Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Charakterystyka funkcjonalna indywidualnych partnerów przed- i postsynaptycznych w Drosophila Ośrodkowym Układzie Nerwowym Larwalnym przy użyciu CaMPARI

274 wyświetleń

DOI:

10.3791/71399

16 czerwca 2026

W tym artykule

Podsumowanie

Ten protokół ocenia aktywność synaptyczną funkcjonalną między określonymi partnerami neuronowymi in vivo w centralnym układzie nerwowym larw Drosophila melanogaster przy użyciu genetycznie zakodowanych narzędzi. Optogenetyczna stymulacja presynaptycznych cIVda neuronów sensorycznych za pomocą CsChrimson indukuje fotokonwersję zależną od wapnia CaMPARI w postsynaptycznych interneuronach Basin-4.

Streszczenie

Studia nad konektomem znacznie rozszerzyły zrozumienie łączności synaptycznej w układach nerwowych różnych gatunków. Chociaż charakterystyka partnerów synaptycznych przy użyciu mikroskopii elektronowej (ME) zapewnia szczegółowe informacje anatomiczne, funkcjonalne aspekty sieci neuronowych wymagają uzupełniających podejść. Ostatnie badania na Drosophila ujawniły nie tylko kompletne konektome larwalnego, jak również męskiego i żeńskiego dorosłego układu nerwowego, ale także komponenty komórkowe sieci neuronowych, które regulują określone zachowania, takie jak larwalna sieć nocyceptywna. Na etapie trzeciej larwki, multidendryczne neurony sensoryczne typu cIVda (nocyceptory) ustanawiają większość kontaktów synaptycznych z interneuronami Basin-4. Aby ocenić funkcjonalne znaczenie tych połączeń anatomicznych, zakodowany genetycznie wskaźnik wapnia CaMPARI (Calcium Modulated Photoactivatable Ratiometric Integrator) został zastosowany w żywych, niesekcjonowanych larwkach trzeciej instar jako reporter zależny od aktywności do oceny łączności synaptycznej między neuronami cIVda a interneuronami Basin-4. CaMPARI jest wskaźnikiem fluorescencyjnym ratiometrycznym, którego widmo emisji zmienia się w odpowiedzi na podwyższone poziomy wapnia wewnątrzkomórkowego. W warunkach wyjściowych, CaMPARI fluorescencja zielona; w obecności wysokich stężeń wapnia i po ekspozycji na światło fotokonwersji (~400 nm), nieodwracalnie przełącza się na czerwoną fluorescencje. Ponieważ napływ wapnia do neuronów postsynaptycznych jest charakterystyczny dla aktywacji synaptycznej, fotokonwersja CaMPARI zapewnia odczyt funkcjonalnego przekazywania sygnałów synaptycznych. Przedstawiono krok po kroku metodę unieruchomienia larwek trzeciej instar na szklanym slajdzie do optogenetycznej aktywacji nocyceptorów cIVda za pomocą przesuniętego na czerwono channelrhodopsin CsChrimson, w połączeniu z jednoczesną fotokonwersją CaMPARI w neuronach Basin-4. Fotokonwersja zależna od wapnia w neuronach Basin-4, pomimo wewnętrznych ruchów i zmian płaszczyzny ogniskowej, dostarcza funkcjonalnych dowodów na łączność synaptyczną między tymi komórkami. Służy to jako dowód na zasady dla użycia CaMPARI w połączeniu z presynaptyczną stymulacją optogenetyczną w nienaruszonych, niesekcjonowanych larwkach Drosophila.

Wprowadzenie

Identyfikacja precyzyjnych partnerów synaptycznych w centralnym układzie nerwowym (CNS) umożliwia śledzenie tworzenia i uszczegółowiania połączeń synaptycznych podczas rozwoju układu nerwowego. Dlatego wysiłki skupione są na wykorzystaniu woluminowej mikroskopii elektronowej (EM) do odtworzenia nie tylko pełnych konektomów w potężnych organizmach modelowych, takich jak Caenorhabditis elegans1,2 i Drosophila melanogaster3,4,5, ale także woluminów EM w skali milimetrów złożonych mózgów ssaków, w tym p....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie procedury eksperymentalne z udziałem Drosophila melanogaster przeprowadzono zgodnie z wytycznymi instytucjonalnymi. Genotyp w; Basin4-LexA/CyO-TwGFP; ppk-GAL4/ppk-GAL4 (uzyskany przez rekombinację RRID:BDSC_5489912 i RRID:BDSC_3207916) został użyty do sterowania ekspresją optogenetyczną i CaMPARI (używając linii w-, UAS-IVS-CsChrimson.mVenus, LexAOp-CaMPARI2; Sp/Cyo uzyskany przez rekombinację RRID:BDSC_81085 z markerami na drugim chromosomie) w partnerach pre- i postsynapticznych, odpowiednio. Narzędzia badawcze użyte w tym protokołach są wymienione w Tabeli Materiałów.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Following this protocol, functional connectivity between cIVda neurons and Basin-4 interneurons was assessed in live, undissected D. melanogaster third instar larvae using CaMPARI (Rysunek 2). Prior to any stimulation with photoconversion (PC) light or optogenetic activation, Basin-4 interneurons displayed green fluorescence due to cytosolic CaMPARI expression (Rysunek 2A). No red fluorescence was detected under baseline conditions (

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Opisany tutaj protokół umożliwia jakościową i ilościową ocenę łączności synaptycznej między określonymi partnerami synaptycznymi w nienaruszonych larwach D. melanogaster. Podejście to wykorzystuje kombinację optogenetycznej stymulacji cIVda neuronów czuciowych z wizualizacja opartą na CaMPARI aktywowanych postsynaptycznych interneuronów Basin-4 w celu monitorowania aktywności synaptycznej w centralnym układzie nerwowym (OUN) niesekcjonowanych larw. Poprzednie zastosowania CaMPARI w D. melanogaster konce.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy deklarują, że nie mają żadnych konfliktów interesów.

Podziękowania

Laboratorium Biologii Morskiej (Woods Hole, MA) jest wymienione jako instytucja, która gościła i wsparła prace nad rozwiązywaniem problemów z opisanymi technikami i protokołami.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
0.1 M Phosphate Buffered Saline (PBS)Sigma AldrichP5368-10PAKChemikalia używane w roztworze do nawadniania i montowania larw
All-trans-retinal (ATR) Sigma AldrichR2500-500mgChemikalia dodawane do pokarmu w celu aktywacji narzędzi optogenetycznych
Mikroskop konfokalnyZEISS LSM900 KonfokalnyMikroskop konfokalny, Obiektyw (40×/1.2 NA), Źródło światła/lasera (405, 488, 561 nm)
Pokrywki (18x18mm)VWR48366-205Używane do montażu zwierząt do obrazowania
Etanol (95%)Sigma AldrichE7023Używany jako rozpuszczalnik dla proszku ATR
Fiji (ImageJ)Open sourceRRID:SCR_002285 Używane do analizy obrazów
Prism wersja 10.4.1GraphPad Software Inc.RRID:SCR_002798Używane do analizy statystycznej
Szlabanki mikroskopoweVWR 48300-041Używane do montażu zwierząt do obrazowania
Glina modelarskaFlinn scientificFB0600Używane do trzymania szkiełka pokrywowego na szlabanku mikroskopowym z larwą pośrodku
PędzelGenesee scientific59-204Używane do przenoszenia larw między lokacjami
Standardowe medium agarowe z mąką kukurydzianąGenesee scientific66-123Żywność można również przygotować używając podobnych standardowych receptur i składników
Standardowe plastikowe pojemniki Drosophila (wąskie pojemniki Drosophila o wymiarach 25mm x 95mm)Genesee scientific32-109Można również używać większych pojemników lub butelek
Płytka mikroskodalna trójkomórkowaElectron Microscopy Sciences 71561-01Płytka używana do separacji i czyszczenia pojedynczych larw
Zestawy Drosophila (genotyp: w; Basin4-LexA/CyO-TwGFP; ppk-GAL4/ppk-GAL4) Bloomington Drosophila Stock CenterRRID:BDSC_54899 & RRID:BDSC_32079Uzyskane przez rekombinację RRID:BDSC_54899 i RRID:BDSC_32079
Zestawy Drosophila (genotyp: w, UAS-IVS-CsChrimson.mVenus, LexAOp-CaMPARI2; Sp/CyO)Bloomington Drosophila Stock CenterRRID:BDSC_81085Uzyskane przez rekombinację RRID:BDSC_81085 z markerami chromosomu drugiego

Przedruki i uprawnienia

Tagi

OUN larwy Drosophilaczno synaptycznaobrazowanie CaMPARIaktywacja optogenetycznainterneurony Basin 4neurony cIVdawska nik wapniakana rodyopsyna CsChrimsonfunkcjonalne mapowanie synaptycznesie nocyceptywna