linii B, które obejmuje mniej niż 50% linii opłucnowej. Wynik 2 wskazuje na rozproszone koalescentyjne linie B, powszechnie nazywane "białym płucem". Wynik 3 przyznaje się, gdy pojawią się dowody konsolidacji, które mogą objawiać się echoteksturą przypominającą tkanki lub dynamicznymi bronchogramami powietrznymi.
  3. Analiza gazogramów tętnicowych (ABG)
    1. Pobieranie próbek krwi tętnic do analizy w następujących momentach: 0 godzin przed urazem, 0,5 godziny, 3 godziny, 6 godzin, 9 godzin oraz 12 godzin po urazzie.
    2. Za pomocą strzykawki najpierw aspiruj i wyrzuć heparynizowaną sól fizjologiczną oraz około 5 mL krwi z linii tętniczej PiCCO. Następnie pobieraj 0,3 mL świeżej krwi tętniczej bezpośrednio przez cewnik.
    3. Natychmiast wstrzyknąć próbkę krwi do wkładu testowego CG4+. Włóż wkład do przenośnego analizatora gazodenów krwi, aby przeprowadzić analizę.
    4. Zapisz zmierzone wartości pH, ciśnienia cząstkowego tlenu (PaO2) oraz innych istotnych parametrów. Oblicz indeks tlenowania (stosunek ciśnienia parcielnego tlenu do ułamku tlenu wdechowego, PaO₂/FiO₂).
  4. Pomiar wody w płucach pozanaczyniowych (EVLW)
    1. Wykonaj pomiary EVLW za pomocą termodylucii przezpłucnej w następujących momentach: 0 godzin przed urazem, 0,5 godziny, 3 godziny, 6 godzin, 9 godzin i 12 godzin po urazie.
    2. Ponownie wyzeruj przetworniki ciśnienia tętnicze i żylne, zgodnie z opisem w sekcji 6.1.2. Upewnij się, że na monitorze wyświetlany jest stabilny przebieg tętnicy przed dalszą pracą.
    3. Wstrzyknąć dokładnie 10 mL lodowatej (0 °C) soli fizjologicznej jako bolus przez czujnik temperatury centralnego cewnika żylnego. Zakończ zastrzyk w ciągu 7 sekund. Wykonuj trzy kolejne zastrzyki w każdym momencie. Użyj średniej z trzech pomiarów jako ostatecznej wartości EVLW.
    4. Rejestruj EVLW oraz inne parametry hemodynamiczne udostępniane przez system PiCCO.
  5. Tomografia komputerowa (CT)
    1. Wykonaj tomografię komputerową klatki piersiowej 0 godzin przed urazem i 12 godzin po urazie.
    2. Wykonaj skan za pomocą 64-slayerowego tomografa komputerowego według następującego protokołu: prąd rurki: 200 mas; napięcie lampowe: 100 kV; Czas obrotu: 0,4 s.
    3. Niech wykwalifikowany radiolog wykona skan i dalszą analizę bez znajomości warunków eksperymentalnych. Użyj specjalistycznego stanowiska roboczego do trójwymiarowej analizy objętości całkowitej objętości płuc oraz objętości uszkodzonych płuc z określonym progiem jednostki Hounsfield (HU) do segmentowania uszkodzonej tkanki płucnej. Ręcznie poprawiaj zakres obrażeń.
    4. Oblicz procent objętości uszkodzonych płuc (stosunek urazów płuc) według wzoru: (objętość uszkodzonego płuca / całkowita objętość płuc) * 100%.

7. Procedura urazów wybuchowych u kozy

  1. Losowo przydziel kozy do jednej z trzech odrębnych kategorii nadciśnienia wybuchowego za pomocą rurki bio-shock BST-I. Dostosuj ciśnienie napędowe odpowiednio do poziomów 4,0 MPa (n = 4), 4,5 MPa (n = 12) i 5,0 MPa (n = 4), aby uzyskać odpowiadające im pierwotne fale uderzeniowe.
  2. Wykonaj wszystkie pomiary i monitorowanie przed kontuzją zgodnie z Sekcją 6. Przymocuj kozę płóciennymi paskami w pozycji stojącej na ramie mocowania w rurze amortyzatora. Ustaw kozę 37,5 m od źródła wybuchu tak, że jej prawa strona zwrócona jest w stronę epicentrum wybuchu (Rysunek 3).
  3. Ustaw czujnik ciśnienia powietrza w miejscu zwierzęcia wewnątrz BST-I... Podłącz moduł kondycjonowania sygnału do systemu akwizycji danych. Zapisz parametry urazu: szczytowe nadciśnienie, czas wzrostu, dodatni czas trwania fazy oraz dodatni impuls fazowy dla każdego zdarzenia urazowego.
    UWAGA: Szczytowe nadciśnienie: Maksymalna wartość nadciśnienia generowanego przez falę uderzeniową. Czas wzrostu: Czas potrzebny do wzrostu ciśnienia z 0 do wartości szczytowej. Dodatni czas trwania fazy: Nadciśnienie pozostaje powyżej ciśnienia otoczenia po przejściu frontu uderzeniowego. Dodatni impuls fazowy: Całkowity pęd na jednostkę powierzchni wywołany przez nadciśnienie fali uderzeniowej.
  4. Natychmiast wyciągnij kozę z rury wstrząsowej po wybuchu. Wykonaj szybką ocenę ogólnego stanu kozy. Użyj urządzenia ssącego, aby szybko usunąć wszelkie krwawiące wydzieliny z rurki tchawicowej i dróg oddechowych. Natychmiast rozpocznij ręczną wentylację, jeśli zauważysz bezdech.
  5. Wykonaj wszystkie pomiary i monitorowanie po urazie zgodnie z Sekcją 6.

8. Eutanazja i sekcja zwłok

  1. Głębokie znieczulenie podaj kozie dożylnym zastrzykiem 3% pentobarbitalu sodu po zakończeniu 12-godzinnego okresu obserwacji po urazie. Wykonaj wykrwawienie przez cewnik tętnicze lub inne główne naczynie. Należy wykonać sternotomię, aby ostrożnie usunąć płuco.
  2. Wykonuj wynik brutto za pomocą oprogramowania ImageJ.
    1. Otwórz obraz brutkowego płuca w ImageJ i przekonwertuj go na 16-bitowy obraz w skali szarości, korzystając ze ścieżki menu: Image > Wpisz > 16-bitowy. (Rysunek 4A–B)
    2. Ustaw wartość w skali szarości na styku między uszkodzoną a zdrową tkanką jako próg. Wszystkie obszary powyżej tego progu oznacz na czerwono, aby reprezentować strefę kontuzji (rysunek 4C).
    3. Ręcznie odrysuj zewnętrzną krawędź tkanki płucnej, aby określić granicę całkowitej powierzchni płuca (rysunek 4D).
    4. Oblicz stosunek pikseli (obszar urazu / całkowita powierzchnia płuc) zarówno po stronie grzbietowej, jak i brzusznej, korzystając z ścieżki w menu: Analizuj > Ustaw pomiary > Ctrl + M. Upewnij się, że wybrane są opcje "Obszar", "Ułamek powierzchni" i "Limit do progu". Uśrednij te dwa stosunki, aby określić końcowy stosunek obszarów urazu dla całego płuca.
  3. Oceniaj stłuczenie płuc za pomocą standaryzowanego systemu punktacji dostosowanego do Yelverton i in.10 oraz historycznych kryteriów naszego laboratorium.
    UWAGA: Kryteria oceny urazu płuc grubego: Stopień 0 (brak urazu): Brak widocznych stłuczeń ani krwotoków. Stopień 1 (łagodny): Rozproszone wybroczyny lub stłuczenia obejmujące mniej niż 10% całkowitej powierzchni płuca. Stopień 2 (umiarkowany): Stłuczenia lub wątroby obejmujące do 30% całej powierzchni płuca. Stopień 3 (ciężki): Stłuczenia lub wątroby obejmujące do 50% całkowitej powierzchni płuca. Stopień 4 (bardzo ciężki): Stłuczenia lub wątroby obejmujące ponad 50% całej powierzchni płuca.

9. Analiza statystyczna

  1. Wszystkie analizy statystyczne wykonuj za pomocą oprogramowania SPSS (wersja 22.0).
  2. Dane ciągłe wyrażamy jako średnią ± odchylenia standardowego (x ± s).
  3. Sprawdź wszystkie zbiory danych pod kątem normalności.
  4. Stosuj test t z niezależnymi próbami, aby porównać średnie między dwiema grupami.
  5. Do analiz korelacji używaj współczynnika korelacji Pearsona.
  6. Ustaw próg istotności na p < 0,05.
    UWAGA: '#' oznacza p < 0,05, w porównaniu do wyniku sprzed kontuzji; '##' oznacza p < 0,01, w porównaniu do wyniku sprzed kontuzji. '*' oznacza p < 0,05, porównanie między grupą 4,0 MPa a grupą 4,5 MPa; '**' oznacza p < 0,01, porównanie między grupą 4,0 MPa a grupą 4,5 MPa.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

W grupie 4,5 MPa zmierzone parametry urazu są następujące: szczytowe nadciśnienie 396,92 ± 23,11 kPa, czas narastania 9,41 ± 0,32 ms, czas trwania fazy dodatniej 51,57 ± 1,39 ms oraz impuls fazowy dodatni 5884,26 ± 231,44 kPa.ms. Profil ciśnienia i czasu fali uderzeniowej przedstawiono na Rysunku 5. W kohorcie 4,0 MPa śmiertelność wynosiła 0% zarówno bezpośrednio po urazie, jak i po 12 godzinach. W kohorcie 4,5 MPa wskaźnik bezpośredniej śmiertelności po urazie wynosił 16,67% (2/12), który w...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Uszkodzenie płuc spowodowane wybuchem to poważny stan wynikający z narażenia na wybuchy. Charakteryzuje się uszkodzeniem mięścia płucnego, krwotokami pęcherzykowymi, stanem zapalnym i zaburzeniami krzepnięcia, a często przechodzi do ARDS z wysoką śmiertelnością 11,12,13. Obecne metody diagnostyczne obejmują tomografię komputerową do szczegółowej oceny morfologicznej 3,14...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Wszyscy autorzy zadeklarowali brak konfliktu interesów.

Podziękowania

Prace te zostały wsparte przez Outstanding Youth in National Defense Science and Technology (2023-JCJQ-ZQ-001), Outstanding Young Talents of National Defense Biotechnology (01-SWKJYCJJ06), Chongqing Outstanding Youth Fund (CSTB2022NSCQ-JQX0017) oraz Projekt Budowy Wojskowych Klinicznych Kluczowych Specjalizacji.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Komputer komputerowy z 64 przekrojamiGE Lightspeed, USA5133730-3
Babylog 8000Drä ger, Niemcyhttps://www.draeger.com/en_in/Products/Babylog-8000-plus
Biologiczna rurka wstrząsowa (ta duża) (BST-I)Daping Hosipital, Wojskowy Uniwersytet MedycznyBST-I
Testowy nabój CG4+Abbott, USACG4+
Centralny cewnik żylny o podwójnym lumenieBraun, NiemcyDuo V730
Elektryczne urządzenie ssąceSprzęt medyczny i Jiangsu Yuyue Supply Co., Ltd.7A-23D
Rurka tchawicowaTAMPA, HangzhouETT6014C
Heparyna sodowaChangzhou Qianhong Bio-pharma Co., Ltd.
Cewnik dożylny do jednorazowego użyciaWeihai Jierui Medical Products Co., Ltd.22G & razy; 25mm/Y-G
Oprogramowanie ImageJ
IOTech  Oprogramowanie WaveView 7.15.6IOtech, USAhttps://iotechsoftware.com/
MidazolamNhwa Pharma Co. Chinyhttp://pharma-api.com/2-2-5-midazolam-injection/
PCB  czujnikPCB Piezotronics, Inc. (USA)M102A02
Pentobarbital sodowyShanghai PharmaceuticalNA
Stacja robocza Philips IntelliSpace Portalhttps://www.philips.ca/healthcare/product/HC881101/intellispace-portal-12
Zestaw monitorujący PiccoPULSION, NiemcyPV8215
Przenośny analizator gazów we krwiAbbott, USAi-STAT 300G
Przenośne, bezprzewodowe kolorowe urządzenie ultradźwiękoweYoukey Bio-Medical Electronics Co., ChinyD-236
Krem do usuwania owłosienia Veet pureReckitt Benckiserhttps://www.veet.co.in/en/products/hair-removal-creams/

Bibliografia

  1. Rendeki, S., Molnár, T. F. Pulmonary contusion. J Thorac Dis. 11 (2), S141-S151 (2019).
  2. Lee, N. H., et al. Prediction of respiratory complications by quantifying lung contusion volume using chest computed tomography in patients with chest trauma. Sci Rep. 13 (1), 6387(2023).
  3. Bo, Y., et al. Prediction of primary blast lung injury outcomes in goats using CT and injury factors. Eur J Trauma Emerg Surg. 51 (1), (2025).
  4. Leibovici, D., Gofrit, O. N., Shapira, S. C. Eardrum perforation in explosion survivors: Is it a marker of pulmonary blast injury? Ann Emerg Med. 34 (2), 168-172 (1999).
  5. Rosenfeld, J. V., et al. Is the Australian hospital system adequately prepared for terrorism? Med J Aust. 183 (11-12), 567-570 (2005).
  6. Giovanni, V. Point-of-care lung ultrasound. Praxi.s (Bern 1994). 103 (12), (2014).
  7. Mathis, G., et al. Wfumb position paper on reverberation artifacts in lung ultrasound: B-lines or comet-tails? Med Ultrason. 23 (1), 70-73 (2021).
  8. Sharma, Y., Obidigbo, B., P, N. Diagnostic applications of point‑of‑care ultrasound in emergency medicine: A narrative review. Cureus. 18 (1), e101501(2026).
  9. Jean-Jacques, R., et al. Training for lung ultrasound score measurement in critically ill patients. Am J Respir Crit Care Med. 198 (3), (2018).
  10. Yelveton, J. T. Pathology scoring system for blast injuries. J Trauma. 40 (0), (1996).
  11. Li, J., et al. Crosstalk between inflammation and hemorrhage/coagulation disorders in primary blast lung injury. Biomolecules. 13 (2), (2023).
  12. Hamacher, J., et al. Characteristics of inflammatory response and repair after experimental blast lung injury in rats. PLoS One. 18 (3), e0281446(2023).
  13. Meng, X., et al. Neutrophil extracellular traps mediate inflammation and coagulation dysregulation in primary blast lung injury. Biochem Pharmacol. 241, 117149(2025).
  14. Yang, B., et al. CT radiomics to assess severity of explosion-induced primary blast lung injury in goats. Sci Rep. 15 (1), 19280(2025).
  15. Shao, S., et al. Esophageal pressure monitoring and its clinical significance in severe blast lung injury. Front Bioeng Biotechnol. 12, 1280679(2024).
  16. Shao, S., et al. Evaluating the effectiveness of handheld ultrasound in primary blast lung injury: A comprehensive study. Sci Rep. 15 (1), 2358(2025).
  17. Frédéric, M., Alexander, S., Christian, T. Factors influencing the estimation of extravascular lung water by transpulmonary thermodilution in critically ill patients. Crit Care Med. 33 (6), (2005).
  18. Kowalczyk, D., Turkowiak, M., Piotrowski, W. J., Rosiak, O., Białas, A. J. Ultrasound on the frontlines: Empowering paramedics with lung ultrasound for dyspnea diagnosis in adults-a pilot study. Diagnostics (Basel). 13 (22), (2023).
  19. Miller, D. L., Dou, C., Raghavendran, K., Dong, Z. The impact of hemorrhagic shock on lung ultrasound-induced pulmonary capillary hemorrhage. J Ultrasound Med. 40 (4), 787-794 (2021).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Model urazu u k zultrasonografia p ucultrasonografia przy ku pacjenta POCUSkrwawienie p ucnewska nik oksygenacjipozanaczyniowa woda p ucnatomografia komputerowa klatki piersiowejwska nik urazu p ucostre uszkodzenie p uc
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki Korzystania

Zasady

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.