Wszystkie eksperymenty zostały zatwierdzone przez Instytucjonalną Radę Przeglądową Uniwersytetu Medycyny Chińskiej w Nankinie (Kod protokołu: 202501A018) i przeprowadzono zgodnie z Przewodnikiem Narodowych Instytutów Zdrowia (NIH) dotyczącym opieki i wykorzystania zwierząt laboratoryjnych. Wszystkie procedury eksperymentalne były zgodne z wytycznymi ARRIVE.
Leki eksperymentalne
Roztwór próbki YQHXD zawierał 20 g korzenia Astragalus membranaceus , 20 g korzenia Angelica sinensis , 15 g kłącza Ligusticum chuanxiong , 6 g korzenia Stephania tetrandra , 15 g owocu Chaenomeles speciosa oraz 10 g dojrzałych nasion Sinapis alba , o łącznej masie surowego leku 86 g na receptę. Wszystkie materiały ziołowe zostały potwierdzone zgodnie z Farmakopeją Chińską (wydanie z 2020 roku) przez Wydział Farmacji Szpitala Ruikang afiliowany przy Uniwersytet Medycyny Chińskiej w Guangxi. Roztwór próbki YQHXD został przygotowany metodą dekokcji wodnej. Dodano sterylną wodę destylowaną w 8 razy większej objętości surowego leku, a zioła moczono przez 30 minut, aż całkowicie zanurzono. Mieszanka była następnie gotowana i deokowana na niskim ogniu przez 30 minut przed filtracją. Pozostałości zostały ponownie wyekstrahowane tą samą objętością sterylnej wody destylowanej według tej samej procedury. Filtraty z obu ekstrakcji zostały połączone i skoncentrowane do 55,5 mL przy obniżonym ciśnieniu za pomocą odparowania rotacyjnego, aby uzyskać roztwór YQHXD. Na podstawie całkowitej masy surowego leku, końcowe stężenie surowego leku wynosiło 1,55 g/mL, z wydajnością ekstrakcji około 64,5%. Dawka podawana eksperymentalnym szczurom została przekształcona z klinicznej dawki dla dorosłych metodą normalizacji powierzchni ciała. Współczynnik konwersji między ludźmi a szczurami wynosił około 6,3; dlatego dawka szczurów (mg/kg) została obliczona jako dawka dla ludzi (mg/kg) × 6,3. Grupa przyjmująca wysokie dawki otrzymała 15,48 g/kg/dzień jako dawkę referencyjną, natomiast grupy średniej i niskiej dawki otrzymały odpowiednio 7,74 g/kg/dzień oraz 3,87 g/kg/dzień. Dla objętości gavage 10 mL/kg, odpowiadające stężenia robocze wynosiły odpowiednio 1,548, 0,774 i 0,387 g/mL dla grup wysokich, średnich i niskich. Roztwór zapasowy rozcieńczono odpowiednio, aby osiągnąć docelową dawkę dla każdej grupy eksperymentalnej przed podaniem. Po przygotowaniu wywary były chłodzone, alicytowane w warunkach sterylnych i przechowywane w temperaturze −40 °C do czasu użycia.
Analiza farmakologii sieciowej
Przewidywanie białek docelowych składników aktywnych
24 listopada 2025 roku aktywne związki zostały pobrane z bazy danych TCMSP za pomocą haseł "Huangqi, Angelica, Chuanxiong, Stephania, Mugua i Jiezi." Związki zostały przesiewane na podstawie biodostępności doustnej (OB ≥ 30%) oraz podobieństwa do leku (DL ≥ 0,18)9. Uzasadnienie tych progów jest następujące: baza danych TCMSP integruje dane złożone z autorytatywnych źródeł, takich jak PubChem, ChEMBL i ChemSpider, oraz dostarcza parametry związane z ADME, w tym biodostępność ustną. Biodostępność doustna odnosi się do proporcji dawki doustnej, która dociera do krążenia układowego bez zmian, a wysoki poziom OB jest niezbędny do identyfikacji bioaktywnych cząsteczek. Podobieństwo do leku to wskaźnik używany do oceny podatności na działanie substancji oraz do przewidywania ich rozpuszczalności i stabilności. W tym badaniu zastosowano bardziej rygorystyczny próg OB (≥30%), przekraczający zalecaną wartość bazy danych (≥20%), aby zidentyfikować związki kandydatów o korzystnym profilu wchłaniania doustnego i farmakokinetycznego. Tymczasem DL użyto do oszacowania potencjału lekowego związków, a próg DL ≥ 0,18 został przyjęty na podstawie średniej wartości DL obserwowanej w związkach medycyny chińskiej. Wybrane aktywne związki zostały pobrane w formacie SMILES z bazy danych PubChem i zaimportowane do bazy SwissTargetPrediction w celu przewidywania celów, z gatunkiem ustawionym na Homo sapiens. Białka docelowe zostały standaryzowane przy użyciu oficjalnych symboli genów, a zachowano tylko cele o wartościach prawdopodobieństwa większym niż 0, aby poprawić wiarygodność predykcji. Związki bez przewidywanych celów zostały wykluczone z późniejszej analizy sieci. Po połączeniu wszystkich celów duplikaty zostały usunięte za pomocą oprogramowania arkuszy kalkulacyjnych, aby zapewnić, że każdy cel jest reprezentowany tylko raz w końcowym zbiorze danych.
Zbiór kluczowych celów
Geny związane z chorobą zostały pobrane z baz danych GeneCards10,OMIM 11 iTTD 12 przy użyciu słowa kluczowego "degeneracja dysku lędźwiowego". Zebrane cele genów zostały połączone, a duplikaty wpisów usunięto, aby uzyskać ostateczny zestaw celów związanych z chorobą.
Potencjalne cele YQHXD w leczeniu LDD
Platforma Venny 2.1.0 została użyta do określenia potencjalnych celów YQHXD w LDD. Następnie wygenerowano sieć pokazującą powiązania między aktywnymi komponentami a ich przewidywanymi celami. Podstawowe aktywne komponenty były wybierane zgodnie z ich wartościami stopni w sieci.
Konstrukcja sieci komponentów leków i celów przecięcia chorób
Składniki aktywne, białka docelowe oraz geny powiązane z LDD z formuły TCM YQHXD zostały zaimportowane do oprogramowania Cytoscape13 , aby stworzyć diagram sieci komponent-lek-cel-choroba.
Budowa sieci PPI i identyfikacja kluczowych kluczowych celów
Przecinające się cele zostały przesłane do analizy na platformieSTRING 14 , a organizm został ustawiony na Homo sapiens. Aby zbudować sieć interakcji białko-białko (PPI), próg wyniku interakcji został ustawiony na >0,4, odłączone węzły zostały ukryte, a wszystkie pozostałe ustawienia pozostawiono jako domyślne. Uzyskane dane zostały zaimportowane do oprogramowania, gdzie narzędzie NetworkAnalyzer służyło do oceny właściwości topologicznych i obliczania stopni węzłów. Pięć najważniejszych węzłów sklasyfikowanych według stopnia zostało wyznaczonych jako kluczowe cele hubów.
Analiza wzbogacania celów podstawowych
Cele przecinające się zostały przesłane do bazy danych DAVID15 do analiz funkcjonalnych annotacji funkcjonalnych z ontologii genów (GO) oraz analizy wzbogacania szlaków w Encyklopedii Genów i Genomów w Kioto (KEGG). Tło organizmu zostało ustalone jako Homo sapiens, a próg wzbogacenia zdefiniowany zgodnie z domyślnymi parametrami DAVID, w tym progiem EASE < 0,1 oraz progiem liczenia ≥ 2. Wszechświat genów opierał się na domyślnym tłem całego genomu dostarczonym przez DAVID. Wielokrotne testy zostały skorygowane metodą Benjamini-Hochberga w celu kontroli wskaźnika fałszywych odkryć (FDR), a wyniki DAVID zostały skorygowane na tej podstawie. Wzbogacone szlaki zostały uporządkowane według wartości Count w kolejności malejącej. Wykresy wzbogacające GO i KEGG zostały opracowane przy użyciu internetowej platformy bioinformatycznej.
Dokowanie molekularne
Aby przewidzieć interakcje między kluczowymi aktywnymi składnikami YQHXD a głównymi celami LDD, w tym badaniu przeprowadzono analizę dokowania molekularnego. Pięć najważniejszych aktywnych związków, uszeregowanych według wartości stopnia topologicznego sieci i istotności celowej, zostało wybrane jako ligandy, natomiast odpowiadające im białka docelowe wykorzystano jako receptory. Pliki Ligand SDF zostały pobrane z PubChem, a trójwymiarowe struktury docelowych białek pobrano z Protein Data Bank (PDB). Analiza dokowania została przeprowadzona na platformie CB-Dock2 z wykorzystaniem w pełni zautomatyzowanego protokołu ślepego dokowania. Po przesłaniu struktur białek platforma automatycznie usuwała heteroatomy, w tym małe cząsteczki, jony i cząsteczki wody, a następnie naprawiała brakujące i atomy wodoru. Zastosowano tryb automatycznego stacji dokowania w ciemno. W tym trybie CB-Dock2 identyfikuje potencjalne kieszenie wiązania białko-powierzchni za pomocą algorytmu wykrywania wnęk opartego na krzywiźnie, a następnie wykonuje obliczenia dokowania przy użyciu zintegrowanego silnika AutoDock Vina16. Podczas procesu dokowania białka traktowano jako struktury sztywne, podczas gdy ligandy uważano za elastyczne, a wszystkie parametry dokowania ustawiono na domyślne wartości platformy. Wyniki dokowania poddano trójwymiarowej wizualizacji i analizie interakcji przy użyciu wbudowanych narzędzi CB-Dock217, a energie wiązania obliczono w celu oszacowania przewidywanych powinowactw wiązań między związkami aktywnymi a białkami docelowymi.
Symulacja dynamiki molekularnej
Symulacje dynamiki molekularnej przeprowadzono dla docelowego kompleksu białko-ligandu przy użyciu GROMACS 2022.2. Białko zostało modelowane za pomocą pola siłowego Amber14SB, a system rozpuszczalnika przedstawiono za pomocą modelu wodnego TIP3P. Ładunki atomowe ligandów obliczono metodą AM1-BCC zaimplementowaną w Antechamber, a następnie przypisano typy atomów GAFF2. Powstałe pliki topologiczne zostały przekonwertowane do formatu zgodnego z GROMACS za pomocą ACPYPE. Parametry jonowe zgodne z modelem wody TIP3P zostały przypisane na podstawie zestawu parametrów Joung-Cheatham. Kompleks początkowy umieszczono w obciętym dwunastościanowym pudełku symulacyjnym, z co najmniej 1,2 nm między powierzchnią białka a krawędzią pudełka. Dodano cząsteczki wody TIP3P, aby rozpuścić układ, a jony Na+ i Cl− zostały wprowadzone, aby zneutralizować ładunek układu i ustawić wytrzymałość jonową na 0,15 M. Minimalizację energii wykonano algorytmem najstromszego opadu aż do momentu, gdy maksymalna siła spadła poniżej 1 000 kJ·mol−1·nm−1. System był następnie wyważony na 100 ps pod zespołem NVT przy 298 K i 1 bar. Po wyważeniu przeprowadzono symulację produkcji o długości 100 ns pod zespołem NPT z krokiem czasowym 2 fs. Interakcje niezwiązane były obsługiwane za pomocą schematu odcięcia Verlet. Oddziaływania elektrostatyczne obliczono metodą siatki cząstek Ewalda (PME), a cutoff 1,2 nm zastosowano zarówno dla oddziaływań van der Waalsa, jak i Coulomba. Wiązania zawierające wodór były ograniczone algorytmem LINCS. Temperatura była kontrolowana termostatem Nosé-Hoover, a ciśnienie za pomocą barostatu Parrinello-Rahmana, utrzymując system na poziomie 298 K i 1 bar. Trajektorie były zapisywane co 10 ps. Analizowano dynamikę strukturalną i interakcje międzycząsteczkowe przy użyciu wbudowanych narzędzi GROMACS, VMD i PyMOL. Szacowano wolną energię wiązania z gmx_MMPBSA tam, gdzie to dotyczy.
Badania nad zwierzętami
Hodowla zwierząt
Siedemdziesięciu samców szczurów Sprague-Dawley (SD) w wieku 3–8 tygodni zostało losowo przydzielonych do siedmiu grup eksperymentalnych (n = 10 na grupę) przy użyciu komputerowo generowanych liczb losowych, co zapewniło brak statystycznie istotnych różnic w bazowej masie ciała między grupami. Wszystkie zwierzęta były trzymane w warunkach kontrolowanych (22 ± 1 °C, 55 ± 10% wilgotności względnej, 12-godzinny cykl światła/ciemności) z swobodnym dostępem do jedzenia i wody. Pozycje klatki były losowo zmieniane przy każdej zmianie, aby zminimalizować stronniczość środowiskowa. Po tygodniu aklimatyzacji szczury z grup modelowych przeszły nakłucie IVD ogonowe, aby wywołać degenerację. Miejscowa insesja znieczulenia z bupiwakainą była podawana przed operacją, aby zmniejszyć ból. Zwierzęta były ściśle monitorowane podczas operacji i przez cały okres pooperacyjnej rekonwalescencji. Obserwacje pooperacyjne obejmowały czas rekonwalescencji, przywrócenie aktywności samoistnej, spożycie jedzenia i wody oraz zmiany masy ciała. Tydzień po utworzeniu modelu losowo wybrano dwa szczury z każdej grupy do pooperacyjnego cyfrowego obrazowania radiologicznego (DR) oraz barwienia hematoksyliny i eozyny (HE). Analiza radiologiczna wykazała obniżoną wysokość IVD ogonowego, natomiast barwienie HE wykazało wyraźne zmniejszenie liczby komórek notochordalnych jądra mięczaka (NP) oraz dezorganizację struktury lamelowej pierścienia włóknistego18, co potwierdzało pomyślne ustalenie modelu. Osiem tygodni po operacji szczury zostały uśpione przez wdychanie przedawkowania izofluranu, a także pobrano tkanki ogonowe i próbki krwi. Po wstępnej walidacji do końcowej analizy histologicznej, ELISA, PCR oraz western blot użyto trzech niezależnych próbek na grupę spełniających określone kryteria jakości. Badania histologiczne przekroju były oceniane w warunkach pojedynczej ślepej, a preparaty oznaczono jedynie numerami identyfikacji zwierząt. W testach ELISA, PCR i western blot podczas alicytatu i oznaczania próbek stosowano kodowanie zaślepione, a kolejność testów wszystkich próbek była losowo ustalana przed eksperymentami. Surowe dane, w tym wartości absorpcji, wartości Ct oraz intensywności pasm, były dekodowane do tożsamości grup przez statystyka niezaangażowanego w grupowanie eksperymentalne ani przetwarzanie próbek, a następnie analizowane przez personel statystyczny. Wszystkie analizy statystyczne były przeprowadzane przez statystyków, którzy nie uczestniczyli w grupowaniu eksperymentalnym ani przetwarzaniu próbek. Wszelkie niepożądane zdarzenia, takie jak infekcja rany, rozchod rany, krwawienie czy silna ospałość, były natychmiast rejestrowane i oceniane. Łagodne schorzenia były ściśle monitorowane z rozszerzoną opieką wspierającą. Humanitarne metody końcowe stosowano, jeśli szczury wykazywały utratę masy ciała przekraczającej 20% wartości wyjściowej, silny ból nieustępliwy lekami przeciwbólowymi, utratę ruchomości, brak dostępu do jedzenia lub wody, infekcje, martwicę, inne poważne powikłania pooperacyjne, niedociąganie oddechowe lub jakiekolwiek schorzenia zagrażające życiu. W takich przypadkach zwierzęta były humanitarnie uśpione przez wdychanie przedawkowania izofluranu.
Modelowanie eksperymentalne
Szczury były znieczulone inhalowaną izofluranem i ustawiane na brzuchu. IVD z ogonem Co6/7, Co7/8 i Co8/9 były umieszczone pod nadzorem fluoroskopowym rentgenowskim. Igła 21 G była pionowo wsuwana do IVD, aż dotarła do przeciwległej strony skóry, po czym końcówka igły była wycofywana w kierunku środka ogona. Druga igła służyła jako odniesienie pozycji. Aby wywołać długotrwałą degenerację IVD, igła była obracana o 360°, utrzymywana na miejscu przez 30 sekund, a następnie usuwana. W grupie Sham głębokość wkłucia przez skórę i mięśnie wynosiła około 2 mm, bez uszkodzenia IVD. W pozostałych grupach igła była wprowadzana 5 mm w kierunku środka IVD, omijając naczynia krwionośne. Po włożeniu igła była obracana o 360° i pozostawiana na miejscu przez 30 sekund. Miejsce wbicia zostało zdezynfekowane, oznaczone i zabezpieczone sterylną gazą. Tydzień po modelowaniu rentgenowskie obrazowanie kręgosłupa ogonowego wykazało zmniejszenie wysokości IVD. Barwienie HE wykazało istotną redukcję komórek notochordalnych NP oraz zaburzenia struktury lameli pierścieniowej, co potwierdzało pomyślne ustanowienie modelu. Po pomyślnym modelowaniu grupy otrzymujące leczenie TCM oraz grupa z pozytywną kontrolą (PC) otrzymały odpowiednie dawki, obliczone na podstawie stosunku powierzchni ciała między ludźmi a szczurami.
Grupowanie i interwencja
W eksperymencie wzięto udział w 70 samcach szczurów SD w wieku 3–8 tygodni, podzielonych na siedem grup:
(1) Grupa kontrolna (Ctrl): Szczury z tej grupy zostały losowo przydzielone w tym samym czasie i w tych samych warunkach co grupy eksperymentalne. Były trzymane w indywidualnych klatkach w ośrodku zwierzęcym na poziomie SPF, z bezpłatnym dostępem do standardowego jedzenia i wody pitnej.
(2) Grupa pozorowa: Szczury zostały znieczulone przez wdychanie izofluranu. Po znieczuleniu skóra ogona była dezynfekowana jodem povidonem, a szczury leżały na brzuchu. IVD Co6/7 i Co7/8 były umieszczone pod nadzorem fluoroskopowym rentgenowskim. Igła została przesunięta o około 2 mm przez skórę i mięśnie, nie uszkadzając IVD. Woda destylowana (10 mL/kg) była podawana raz dziennie przez gavage przez 8 tygodni.
(3) Grupa modelowa: Szczury zostały znieczulone inhalowanym izofluranem. Po znieczuleniu skóra ogona była dezynfekowana jodem povidonem, a szczury leżały na brzuchu. Pod nadzorem fluoroskopowym rentgenowskim zlokalizowano IVD Co6/7, Co7/8 i Co8/9. Igła 21 G była pionowo przesuwana do IVD, aż dotarła do przeciwległej strony skóry, a końcówka igły była następnie wysuwana w kierunku środka ogona.
Druga igła była używana jako odniesienie pozycji. Igła była obracana o 360° i utrzymywana przez 30 sekund, aby wywołać ciągłą degenerację IVD przed usunięciem. Woda destylowana (10 mL/kg) była podawana codziennie przez gavage przez 8 tygodni, a rekonwalescencja szczurów była ściśle monitorowana po operacji.
(4) Grupa PC: Grupa pozytywnej kontroli była poddawana tej samej procedurze modelowania co grupa modelowa, a następnie otrzymała doustną dawkę celekoksybu (20 mg/kg/dzień), przygotowaną jako zawiesina w 0,5% karboksymetylocelulozie sodu (CMC-Na), przez 8 kolejnych tygodni, z objętością gavage 10 mL/kg masy ciała.
(5) Grupa niskodawkowa YQHXD [YQHXD(L)]: Modelowanie przeprowadzono podobnie jak w grupie modelowej. Szczury otrzymywały YQHXD w dawce 3,87 g/kg/dzień przez gavage przez 8 tygodni, z objętością gavage 10 mL/kg i stężeniem roboczym 0,387 g/mL.
(6) Grupa średniej dawki YQHXD [YQHXD(M)]: Modelowanie przeprowadzono podobnie jak w grupie modelowej. Szczury otrzymywały YQHXD w wysokości 7,74 g/kg/dzień przez gavage przez 8 tygodni, z objętością gavage 10 mL/kg i stężeniem roboczym 0,774 g/mL.
(7) Grupa YQHXD z wysoką dawką [YQHXD(H)]: Modelowanie przeprowadzono podobnie jak w grupie modelowej. Szczury otrzymywały YQHXD w wysokości 15,48 g/kg/dzień przez gavage przez 8 tygodni, z objętością gavage 10 mL/kg i stężeniem roboczym 1,548 g/mL.
Zmiany patologiczne
Tkanka ogonowa szczura została chirurgicznie wyizolowana, a zaobserwowano zmiany w tkankach mięśniowych i otaczających je mięśniach. Zebrana tkanka była następnie przetwarzana na przekroje patologiczne, a okazy przygotowywano w przekrojach podłużnych do obserwacji morfologicznych. IVD kręgów ogonowo-ogonownych, utrwalony w formaldehydzie przez 96 godzin, został szybko odwapniony za pomocą roztworu odwapniającym, odwodniony przez serię alkoholową stopniowanych i oczyszczony ksylenem. Po osadzeniu w parafinie przygotowano sekcje o pojemności 5 μm. Po deparafinizacji ksylenem i odwodnieniu przez serię gradientów alkoholowych, przekroje zostały barwione hematoksyliną i eozyną. Następnie były odwodniane, oczyszczane i montowane. Próbki były obserwowane pod mikroskopem optycznym, aby zbadać zmiany morfologiczne w strukturze IVD ogonowej w obu grupach. Następnie wykonano barwienie trójchromowe Masson. Fragmenty barwiono kolejno roztworem dichromianu potasu i hematoksyliną przez 3 minuty każda, następnie różnicowano kwaśnym etanolem, a następnie barwiłem Picrosirius Red przez 10 minut. Po 10 minutach leczenia kwasem fosforungstycznym, fragmenty były barwione błękitem toluidynowym przez 5 minut. Po odwodnieniu przekroje były oczyszczane ksylenem, montowane i obserwowane pod mikroskopem w celu obserwacji zmian w IVD ogona.
Wykrywanie białek docelowych w surowicy ELISA
Osiem tygodni po operacji szczury zostały znieczulone inhalowanym izofluranem, a następnie pobrano krew z aorty brzusznej. Próbki krwi obwodowej przechowywano w temperaturze pokojowej przez 1 godzinę i wirowano w 1 400 × g przez 10 minut. Serum było oddzielane i przechowywane w temperaturze −80 °C do czasu użycia. Poziomy surowicy AKT1, STAT3 i Bcl-2 zostały zmierzone za pomocą enzymatycznego immunosorbentnego testu (ELISA). Testy przeprowadzano zgodnie z protokołami producenta. Absorpcja została odczytana na 450 nm, a stężenia wyznaczano na podstawie standardowych krzywych. Zakresy wykrywania dla AKT1, STAT3 i BCL-2 wynosiły odpowiednio 0,625–40 ng/mL, 31,25–1000 pg/mL oraz 0,16–10 ng/mL, z czułością 0,1 ng/mL, 10 pg/mL i 0,1 ng/mL. Wszystkie próbki surowicy zostały przeanalizowane bez rozcieńczenia, a wszystkie wyniki mieściły się w odpowiednich standardowych zakresach krzywych. Wszystkie próbki i standardy zostały przebadane w duplikacie, a normalizacja została przeprowadzona na podstawie równych objętości surowicy.
Wykrywanie poziomów ekspresji genów PCR
Tkanki międzykręgowych dysków zostały rozdzielone od kręgów ogonowych szczurów, a z każdej próbki pobrano około 20 mg. Tkanki zostały rozdrobnione w ciekłym azocie i zlikwidowane w 500 μL nieenzymatycznego buforu lizyzowego przez 15 minut. Następnie wyekstrahowano całkowite RNA, a jego stężenie i czystość mierzono spektrofotometrem. Próbki o wartościach A260/A 280 1,8–2,0 zostały zaakceptowane do analizy, a stężenia RNA zostały dostosowane do 500 ng/μL. Transkrypcja odwrotna przeprowadzono zgodnie z protokołem producenta. Ilościowe PCR (qPCR) przeprowadzono na systemie PCR w czasie rzeczywistym w celu pomiaru ekspresji mRNA Akt1, Bcl-2 i Stat3 . Sekwencje pierwsze przedstawiono w Tabeli 1. Program PCR polegał na początkowej denaturacji w 95 °C przez 30 s, następnie 40 cyklach 95 °C przez 5 s i 60 °C przez 30 s. Analiza krzywej topnienia została przeprowadzona po amplifikacji w celu zweryfikowania specyficzności produktu. Gapdh został użyty jako gen referencyjny, a wszystkie próbki zostały przeanalizowane w trzech egzemplarzach. Efektywność wzmacniania sprężyny wynosiła 90%–110%. Relatywną ekspresję genów obliczono metodą 2−ΔΔCt .
Western blotting do wykrywania poziomu ekspresji białek
Całkowite białko zostało wyizolowane z tkanek międzykręgowych szczurów z każdej grupy. Tkanki były lizowane w buforze RIPA uzupełnionym inhibitorami proteazy. Stężenie białka zmierzono za pomocą zestawu do analizy białek BCA i dostosowano do 2 μg/μL. Równe ilości białka (15 μg na próbkę) zostały rozdzielone przez 10% SDS-PAGE i przeniesione do błon poliwinylinofluorku (PVDF) przy stałym prądzie 300 mA przez 90 minut za pomocą systemu transferu na mokro. Błony były następnie blokowane 5% mlekiem beztłuszczowym przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej i inkubowane przez noc w temperaturze 4 °C z głównymi przeciwciałami przeciwko AKT1 (1:5 000), STAT3 (1:6 000), Bcl-2 (1:1 500) oraz β-aktynie (1:4 000). Po płukaniu TBST błony były inkubowane przeciwciałami wtórnymi sprzężonymi z nadkrzezanem chrzanowym (HRP) w rozcieńczeniu 1:5 000 przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej. Pasma białkowe wykryto za pomocą odczynnika o zwiększonej chemiluminescencji (ECL), a obrazy uzyskano za pomocą żelowego systemu obrazowania w identycznych warunkach ekspozycji. Intensywności pasmowe zmierzono za pomocą ImageJ i znormalizowano do β-aktyny, aby określić względną ekspresję białek. Każdy eksperyment przeprowadzono niezależnie w trzech egzemplarzach, przy czym każda próbka pochodziła z innego zwierzęcia.
Statystyki
Wyniki wyraża się jako średnia ± odchyleniu standardowym (SD). Różnice między grupami oceniono za pomocą jednokierunkowej analizy wariancji (ANOVA), a następnie testu po dokontekcie najmniejszej istotnej różnicy (LSD). Istotność statystyczna została zdefiniowana jako P < 0,05.