Oświadczenie etyczne
Niniejsze badanie było in vitro badaniem bakteryjnym i nie obejmowało udziału ludzkich uczestników, zwierząt laboratoryjnych lub materiałów pochodzących od pacjentów. Dlatego nie było wymagane zatwierdzenie przez komitet etyczny instytucjonalny ani aprobata etyki w zakresie eksperymentów na zwierzętach.
Ocena degradacji AO7 w układzie Fentona wspomaganego witaminą C
Aby ocenić wpływ witaminy C na obserwowalne zachowanie oksydacyjne reakcji Fentona, degradację pomarańczowo-żółtego kwasu (AO7) wykorzystano jako pośrednią chemiczną miarę aktywności oksydacyjnej. Niniejsze badanie nie kwantyfikuje konkretnych gatunków reaktywnego tlenu. Przygotowano 100 ml roztworu AO7 o stężeniu 5 mg/l i skorygowany pH roztworu na 3. Dodano H2O2 i FeSO4 do końcowych stężeń 2,2 mM i 0,055 mM, odpowiednio. Dodano witaminę C, albo jako pojedynczą dawkę na początku reakcji, albo według trzystopniowego schematu dawkowania. W eksperymencie dawki-odpowiedź zastosowano współczynniki molowe Vc: Fe2+⁺ równe 0, 0,12, 0,24, 0,48, 2, 4, 6 i 8, co odpowiadało końcowym stężeniom witaminy C wynoszącym 0, 0,0066, 0,0132, 0,0264, 0,110, 0,220, 0,330 i 0,440 mM, odpowiednio, gdy FeSO4 stosowano w stężeniu 0,055 mM. W przypadku warunków trzystopniowego dodawania podzielono tę samą łączną ilość witaminy C na trzy równe części i dodawano po jednej części w 3, 5 i 7 min po rozpoczęciu reakcji. Na przykład, przy współczynniku Vc:Fe2+⁺ równym 0,48, dodawano witaminę C w ilości 0,0088 mM na jedną część, co dawało końcową łączną koncentrację 0,0264 mM.
Przez 10 min ciągle mieszano roztwór reakcyjny w ciemności, utrzymując temperaturę poniżej 30 °C. Pobrany próbki 2 ml przed i po reakcji. Zmierano absorpcję przy 483 nm za pomocą spektrofotometru UV-Vis i obliczono wskaźnik degradacji AO7 według równania 1:
Wskaźnik degradacji (%) = [(A0 - At) / A0] x 100% (1)
Tutaj A0 oznacza absorpcję próbki przed reakcji, a At absorpcję po reakcji.
Ocena sygnału fluorescencyjnego związanego z ·OH przy użyciu sondy TA
Aby ocenić sygnał fluorescencyjny związany z rodnikami hydroksylowymi w tych samych warunkach kwaśnych in vitro, które zastosowano w badaniach przeciwbakteryjnych, utworzono bezkomórkowy układ chemiczny za pomocą tereftalanu disodu (TA, 1 mM) jako sondy fluorescencyjnej. Niniejsze badanie wykorzystano jako względny wskaźnik tworzenia produktu związanego z ·OH i nie interpretowano jako bezwzględnego pomiaru generacji rodników hydroksylowych. Uwzględniono siedem grup: (1) próbka ślepą (1 mM TA tylko w buforze reakcyjnym), (2) tylko H2O2, (3) tylko Fe2+⁺, (4) tylko Vc (stopniowo), (5) konwencjonalne Fenton (Fe2+⁺ + H2O2), (6) Fenton wspomagany witaminą C z jednorazową dawką Vc (Fe2+⁺ + H2O2 + Vc, jednorazowo) i (7) Fenton wspomagany Vc z dawkowaniem stopniowym (Fe2+⁺ + H2O2 + Vc, stopniowo). W warunkach stopniowego dodawania Vc dodawano go w 3, 5 i 7 min po rozpoczęciu reakcji w równych częściach, podczas gdy w warunkach jednorazowego dodawania Vc dodawano tę samą łączną ilość Vc jako jednorazową dawkę.
Pobrano części w ciągu 10-minutowego okresu reakcji, natychmiast zasadowo alkalizowano za pomocą NaOH, aby wygasić dalsze reakcje rodnikowe i ustabilizować fluorescencje, i przechowywano w temperaturze 4 °C przed pomiarem. Intensywność fluorescencji pochodnego TA mierano za pomocą czytnika płytek (Ex/Em: 315/425 nm). Generację rodników wyrażano jako intensywność fluorescencji po odjęciu próbki ślepej i używano jako względnego wskaźnika generacji rodników. Przeprowadzono co najmniej trzy niezależne eksperymenty, a dane przedstawiono jako profile przebiegu czasowego i porównania wartości końcowych po 10 min.
Ocena działania przeciwbakteryjnego poprzez liczenie kolonii
H. pylori szczepy przechowywano w temperaturze -80 °C w bulionie mózgowo-sercowym (BHI) z 25% glicerolem. Szczep podstawowy użyty do głównego badania liczenia kolonii, badania ratunkowego, badania zakłóceń macierzy i barwienia fluorescencyjnego żywych/martwych oraz badania mikroskopii skaningowej elektronowoej był H. pylori G27. Przed każdym eksperymentem