Wszystkie procedury z udziałem zwierząt zostały przeprowadzone zgodnie z instytucjonalnymi wytycznymi dotyczącymi opieki i wykorzystania zwierząt laboratoryjnych i zostały zatwierdzone przez Komitet Etyki ds. Zwierząt Uniwersytetu Medycyny Chińskiej w Anhui (numer zatwierdzenia AHUCM-rabbits-2023195). Odczynniki, substancje chemiczne, oprogramowanie i narzędzia użyte w niniejszym protokole zostały wymienione w Tabeli materiałów.
1. Zwierzęta doświadczalne i podział na grupy
Pięćdziesiąt zdrowych dorosłych samców królików Nowozelandzkich Białych (w wieku 6 miesięcy, o masie 2,0–2,5 kg) pozyskano z fermy hodowlanej Nanjing Pukou District Laifu (licencja produkcji zwierząt nr: SCXK (Su) 2024-07). Wszystkie zwierzęta przeszły 1-tygodniowy okres aklimatyzacji i karmienia przed rozpoczęciem eksperymentu. Prawy staw kolanowy wyznaczono do oceny obrzęku, a lewy staw kolanowy do pobrania tkanki chrząstki, zgodnie ze stałą konwencją proceduralną, a nie w oparciu o konkretną hipotezę badawczą. Po aklimatyzacji króliki zostały losowo przydzielone do pięciu grup (n = 10 na grupę): grupy kontrolnej, która nie została poddana procedurze modelowania ani leczeniu; grupy modelu KOA, w której indukowano KOA zmodyfikowaną metodą Videmana; grupy celekoksybu, w której leczenie farmakologiczne rozpoczęto 6 tygodni po modelowaniu; grupy akupotomii, w której zabieg akupotomii rozpoczęto 6 tygodni po modelowaniu; oraz grupy pozornej akupotomii, w której wprowadzanie igieł bez nacinania lub rozluźniania rozpoczęto 6 tygodni po modelowaniu.
2. Ustanowienie modelu KOA
Wszystkie króliki, z wyjątkiem osobników z grupy kontrolnej, zostały poddane zmodyfikowanej procedurze Videmana w celu wywołania KOA. Zwierzęta pozostawiono na czczo przez 12 h przed operacją. Znieczulenie wprowadzono poprzez dożylną administrację 3% pentobarbitalu sodowego w dawce 30 mg/kg przez brzeżną żyłę uszną. Po rutynowym przygotowaniu miejsca operacyjnego, dezynfekcji i założeniu sterylnych pól, wykonano cięcie wzdłuż przyśrodkowej strony stawu kolanowego. Następnie kolejno przecięto więzadło poboczne przyśrodkowe oraz więzadło krzyżowe przednie, a łąkotkę przyśrodkową usunięto całkowicie. Następnie rano cięcia zamknięto warstwowo.
Aby zmniejszyć ryzyko infekcji pooperacyjnej, podawano penicylinę domięśniowo w dawce 40 00 U/kg/dobę przez 3 kolejne dni. Po operacji króliki wróciły do klatek, gdzie zapewniono im swobodę ruchu bez unieruchamiania stawów.
3. Zabieg pozornej akupotomii
W 6. tygodniu po indukcji KOA króliki w grupie pozornej akupotomii poddano tym samym procedurom palpacyjnym i wyznaczaniu punktów, co w przypadku aktywnego leczenia akupotomią. Sterylną jednorazową igłę do akupotomii o wymiarach 0,35 mm × 25 mm wprowadzono prostopadle przez skórę w każdym wyznaczonym punkcie, aż do osiągnięcia tkanki podskórnej. Nie wykonywano nacinania, rozluźniania, manipulacji poprzecznych ani żadnych innych manewrów mechanicznego uwalniania tkanek. Igłę wycofano natychmiast po wprowadzeniu, bez manipulacji w tkankach. Zabieg pozorny przeprowadzano raz w tygodniu przez 4 kolejne tygodnie.
4. Zabieg akupotomii
W 6. tygodniu po stworzeniu modelu KOA króliki z grupy akupotomii unieruchomiono na stole zabiegowym. Przeprowadzono palpację tkanek okołostawowych w obrębie dotkniętego kolana, szczególnie wokół rzepki oraz w przyśrodkowej i bocznej szczelinie stawowej, aby zidentyfikować struktury przypominające sznury lub twarde guzki. Na podstawie wyników palpacji wybrano od czterech do sześciu punktów zabiegowych i zaznaczono je na skórze.
Obszar zabiegowy zostanie ogolony i zdezynfekowany zgodnie ze standardowymi procedurami sterylnymi. Sterylną jednorazową igłę do akupotomii o wymiarach 0,35 mm × 25 mm wprowadzono powoli i prostopadle w każdym zaznaczonym punkcie, aż do osiągnięcia powierzchni kości. Procedurę wykonano zgodnie z czterostopniową techniką akupotomii. W pierwszej kolejności wykonano zwolnienie podłużne, a następnie separację poprzeczną. W przypadku napotkania twardego guzka, nacinano go do momentu odczucia wyraźnego zwolnienia oporu za pomocą igły-noża. Po zakończeniu procedury igłę wycofano, a każde miejsce wkłucia krótko uciśnięto sterylną gazą i przykryto plastrem z opatrunkiem. Zabiegi przeprowadzano raz w tygodniu przez 4 kolejne tygodnie.
5. Leczenie farmakologiczne
W 6. tygodniu po stworzeniu modelu KOA, króliki w grupie celekoksybu otrzymywały zawiesinę celekoksybu drogą doustną w dawce 24 mg/kg raz dziennie przez 4 kolejne tygodnie. Zawiesinę przygotowywano każdego dnia na świeżo w soli fizjologicznej. Informacje o dostawcy i numerach katalogowych znajdują się w Tabeli Materiałów.
6. Ocena obrzęku stawu kolanowego
Po zakończeniu okresu interwencji, czyli 10 tygodni po wywołaniu modelu KOA, oceniono obrzęk stawu kolanowego. Wokół najbardziej obrzękniętego obszaru prawego stawu kolanowego, zazwyczaj na poziomie plateau kości piszczelowej, owinięto miękką jedwabną nitkę. Nitkę zdjęto i zmierzono linijką z dokładnością do 1 mm, a zarejestrowaną długość zdefiniowano jako obwód kolana.
Względny stopień pęcznienia obliczono za pomocą następującego równania:

7. Pobieranie próbek
Po zakończeniu okresu interwencji króliki zanieczulono poprzez dożylne podanie 3% pentobarbitalu sodu w dawce 30 mg/kg przez brzeżną żyłę uszną. Lewy staw kolanowy otwarto za pomocą skalpela z ostrzem nr 23, aby odsłonić powierzchnie stawowe plateau kości piszczelowej i kłykci kości udowej. Z tych obszarów pobrano tkankę chrząstki stawowej.
Każdą próbkę chrząstki podzielono na dwie części. Jedną część utrwalono w 4% paraformaldehydzie do badania histopatologicznego. Drugą część umieszczono w probówkach kriogenicznych, szybko zamrożono w ciekłym azocie i przechowywano w temperaturze −80 °C do czasu przeprowadzenia analiz molekularnych. Natychmiast po zakończeniu wszystkich procedur pobierania tkanek króliki uśpiono poprzez zator powietrzny, stosując szybki wtrysk powietrza dożylnie przez brzeżną żyłę uszną.
Barwienie histologiczne oraz ocena w skalach Mankina i Morana zostały przeprowadzone na próbkach chrząstki od wszystkich 10 królików w każdej grupie (n = 10). Reprezentatywne obrazy po barwieniu hematoksyliną i eozyną oraz Safranin O–Fast Green wybrano z trzech losowo wybranych królików na grupę. Immunohistochemię oraz Western blotting przeprowadzono z wykorzystaniem próbek od trzech losowo wybranych królików na grupę (n = 3). Ilościową reakcję polimerazy łańcuchowej z odwrotną transkrypcją oraz test ELISA wykonano na próbkach od sześciu losowo wybranych królików na grupę (n = 6). Wszystkie wybory podzbiorów przeprowadzono losowo, bez uprzedniej wiedzy o przydziale do grup.
8. Barwienie hematoksyliną i eozyną
Tkankę chrzęstną utrwaloną w 4% paraformaldehydzie odwapniano w 10% roztworze kwasu etylenodiaminotetraoctowego (EDTA) o pH 7,4 przez 4–6 tygodni. Roztwór odwapniający wymieniano co 3 dni. Po potwierdzeniu odwapnienia za pomocą badania penetracji igłą, tkankę odwodniono, przechodząc przez szereg stężeń etanolu: 70%, 80%, 90%, 95% i 10%, odbarwiono w ksylenie i zatopiono w parafinie. Zatopioną tkankę pocięto na skrawki o grubości 5 µm przy użyciu mikrotomu, a następnie naniesiono je na szkiełka przedmiotowe.
W przypadku barwienia hematoksyliną i eozyną preparaty poddawano działaniu temperatury 60 °C przez 60 min, odparafinowano w ksylenie (trzykrotna wymiana, każdorazowo przez 5 min), a następnie rehydratowano sekwencyjnie w etanolu o stężeniach 10%, 95%, 80% i 70%, kończąc wodą destylowaną. Preparaty barwiono hematoksyliną przez 5 min, płukano pod bieżącą wodą z kranu przez 10 min, różnicowano w 1% kwasie solnym przygotowanym w 70% etanolu przez 2–3 s i płukano wodą destylowaną. Następnie preparaty barwiono eozyną przez 2 min, płukano wodą destylowaną, odwadniano w etanolu o stężeniach 70%, 80%, 90%, 95% i 10%, odbarwiano w ksylenie i zamykano w neutralnej żywicy. Przebadano morfologię chrząstki i wykonano reprezentatywne zdjęcia przy użyciu mikroskopu świetlnego.
9. Barwienie safraniną O i Fast Green
Przekroje chrząstki zatopione w parafinie odparafinowano i rehydratowano zgodnie z opisem w punkcie 8. Przekroje barwiono hematoksyliną żelazową Weigerta przez 5 min, a następnie płukano wodą destylowaną. Następnie przekroje barwiono 0,05% roztworem Fast Green przez 3 min, krótko płukano w 1% kwasie octowym przez 10–15 s i barwiono 0,1% roztworem safraniny O przez 5 min.
Po barwieniu przekroje szybko odwodniono w 95% i 10% etanolu, przejrzystowano w ksylenie i zamontowano w żywicy neutralnej. Zabarwione przekroje zbadano za pomocą mikroskopu świetlnego. Intensywność barwienia safraniną O, odzwierciedlająca zawartość proteoglikanów, została przeanalizowana półilościowo przy użyciu oprogramowania do analizy obrazu.
10. Ocena histologiczna
Dwóch patologów, nieznających przydziału grup eksperymentalnych, niezależnie oceniało barwione przekroje, stosując systemy punktacji Mankina i Morana w celu określenia stopnia degeneracji chrząstki. Przed oceną wszystkim przekrojom przypisano losowe kody identyfikacyjne. Informacje o przydziale do grup terapeutycznych nie zostały ujawnione patologom aż do zakończenia całego procesu punktacji23.
1. Test enzymoimmunologiczny (ELISA)
Zważoną zamrożoną tkankę chrząstki połączono z buforem fosforanowym o pH 7,4 i dokładnie homogenizowano na lodzie. Homogenat odwirowano przy 3,0 × g przez 20 min w temperaturze 4 °C, a następnie zebrano nadosad dla celów analizy. Stężenia interleukiny-1β (IL-1β), czynnika martwicy nowotworów-α (TNF-α) oraz interleukiny-6 (IL-6) w nadosadzie tkankowym zmierzono przy użyciu zestawów do testu ELISA specyficznych dla królika, zgodnie z instrukcjami producenta.
12. Ilościowa reakcja polimerazy w łańcuchu z odwrotną transkrypcją
Całkowity RNA wyekstrahowano z tkanki chrząstki, stosując metodę opartą na fenolu i chloroformie. W skrócie, tkankę lizo-wano w odczynniku do ekstrakcji RNA, a następnie dodano chloroform w celu rozdzielenia fazy wodnej i organicznej. Zebrano fazę wodną, a RNA wytrącono izopropanolem, przemyto 75% etanolem, wysuszono na powietrzu i rozpuścili w wodzie traktowanej piroweglanem dietylu. Stężenie i czystość RNA zmierzono za pomocą spektrofotometru.
Przed odwrotną transkrypcją pozostałości genomicznego DNA usunięto za pomocą odczynnika do eliminacji genomicznego DNA. Następnie zsyntetyzowano komplementarne DNA, korzystając z zestawu do odwrotnej transkrypcji zgodnie z instrukcją producenta. Ilościową reakcję łańcuchową polimerazy przeprowadzono z wykorzystaniem metody detekcji opartej na SYBR Green w systemie do polimerazy łańcuchowej w czasie rzeczywistym. Warunki cykliczne były następujące: wstępna denaturacja w 95 °C przez 1 min, a następnie 40 cykli denaturacji w 95 °C przez 20 s oraz przyłączania i elongacji w 60 °C przez 1 min. W celu oceny specyficzności amplifikacji przeprowadzono analizę krzywej dysocjacji.
Zmierzono poziomy ekspresji metaloproteinazy macierzy-3 (MMP-3), metaloproteinazy macierzy-13 (MMP-13), czynnika transkrypcyjnego SRY-box 9 (SOX9), agrekanu, RIC8A oraz circPDE4B. β-actin wykorzystano jako wewnętrzny gen referencyjny. Ekspresję względną obliczono przy użyciu opisanej metody. Sekwencje starterów znajdują się w Tabeli 1.
13. Analiza Western blot
Tkankę chrząstki poddano lizie w buforze do radioimmunoprecypitacji wzbogaconym o fluorek fenylometylosulfonylowy. Lizat wirowano przy 12,0 × g przez 15 min w temperaturze 4 °C, a nadfiltr zebrano jako frakcję białek całkowitych. Stężenie białka oznaczono za pomocą testu kwasu bicinchonowego.
Równe ilości białka (30 µg na ścieżkę) rozdzielono za pomocą 10% elektroforezy w żelu poliakryloamidowym z dodecylosiarczanem sodu, a następnie przeniesiono na membrany z polifluorku winylidenu, które uprzednio aktywowano w metanolu. Transfer przeprowadzono przy 30 mA w temperaturze 4 °C. Czasy transferu wynosiły: aggrecan (250 kDa) przez 90 min; MMP-3 (60 kDa), RIC8A (59 kDa), SOX9 (56 kDa) i MMP-13 (52 kDa) przez 50 min; oraz p38 MAPK (41 kDa) i GAPDH (36 kDa) przez 40 min. Membrany blokowano 5% odtłuszczonym mlekiem w proszku w buforze TBS-Tween 20 przez 2 h w temperaturze pokojowej. Następnie membrany inkubowano przez noc w 4 °C z przeciwciałami pierwszorzędowymi przeciwko MMP-3 (1:2,0), MMP-13 (1:1,0), SOX9 (1:1,0), aggrecan (1:1,0), RIC8A (1:1,50), fosforylowanemu p38 MAPK (1:1,0) oraz całkowitemu p38 MAPK (1:2,00). Jako kontrolę załadunku wykorzystano GAPDH (1:2,0). Po trzech przemyciach w buforze TBS-Tween 20 (po 10 min każde), membrany inkubowano z przeciwciałami drugorzędowymi koniugowanymi z peroksydazą chrzanową (1:20,0) przez 1,2 h w temperaturze pokojowej. Po trzech dodatkowych przemyciach prążki białkowe wizualizowano przy użyciu substratu do wzmocnionej chemiluminescencji i obrazowano za pomocą systemu dokumentacji żeli. Intensywność prążków ilościowo określono przy użyciu oprogramowania ImageJ i znormalizowano do GAPDH.
14. Immunohistochemia
Przetoki chrząstki zatopione w parafinie poddano deparafinizacji i rehydratacji w szeregu rozcieńczeń etanolu (trzykrotna zmiana ksylenu, po 5 min każda; następnie etanol 100%, 95% i 80%, po 3 min każdy). Odzyskiwanie antygenu przeprowadzono poprzez podgrzewanie skrawków w buforze EDTA (pH 9,0) w szybkowarze. Bufor podgrzano do wrzenia, a po osiągnięciu odpowiedniego ciśnienia proces odzyskiwania kontynuowano przez 2 min, po czym schłodzono preparaty do temperatury pokojowej. Endogenną aktywność peroksydazy zablokowano za pomocą 3% nadtlenku wodoru przez 10 min w temperaturze pokojowej. Po przemyciu niespecyficzne wiązanie zablokowano surowicą kozią przez 20 min w temperaturze pokojowej, w ciemności.
Przekroje inkubowano z przeciwciałami pierwszorzędowymi przeciwko fosforylowanej p38 MAPK (1:80) oraz fosforylowanemu jądrowemu czynnikowi kappa B (NF-κB) (1:30) przez 60 min w temperaturze 37 °C. Po trzech przemyciach solą fizjologiczną z buforem fosforanowym z dodatkiem Tween 20, przekroje inkubowano z odpowiednimi przeciwciałami wtórnymi sprzężonymi z peroksydazą chrzanową przez 30 min w temperaturze 37 °C. Po trzech kolejnych przemyciach zastosowano diaminobenzydynę do opracowania barwy (kontrolowanego pod mikroskopem), a następnie wykonano przeciwbarwienie hematoksyliną (2 min), różnicowanie w 1% kwasie solnym w 70% etanolu oraz niebieskie barwienie w roztworze węglanu litu (30 s). Następnie przekroje odwodniono, przejrzystowano, zamontowano i zbadano za pomocą mikroskopu świetlnego. Barwienie oceniono przy użyciu oprogramowania ImageJ, a do analizy półilościowej obliczono całkowitą gęstość optyczną.
15. Analiza statystyczna
Dane przedstawiono jako średnia ± SEM. Porównania wielu grup przeprowadzono za pomocą jednoczynnikowej analizy wariancji, a następnie testu post hoc Tukeya. Wartość P < 0,05 uznano za istotną statystycznie.