Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Przewodzona ultrasonograficznie hydrodyssekcja i zintegrowana rehabilitacja w przypadku pooperacyjnego unieruchomienia wspólnej nerwki piszczelowej bocznej

271 wyświetleń

DOI:

10.3791/71088

12 maja 2026

W tym artykule

Podsumowanie

Ten artykuł przedstawia hydrodyssekcję prowadzoną za pomocą ultradźwięków i zorganizowany, ukierunkowany na zadania program rehabilitacji po uwięzieniu wspólnego nerwu małogłowego.

Streszczenie

Zator nerwu małogłowego wspólnego (CPN) pooperacyjnego jest częstą przyczyną upadku stopy o charakterze lekarskim, a obecnie brakuje ustanowionego protokołu rehabilitacji. Ten artykuł zapewnia wizualne, krok po kroku przedstawienie zintegrowanego podejścia, łączącego sterowne ultradźwiękami hydrodyseksję z strukturalną rehabilitacją ukierunkowaną na zadania. Protokół obejmuje: (1) sterowne ultradźwiękami zidentyfikowanie zatoru CPN w czasie rzeczywistym; (2) hydrodyseksję w płaszczyźnie, wielosektorową, za pomocą 5% roztworu dekstry, lidokainy i mekobalaminy; oraz (3) fazowy program rehabilitacji rozpoczynający się 24 h po zabiegu, obejmujący ślizganie nerwowe, lecznicze ultradźwięki, stymulację nerwowo-mięśniową prądem elektrycznym oraz pięć modułów treningowych ukierunkowanych na zadania. W przypadku reprezentatywnym kąt noga-stopa podczas maksymalnego wysiłku dorsofleksji wykazał zmniejszenie o 38° (z 142° do 104°), a analiza chodu wykazała przywrócenie uderzenia piętą, wypychania i szerokości rozmachu stopy. Badanie EMG po interwencji ujawniło potencjały ponownego unerwienia w mięśniu przednio-brzusznym goleni, mięśniu długim strzicawym i mięśniu długim rozciągającym palca wielkiego. Ten wizualnie sformatowany, krok po kroku protokół pokazuje wykonalność łączenia przezskórnej dekompresji nerwu z rehabilitacją ukierunkowaną na zadania, oferując replikabilną ramę dla zarządzania uporczywym pooperacyjnym zatoru CPN.

Wprowadzenie

Niedostateczność nerwu piszczelowego wspólnego (CPN) po operacji jest istotną przyczyną występowania schorzeń. Podczas gdy bezpośrednie uszkodzenie w czasie zabiegu (np. w wyniku wykluczenia kolanowego lub złamania kości strzałkowej) jest dobrze rozpoznaną etiologią1,2, bardziej podstępnym i często pomijanym mechanizmem jest opóźnione uwięzienie przez pooperacyjną tkankę bliznowatą2. W przeciwieństwie do ostrego uszkodzenia strukturalnego, te blizny powstają stopniowo, tworząc przewlekłą barierę uciskową wokół nerwu. To uciśnięcie nie tylko mechanicznie przywiązuje nerw, utrudniając transport aksopłazmowy, ale także poważnie osłabia jego ukrwienie mikrokrążeniowe, prowadząc do uszkodzenia niedokrwiennego, które dalece pogarsza dysfunkcję nerwową2. W konsekwencji, pacjenci rozwijają opadanie stopy, zaburzenia chodu i niedoczuliwośc3,4, poważnie pogarszając ruchomość i jakość życia.

Konwencjonalne leczenie opierało się głównie na środkach zachowawczych i ćwiczeniach rehabilitacyjnych mających na celu zachowanie ruchomości stawów, opóźnienie zanik mięśni i wsparcie regeneracji nerwowej5. Jednakże, gdy nerw jest gęsto otoczony tkanką bliznowatą, to przede wszystkim “dolny” podejście funkcjonalne często osiąga płaskowyż terapeutyczny, ponieważ nie radzi sobie z fizyczną barierą stanowioną przez bliznę okołonerwową4. Z kolei otwarta chirurgiczna neuroliza, choć bezpośrednio atakuje problem uwięzienia, jest inwazyjna, niesie ryzyko krwotoków i nowego powstawania blizn oraz jest często postrzegana z ostrożnością—zwłaszcza u młodych, aktywnych osób, dla których przywrócenie funkcji jest nadrzędne6. Stąd, potrzebna jest minimalnie inwazyjna technika, która efektywnie uwolni nerw od zrostów, unikając przy tym morbidytetu otwartej operacji.

Ultradźwiękowo kierowane techniki przepuncyjne ostatnio zmieniły diagnozę i leczenie zaburzeń obwodowych układu nerwowego. Wśród tych technik, ultradźwiękowo kierowana hydrodyssekcja to minimalnie inwazyjna interwencja, która wykorzystuje czas rzeczywisty sonografii do ustawienia igły na interfejsie nerw-zrost. Ciśnienie hydrodynamiczne wstrzykniętej płynu mechanicznie oddziela zrosty, aby złagodzić ucisk, oferując widzialne, mniej traumatyczne i możliwe do powtórzenia alternatywy dla operacji7,8,9. Podczas gdy hydrodyssekcja skutecznie radzi sobie z mechanicznym składnikiem uwięzienia, sama w sobie nie przywraca zsynchronizowanej funkcji ruchowej ani nie ponownie szkoli neuroruchowych ścieżek zdekompensowanych przez przewlekłe uciśnięcie. Regeneracja nerwowa po dekompresji wymaga nie tylko usunięcia fizycznej bariery, ale także systematycznej re-edukacji neuromięśniowej, aby przełożyć przywróconą ciągłość nerwową na funkcjonalny ruch. Dlatego, łączenie mechanicznej dekompresji z ustrukturyzowanym, skierowanym na konkretne zadania programem rehabilitacji jest niezbędne, aby osiągnąć znaczącą poprawę funkcyjną.

Ten ilustrujący protokół wizualnie demonstruje: (1) identyfikację w czasie rzeczywistym nerwu CPN i zrostów okołonerwowych; (2) umieszczenie igły w płaszczyźnie i wielosektorową hydrodyssekcję; oraz (3) fazowy protokół rehabilitacji, który rozpoczyna się 24 h po zabiegu. Integrując te dwa komplementarne składniki—przepuncyjną dekompresję i ukierunkową re-edukację neuroruchową—ten proces obejmuje zarówno strukturalne, jak i funkcyjne wymiary odzyskiwania, oferując kompleksowe podejście, które jest korzystne w porównaniu z każdą z interwencji pojedynczo. Każdy krok jest przedstawiony w ponumerowanym, wizualnie sterowanym formacie, aby wspierać replikację przez klinicystów z podstawowym doświadczeniem w ultrasonografii narządów ruchu.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie zabiegi zostały wykonane zgodnie z etycznymi standardami komitetu ds. badań instytucjonalnych oraz uzyskawszy pisemną zgodę pacjenta. Protokół ten został zatwierdzony przez Komitet Etyczny Wenzhou TCM Hospital of Zhejiang Chinese Medical University (Numer zgody: WZY2025-LW-068-02).

1. Ultrasonograficznie sterowana hydrodyseksja w przypadku uwięzienia nerwu przednio-bocznego

UWAGA: W tej demonstracji wykonano pojedynczą sesję. Powtórzenie interwencji, jeśli jest rozważane, powinno opierać się na uporczywych defekcie funkcjonalnym lub sonograficznych dowodach pozostałego uwięzienia, przy czym częstotliwość i łączna liczba są indywidualizowane; kryteria oparte na dowodach wciąż pozostają do ustalenia.

  1. Przygotowanie materiałów i sprzętu
    1. Przygotuj urządzenie ultrasonograficzne wyposażone w wysokoczęstotliwościowy liniowy przetwornik (np. 10–15 MHz) i możliwość wykonania badania Dopplera kolorowym.
    2. Dostosuj początkowe ustawienia ultrasonograficzne: ustaw głębokość na 3–4 cm, aby obejmować docelowy obszar; dostosuj wzmocnienie, aby wyraźnie odróżnić hiperechoiczne wiązki nerwowe od hipoechoicznego tła mięśniowego.
    3. Przygotuj igłę 22 G lub 25 G o długości 50–80 mm (igłę z tępym końcem do blokady nerwów) i strzykawkę 10 mL.
    4. W warunkach aseptycznych wymieszaj w strzykawce 1 mL 50% glukozy, 1 mL 2% lidokainy, 1 mL mekobalaminy (500 μg/mL) i 7 mL 0,9% roztworu chlorku sodu, aby przygotować 10 mL roztworu.
      UWAGA: Końcowe stężenie glukozy wynosi 5%.
    5. Przygotuj inne sterylne przedmioty: żel do ultrasonografii, środki dezynfekujące skórę (np. jodopowidem), sterylną osłonę sondy ultrasonograficznej, sterylne rękawiczki i sterylną gazę.
  2. Pokąż pacjentowi, aby położył się bokiem, z ukazaniem dolnej kończyny na tej samej stronie. Operator powinien stanąć po tej samej stronie pacjenta, zwrócony w stronę ekranu ultrasonograficznego. Podłóż pod kostkę po stronie wskazanej poduszkę, aby utrzymać kolano w pełnym wyprostowaniu, a kostkę w pozycji neutralnej. Przed umieszczeniem sondy przepaluj i oznacz dołek kolanowy, główkę kości piszczelowej i boczny guzek udowej.
  3. Identyfikacja nerwu i lokalizacja miejsca uwięzienia
    1. Nanieś obficie żel kopulujący na skórę nad dołkiem kolanowym. Trzymaj liniową sondę z mocnym, stabilnym chwytem, orientując ją poprzecznie (prostopadle do długiej osi kończyny). Umieść sondę poprzecznie nad dołkiem kolanowym, wyrównując ją z dołkiem kolanowym. Zidentyfikuj naczynia podkolanowe, a następnie zlokalizuj nerw kulszowy tuż bocznie od tych naczyń.
    2. Przesuń sondę w kierunku dystalnym (w stronę stopy), zachowując poprzeczną orientację, aby prześledzić nerw kulszowy do jego rozgałęzienia na nerw piszczelowy i nerw strzałkowy wspólny. Zachowaj jednolite lekkie naciśnięcie, aby uniknąć ucisku struktur leżących głębiej.
      UWAGA: Miejsce rozgałęzienia prezentuje charakterystyczny wygląd „podwójnego pęczka”, gdzie dwie owalne, hiperechoiczne struktury oddzielają się. Pęczek położony bocznie to CPN (Rysunek 1).
    3. Kontynuuj przesuwanie sondy w kierunku dystalnym do poziomu tuż poniżej główki kości piszczelowej, aby zidentyfikować miejsce, w którym CPN zazwyczaj rozgałęzia się na nerw piszczelowy powierzchowny i głęboki.
    4. Starannie przeskanuj wzdłuż przebiegu zidentyfikowanego nerwu, powoli przesuwając sondę z proksymalnej na dystalną, zachowując płaszczyznę poprzeczną. Szukaj znaków uwięzienia, w tym ogniskowego obrzęku nerwu, regionalnej hipoechoiczności i utraty jasnego rozgraniczenia od otaczającej tkanki bliznowatej. Jeśli konieczne, obróć sondę do płaszczyzny podłużnej, aby ocenić przebieg nerwu i potwierdzić miejsce maksymalnego ucisku. W celu standaryzacji sonograficznej oceny kolana, odnieś się do wcześniejszego raportu10.
  4. Ustanowienie pola sterylnego i planowanie ścieżki igły
    1. Wykonaj standardową dezynfekcję skóry obszaru zabiegu za pomocą jodopowidon lub chlorheksydyny w kształcie wężyków, zaczynając od środka na zewnątrz. Zastosuj sterylne płaty, aby ustanowić pole sterylne, pozostawiając narażone tylko miejsce wprowadzenia igły.
    2. Pokąż sondę ultrasonograficzną sterylną osłoną sondy, upewniając się, że między osłoną a czołem sondy nie pozostają bąbelki powietrza. Nałóż sterylny żel na powierzchnię sondy.
    3. Pod bieżącą kontrolą ultrasonograficzną, skup nerw docelowy na ekranie. Aktywuj tryb Dopplera kolorowego i przesuń sondę, aby zidentyfikować i oznaczyć położenie wszelkich sąsiednich naczyń (np. tętnica podkolanowa, górny boczny tętniak rzekomy

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Powrót funkcji
Po zastosowaniu zintegrowanego protokołu kąt między nogą a stopą podczas maksymalnego dobrowolnego zgięcia grzbietowego poprawił się ze 142° przed interwencją do 104° po interwencji, co oznacza redukcję o 38° (pomiar wykonano w pozycji siedzącej; Rysunek 3). Przyrostowi funkcjonalnemu towarzyszyła normalizacja biomechaniki chodu. Analiza chodu przed leczeniem wykazała charakterystyczne zaburzenia typowe dla porażenia nerwu strzałkowego wspólnego (CPN), w t...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Niniejszy artykuł prezentuje zintegrowane podejście, które łączy ultradźwiękowo sterowaną hydrodysekcję z ustrukturyzowaną rehabilitacją w leczeniu uporczywego unieruchomienia wspólnej nerwy objętego (CPN). Obserwowana poprawa funkcji ilustruje potencjalną synergię: precyzyjna interwencja strukturalna stwarza niezbędne warunki fizyczne, które trening neuromotoryczny może następnie wykorzystać do przywrócenia funkcji.

Skuteczna realizacja procedury zależy od kilku kluczowych, wizualnie sterowan...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy deklarują, że nie mają żadnych konfliktów interesów do ujawnienia.

Podziękowania

Wyrażamy nasze serdeczne podziękowania dla zespołu medycznego zaangażowanego w to badanie za ich profesjonalną wiedzę i poświęconą pomoc. Wyrażamy również nasze szczere dziękczynienie pacjentowi za udział, współpracę oraz za wyrażenie zgody na udostępnienie tego przypadku do celów edukacyjnych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
50% Glucose InjectionChina Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd.25G95J1Składnik iniektatu (1 mL, 5% końcowe stężenie)
Adhesive DressingZhende Medical Co., Ltd.N2206070111-2Zakrycie miejsca wkłucia po zabiegu
Balance PadZhangjiagang Aonfit Trading Co., Ltd.ATZJ383Narzędzie do postępowania w treningu na jednej nodze
Blunt-Tip Nerve Block Needle (22 G lub 25 G, 50–80 mm)Zhejiang Kindly Medical Devices Co., Ltd.C20251117Do przewodnictwa ultradźwiękowego w kierunku płaszczyznowym hydrodyssekcji
Foam BlocksZhangjiagang Aonfit Trading Co., Ltd.ATY0520Przeszkody do treningu przekraczania na równym terenie
Iodophor DisinfectantShandong Xiaoboshi Disinfection Technology Co., Ltd.20250902KDezynfekcja skóry przed wkłuciem igły
Lidocaine InjectionHunan Kelun Pharmaceutical Co., Ltd.R24101103Składnik iniektatu
Mecobalamin InjectionEisai China Inc.230658Wsparcie neurotroficzne w iniektacie (1 mL)
Medical UnderpadZhende Medical Supplies Co., Ltd.20250911COchrona powierzchni na której pacjent leży
Neuromuscular Electrical Stimulation DeviceBeijing Yaoyangkangda Medical Equipment Co., Ltd.KT-90BMusi dostarczać dwufazowanej fali kwadratowej.
Sodium Chloride Injection (0.9%)China Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd.25I89B4Rozpuszczalnik dla iniektatu
Soft Soccer BallPeak (China) Co., Ltd.YQ03207Cel do treningu bocznych kopów piłką
Sterile GauzeHenan Yadu Industrial Co., Ltd.2509CA3138Nadawanie ciśnienia na miejsce przekłucia
Sterile Latex GlovesBeijing Ruijing Latex Products Co., Ltd.2025072425Utrzymanie aseptycznej techniki
Sterile Probe CoverZhejiang Chun'an County Renhe Medical Products Industry and Trade Co., Ltd.A1440EPSterylny pokrowiec na sondę ultradźwiękową
Sterile Syringe (10 mL)Zhejiang Longde Pharmaceutical Co., Ltd.202601076Przygotowanie całkowitej objętości iniektatu (10 mL)
Therapeutic Ultrasound DeviceShanghai Xibei Huachao Intelligent Medical Technology Co., Ltd.Sonosail 2Z głowicą przetwornika 1 MHz do aplikacji pulsacyjnej.
Ultrasound GelHangzhou Kaipule Medical Equipment Co., Ltd.KL-250Połączenie akustyczne do obrazowania ultradźwiękowego
Ultrasound SystemFujifilm SonoSite Co., Ltd.SIIZ funkcją dopplerową kolorową. Używaj wysokoczęstotliwościowego przetwornika liniowego (10–15 MHz).

Bibliografia

  1. Fortier, L. M., et al. An update on peroneal nerve entrapment and neuropathy. Orthop Rev (Pavia). 13 (2), 24937 (2021).
  2. Liu, Z., et al. Prognostic factors in patients who underwent surgery for common peroneal nerve injury: a nested case-control study. BMC Surg. 21 (1), 11 (2021).
  3. Alvites, R. D., et al. Establishment of a sheep model for hind limb peripheral nerve injury: common peroneal nerve. Int J Mol Sci. 22 (3), 1401 (2021).
  4. Wang, P. W., et al. Case report: acute common peroneal nerve injury after posterior lumbar decompression surgery. Front Surg. 11, 1329860 (2024).
  5. Dwivedi, N., et al. Surgical treatment of foot drop: patient evaluation and peripheral nerve treatment options. Orthop Clin North Am. 53 (2), 223-234 (2022).
  6. King, J. D., et al. Outcomes of common peroneal nerve decompression. Cureus. 16 (9), e68526 (2024).
  7. Neo, E. J. R., Shan, N. T., Tay, S. S. Hydrodissection for carpal tunnel syndrome: a systematic review. Am J Phys Med Rehabil. 101 (6), 530-539 (2022).
  8. Colorado, B., McNeill, D., Norbury, J. Ultrasound-guided nerve hydrodissection for peripheral entrapment neuropathies. Muscle Nerve. 72 (5), 1052-1059 (2025).
  9. Ghorbanpour, S., et al. Hydrodissection with or without corticosteroid versus corticosteroid-only injection for carpal tunnel syndrome: double-blind randomized controlled trial. Muscle Nerve. 71 (6), 986-994 (2025).
  10. Tamborrini, G., et al. Enhancing knee imaging via histology and anatomy-driven high-resolution musculoskeletal ultrasound. J Ultrason. 25 (100), 20250008 (2025).
  11. Buntragulpoontawee, M., et al. The effectiveness and safety of commonly used injectates for ultrasound-guided hydrodissection treatment of peripheral nerve entrapment syndromes: a systematic review. Front Pharmacol. 11, 621150 (2021).
  12. Lam, K. H. S., et al. Ultrasound-guided interventions for carpal tunnel syndrome: a systematic review and meta-analyses. Diagnostics (Basel). 13 (6), 1138 (2023).
  13. Cuyubamba, O., et al. The combination of neurotropic vitamins B1, B6, and B12 enhances neural cell maturation and connectivity compared with single B vitamins. Cells. 14 (7), 477 (2025).
  14. Baltrusch, S. The role of neurotropic B vitamins in nerve regeneration. Biomed Res Int. 2021, 9968228 (2021).
  15. Salce, G., et al. EURO-MUSCULUS/USPRM phantom recipe for musculoskeletal interventional ultrasound training. Eur J Phys Rehabil Med. 61 (1), 102-108 (2025).
  16. Lee, M. H., Lee, D. Y. Effects of task-oriented training on gait outcomes and balance in individuals with stroke: a systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. J Clin Med. 14 (24), 8766 (2025).
  17. Perveen, W., et al. Effects of extracorporeal shockwave therapy versus ultrasonic therapy and deep friction massage in the management of lateral epicondylitis: a randomized clinical trial. Sci Rep. 14 (1), 16535 (2024).
  18. Lin, C. W., et al. Distal electrical stimulation enhances neuromuscular reinnervation and satellite cell differentiation for functional recovery. Stem Cell Res Ther. 16 (1), 322 (2025).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Opadanie stopylizg nerwowyultrad wi ki terapeutycznestymulacja nerwowo mi niowaanaliza chodudekompresja nerwu