Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł przeglądowy

lncRNA i miRNA w pośrednictwie egzosoma polaryzacji makrofagów: Implikacje dla zwyrodnienia plamki przy czaśnie związanego z wiekiem

93 wyświetleń

DOI:

10.3791/71424

31 lipca 2026

W tym artykule

Podsumowanie

Niniejsza recenzja bada, w jaki sposób mikrookręgi związane z egzosomami i długie niekodujące RNA regulują polaryzację makrofagów i sygnały zapalno-angiogenne w związanej z wiekiem zwyrodnieniu plamki żółtej, podkreślając ich potencjał diagnostyczny i terapeutyczny.

Streszczenie

Postępująca związana z wiekiem zwyrodnienie plamki żółtej (AMD) jest progresywną i wieloczynnikową chorobą siatkówki, która stanowi główną przyczynę nieodwracalnej utraty wzroku wśród osób starszych. Rosnące dowody sugerują, że egzosome, małe pozakomórkowe wezykuły, które pośredniczą w komunikacji międzykomórkowej, odgrywają kluczową rolę w regulacji sygnałów immunologicznych i angiogennych w siatkówce. Te wezykuły transportują różnorodne cząsteczki, w tym mikroRNA (miRNA) i długie niekodujące RNA (lncRNA). Ostatnie badania podkreślają znaczenie sygnałowania ncRNA z pośrednictwem egzosomów w polaryzacji makrofagów, kluczowy proces immunologiczny zaangażowany w progresję AMD. Egzosomowe miRNA i lncRNA uwalniane z komórek nabłonka barwnikowego siatkówki (RPE), komórek śródbłonka i komórek odpornościowych mogą regulować fenotypy makrofagów i zmieniać ścieżki zapalne i angiogenne w obrębie siatkówki. Dysregulowany ncRNA, w tym miR-21, miR-23a, miR-150 i lncRNA NEAT1, zostały zaangażowane w promowanie zapalenia napędzanego przez makrofagi, dysregulacji lipidów i patologicznej neowaskularyzacji. Dzięki tym mechanizmom, egzosomowe ncRNA przyczyniają się do przejścia od wczesnego stresu siatkówki i tworzenia się guzków do zaawansowanych postaci AMD charakteryzujących się geograficzną atrofią lub neowaskularyzacją chłodniaka. Oprócz ich mechanistycznej roli w progresji choroby, egzosomowe ncRNA wykazują obiecujące zastosowanie jako minimalnie inwazyjne biomarkery do wczesnej diagnozy i monitorowania AMD. Ich stabilność w płynach biologicznych, takich jak osocze, płyn wodnisty i szklistka, sugeruje ich potencjalne zastosowanie w podejściach do biopsji płynowej. Ponadto, inżynieryzowane egzosome zawierające terapeutyczne ncRNA reprezentują obiecującą strategię modyfikacji polaryzacji makrofagów i przywracania homeostazy immunologicznej siatkówki. Przegląd ten integruje obecną wiedzę na temat osi egzosom-ncRNA-makrofag w AMD, podkreślając jej rolę w regulacji odpowiedzi immunologicznej siatkówki, progresji choroby i rozwoju terapii. Zrozumienie tej nowo powstałej sieci sygnałowej może zapewnić nowe możliwości dla opracowania precyzyjnych narzędzi diagnostycznych i ukierunkowanych terapii w celu zapobiegania lub spowolnienia zwyrodnienia siatkówki w AMD.

Wprowadzenie

Przerostowa zwyrodnieniowa plamki żółtej (AMD) jest jedną z najczęstszych przyczyn nieodwracalnej utraty wzroku, szczególnie wśród osób starszych. Jest to zaburzenie siatkówki, które dotyka przede wszystkim plamkę żółtą, centralny region siatkówki odpowiedzialny za percepcję kolorów, szczegółowe widzenie centralne i drobne zadania wzrokowe1. AMD charakteryzuje się progresywnym zwyrodnieniem plamki żółtej, która jest niezbędna dla widzenia o wysokiej rozdzielczości. W zaawansowanych stadiach choroba objawia się w dwóch głównych formach: geograficznej atrofii (AMD sucha) i nowotworzeniu naczyniowym (AMD mokra), ta ostatnia obejmuje neowaskularyzację naczyniówki (CNV)2.

Wiele mechanizmów patobiologicznych przyczynia się do rozwoju AMD, w tym stres oksydacyjny, przewlekła nieżyt, nieprawidłowa angiogenesza i dysregulacja metabolizmu lipidów oraz układu dopełniacza. W ostatnich latach coraz większą uwagę zwraca się na rolę komórek immunologicznych, szczególnie makrofagów i mikrogleju, oraz ich interakcje z komórkami nabłonka barwnikowego siatkówki (RPE) w patogenezie AMD3. Makrofagi wykazują funkcyjną plastyczność i mogą polaryzować się na odrębne fenotypy w odpowiedzi na sygnały mikrośrodowiska. Fenotypami tymi są szeroko sklasyfikowane makrofagi M1 (aktywowane klasycznie) i M2 (aktywowane alternatywnie). Makrofagi M1 są zazwyczaj indukowane przez bodźce takie jak interferon-γ (IFN-γ), lipopolisacharyd (LPS) i czynnik nekrozujący guz-α (TNF-α). Wytwarzają cytokiny prozapalne—w tym interleukinę-1β (IL-1β), interleukinę-12 (IL-12) i TNF-α—oraz reaktywne formy tlenu (ROS), promując w ten sposób usuwanie patogenów, ale także przyczyniając się do uszkodzenia tkanek4.

Natomiast makrofagi M2 są indukowane przez cytokiny takie jak interleukina-4 (IL-4), interleukina-13 (IL-13), interleukina-10 (IL-10) i czynnik transformujący wzrost-β (TGF-β). Te komórki wytwarzają środki przeciwzapalne i pełnią role w naprawie tkanek, angiogenezie, remodelacji macierzy pozakomórkowej i regulacji odpowiedzi immunologicznej. Chociaż terminologia M1/M2 jest użyteczna w organizowaniu biologii makrofagów, reprezentuje uproszczony model i nie powinna być interpretowana jako ścisła binarne klasyfikacja w AMD. Makrofagi siatkówki, mikroglej stały i makrofagi pochodzenia monocytów mogą zajmować mieszane, przejściowe lub specyficzne dla fazy choroby stany immunologiczne. Ich fenotyp jest kształtowany przez lokalizację w siatkówce, starzenie się, stres oksydacyjny, dysfunkcję mitochondriów, gromadzenie lipidów, aktywację dopełniacza, niedobór tlenu, stany zapalne związane z grudkami oraz neowaskularyzację naczyniówki i ekspozycję na terapię przeciwko VEGF. Dlatego w tej recenzji terminy M1-podobne i M2-podobne są używane jako kategorie funkcjonalne opisowe, a nie stałe tożsamości komórkowe. W AMD programy makrofagów zapalnych, angiogennych, naprawczych i zwyrodnieniowych mogą się nakładać, a ta sama populacja komórek może przyczyniać się do naprawy tkanek w jednym kontekście, a promować przewlekłe zapalenie lub patologiczną angiogeneszę w innym.

Niewłaściwa aktywność i infiltracja makrofagów w siatkówce mogą przyczyniać się do kilku patologicznych cech AMD, w tym tworzenia grudek, zwyrodnienia nabłonka barwnikowego, nowotworzeniu naczyni i postępu choroby. Na przykład starzejące się makrofagi wykazują zmieniony metabolizm lipidów, zwiększone ekspresję genów proangiogennych i upośledzoną homeostazę komórkową, co może przyspieszyć patologię AMD5. Polaryzacja makrofagów jest szczególnie istotna w AMD, ponieważ starzejąca się siatkówka i naczyniówka są narażone na przewlekłą niskiego stopnia nieżyt (często nazywaną 'inflammaging'), a także na stres oksydacyjny i gromadzenie lipidów. Warunki te mogą przesunąć zachowanie makrofagów w kierunku dysfunkcyjnych fenotipow, które zaostrzają uszkodzenie siatkówki6. Na przykład badania nad mikroRNA-150 (miR-150) wykazały, że starzejące się makrofagi wykazują zwiększoną ekspresję miR-150, która zakłóca metabolizm lipidów i zwiększa ekspresję genów proangiogennych. Ten mechanizm łączy dysfunkcję makrofagów z patogenezą AMD, jak podsumowano w Tabeli 1. Mechanizmatycznie, dostępne dowody wspierają zintegrowany model, w którym stres siatkówki związany ze starzeniem się zmienia komunikację pośredniczoną egzosomami między komórkami RPE, komórkami śródbłonka, mikroglejem i infiltracją makrofagów. Stres oksydacyjny, gromadzenie lipidów, dysfunkcja mitochondriów, aktywację dopełniacza i niedobór tlenu mogą zmienić ładunek ncRNA egzosomów, wpływając w ten sposób na sygnałowanie zapalne i angiogenne. W tym kontekście miRNA, takie jak miR-150, miR-21, miR-146a i miR-155, oraz lncRNA, takie jak NEAT1, mogą przyczyniać się do przeprogramowania makrofagów lub mikrogleju, chociaż stopień bezpośredniej wal

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przegląd i perspektywa

Eksony jako mediatory komunikacji międzykomórkowej w siatkówce
Dodatkowe klasyfikatory: Biologiya, Biologia Komórki, Biologia Molekularna, Biologia Komórki Macierzystej, Neurobiologia, Biofizyka, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Medycyna Wewnętrzna, Okulistyka, Biologia Rozwoju, Genetyka, Biologia Komórki Macierzystej, Neurobiologia Kliniczna, Medycyna Regeneracyjna, Biologia Komórki Macierzystej, Neurobiologia, Biologia Rozwoju, Genetyka, Biofizyka, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Neurobiologia, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzystej, Biologia Molekularna, Bioinżynieria, Biotechnologia, Medycyna Precyzyjna, Medycyna Regeneracyjna, Neurobiologia Kliniczna, Biologia Komórki Macierzy

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wnioski

Zwyrodnienie plamki związane z wiekiem (AMD) jest postępującą, wieloczynnikową i w dużej mierze nieodwracalną chorobą siatkówki, napędzaną przez złożone interakcje między stresem komórkowym, przewlekłym stanem zapalnym, zaburzeniami metabolizmu lipidów a dysregulacją odpornościową. Niniejszy przegląd podkreśla krytyczny wkład dysfunkcji nabłonka pigmentowego siatkówki (RPE), uszkodzeń oksydacyjnych i mitochondrialnych, zmian hemodynamicznych oraz aktywacji dopełniacza w inicjacji i przyspieszaniu degeneracji siatkówki po...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Niektóre schematyczne ilustracje zostały stworzone lub uszczypięte przy użyciu BioRender i/lub narzędzi do projektowania graficznego wspomaganego sztuczną inteligencją. Wszystkie figury zostały następnie przejrzane, edytowane i zweryfikowane przez autorów w celu zapewnienia dokładności naukowej, spójności z cytowaną literaturą i zgodności z wymaganiami czasopisma. Autorzy przyjmują pełną odpowiedzialność za treść i dokładność wszystkich figur.

Bibliografia

  1. Josephine, H. C. W. et al. Exploring the pathogenesis of age-related macular degeneration: A review of the interplay between retinal pigment epithelium dysfunction and the innate immune system. Front. Neurosci. 16, 1009599 (2022).
  2. Surabhi, R., Evan, J. K. Macular degeneration. Optical Coherence Tomography, 11-27 (2023).
  3. Thierry, L., Nancy, J. P., Florian, S. Is retinal metabolic dysfunction at the center of the pathogenesis of age-related macular degeneration? Int. J. Mol. Sci. 20 (2019).
  4. Nady, G. et al. Dysfunctional autophagy in RPE, a contributing factor in age-related macular degeneration. Cell Death Dis. 8 (2017).
  5. Mei, C. et al. Retinal pigment epithelial cell multinucleation in the aging eye - a mechanism to repair damage and maintain homoeostasis. Aging Cell 15, 436-445 (2016).
  6. Rupesh, A. et al. Cytokine profiling in patients with exudative age-related macular degeneration and polypoidal choroidal vasculopathy. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 60, 376-382 (2019).
  7. Abbas, S.-M. et al. Macrophage plasticity, polarization, and function in health and disease. J. Cell. Physiol. 233, 6425-6440 (2018).
  8. Holly, R. C., Paul, G. M., Samantha, J. D. Macrophage physiology in the eye. Pflugers Arch. Eur. J. Physiol. 469, 501-515 (2017).
  9. Tatsuya, M., Hidetaka, N. Oxidative stress in age-related macular degeneration: From molecular mechanisms to emerging therapeutic targets. Antioxidants 14 (2025).
  10. Felix, G. et al. Genetic pleiotropy between age-related macular degeneration and 16 complex diseases and traits. Genome Med. 9 (2017).
  11. Imran, B., Gerard, L. Understanding age-related macular degeneration (AMD): Relationships between the photoreceptor/retinal pigment epithelium/Bruch's membrane/choriocapillaris complex. Mol. Aspects Med. 33, 295-317 (2012).
  12. Jobling, A. I. et al. Nanosecond laser therapy reverses pathologic and molecular changes in age-related macular degeneration without retinal damage. FASEB J. 29, 696-710 (2015).
  13. Alice, B. et al. Transcriptomic analysis of choroidal neovascularization reveals dysregulation of immune and fibrosis pathways that are attenuated by a novel anti-fibrotic treatment. Sci. Rep. 12 (2022).
  14. Siting, S. et al. MicroRNA-loaded antioxidant nanoplatforms for prevention and treatment of experimental acute and chronic uveitis. Biomaterials 322 (2025).
  15. Yingming, W. et al. M2 macrophages mitigate ocular surface inflammation and promote recovery in a mouse model of dry eye. Ocul. Immunol. Inflamm. 33, 1330-1339 (2025).
  16. Yuting, Z. et al. Engineering drug-eluting ocular bioadhesive “OcuTAPE” via tannic acid-mediated nanoparticle bridging. Adv. Funct. Mater. (2025).
  17. Dangdang, W. et al. Integrated single-cell RNA and ATAC sequencing of B-cell lymphoma-3 (Bcl3) and endothelin-2 (Edn2) proteins as targets to prevent glaucoma progression. Int. J. Biol. Macromol. 319 (2025).
  18. Chiraz, A., Fatma, Z. G., Dhafer, L. Role of human macrophage polarization in inflammation during infectious diseases. Int. J. Mol. Sci. 19 (2018).
  19. Eleonora, M. L. et al. Abundance of infiltrating CD163+ cells in the retina of postmortem eyes with dry and neovascular age-related macular degeneration. Graefes Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 253, 1941-1945 (2015).
  20. Jiawei, Y., Tiffany, H. Lipid metabolism in regulation of macrophage functions. Trends Cell Biol. 30, 979-989 (2020).
  21. Fengna, C. et al. The roles of macrophages and microglia in multiple sclerosis and experimental autoimmune encephalomyelitis. J. Neuroimmunol. 318, 1-7 (2018).
  22. Holz, F. G. et al. Determinants of visual acuity outcomes in eyes with neovascular AMD treated with anti-VEGF agents: An instrumental variable analysis of the AURA study. Eye (Lond). 30, 1063-1071 (2016).
  23. Tiarnan, D. K. et al. Choroidal thickness and vascularity vary with disease severity and subretinal drusenoid deposit presence in nonadvanced age-related macular degeneration. Retina 40, 632-642 (2020).
  24. Xirui, Y. et al. Emerging roles of the immune microenvironment in glaucoma. Clin. Exp. Optom. (2025).
  25. Tingting, L. et al. The role of microglia in the development of diabetic retinopathy and its potential clinical application. Hum. Cell 38 (2025).
  26. Ursula, G. et al. Correlation of histologic features with in vivo imaging of reticular pseudodrusen. Ophthalmology 123, 1320-1331 (2016).
  27. Ohisa, H. et al. Retinal microglia: Revealing new opportunities for identifying early biomarkers of diabetic retinopathy. Curr. Eye Res. 50, 973-981 (2025).
  28. Jia, G., Wei, W., Ya, M. Retinal degenerative diseases: Complement system-microglia crosstalk. Surv. Ophthalmol. (2025).
  29. Trent Tsun Kang, C. et al. Macular thickness in intermediate age-related macular degeneration is influenced by disease severity and subretinal drusenoid deposit presence. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 61 (2020).
  30. Le xun, W. et al. M2b macrophage polarization and its roles in diseases. J. Leukoc. Biol. 106, 345-358 (2019).
  31. Ben, J. G. et al. Deficits in monocyte function in age related macular degeneration: A novel systemic change associated with the disease. Front. Med. 8 (2021).
  32. Diana, M. N., Megan, M. M., Jonathan, P. G. Microglial priming and enhanced reactivity to secondary insult in aging, and traumatic CNS injury, and neurodegenerative disease. Neuropharmacology 96, 29-41 (2015).
  33. Marco, O. et al. Macrophage polarization: Different gene signatures in M1 (Lps+) vs. classically and M2 (LPS-) vs. alternatively activated macrophages. Front. Immunol. 10 (2019).
  34. Sarah, C. S. et al. Platelets play differential role during the initiation and progression of autoimmune neuroinflammation. Circ. Res. 117, 779-792 (2015).
  35. Sudhakar, R. S., Howard, J. F. Targeting microglial activation states as a therapeutic avenue in Parkinson's disease. Front. Aging Neurosci. 9 (2017).
  36. Svati, B. et al. Experimental autoimmune uveitis and other animal models of uveitis: An update. Indian J. Ophthalmol. 63, 211-218 (2015).
  37. Ruyi, Q. et al. Glucocorticoids improve the balance of M1/M2 macrophage polarization in experimental autoimmune uveitis through the P38MAPK-MEF2C axis. Int. Immunopharmacol. 120 (2023).
  38. Tuan Leng, T., Nora, H., Marco, P. The force awakens: Insights into the origin and formation of microglia. Curr. Opin. Neurobiol. 39, 30-37 (2016).
  39. Yoshiaki, N. et al. Enhanced M2 polarization of retinal microglia in streptozotocin-induced diabetic mice upon autoimmune stimulation. Biomedicines 13 (2025).
  40. Yuting, L. et al. Microglia activation and migration in retina during acute high-altitude exposure. Exp. Eye Res. 261 (2025).
  41. Xavier, G. et al. On phagocytes and macular degeneration. Prog. Retin. Eye Res. 61, 98-128 (2017).
  42. Yike, H. et al. Aryl hydrocarbon receptor regulates apoptosis and inflammation in a murine model of experimental autoimmune uveitis. Front. Immunol. 9 (2018).
  43. Szilvia, L. et al. The role of CR3 (CD11b/CD18) and CR4 (CD11c/CD18) in complement-mediated phagocytosis and podosome formation by human phagocytes. Immunol. Lett. 189, 64-72 (2017).
  44. Benjamin, G. et al. Interferons and Toxoplasma gondii shape PD-L1 regulation in retinal barrier cells: the critical role of proteases. Front. Immunol. 16 (2025).
  45. Chiara, M. E. et al. Subretinal mononuclear phagocytes induce cone segment loss via IL-1β. eLife 5 (2016).
  46. Eran, B. et al. Aging disrupts circadian gene regulation and function in macrophages. Nat. Immunol. 23, 229-236 (2022).
  47. Fernanda Vargas, E. S. C. et al. CCR5-positive inflammatory monocytes are crucial for control of sepsis. Shock 52, E100-E106 (2019).
  48. Deborah, A. L. et al. MHC class II expression and potential antigen-presenting cells in the retina during experimental autoimmune uveitis. J. Neuroinflammation 14 (2017).
  49. Jason, F. et al. Impairments in dark adaptation are associated with age-related macular degeneration severity and reticular pseudodrusen. Ophthalmology 122, 2053-2062 (2015).
  50. Hong Ying, L. et al. STING immune activation of microglia aggravating neurovascular unit damage in diabetic retinopathy. Free Radic. Biol. Med. 233, 86-101 (2025).
  51. John Alimamy, K. et al. Microglia: Housekeeper of the central nervous system. Cell. Mol. Neurobiol. 38, 53-71 (2018).
  52. Marie Krogh, N. et al. Chemokine profile and the alterations in CCR5-CCL5 axis in geographic atrophy secondary to age-related macular degeneration. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 61 (2020).
  53. Matteo, B. et al. Relationship of macrophage-like cells and retinal ganglion cells in healthy eyes. Br. J. Ophthalmol. (2025).
  54. Mengdie, L. et al. Nanotherapeutics for ocular posterior segment diseases therapy: Towards its advances and challenges. Chin. Chem. Lett. 111392 (2025).
  55. Nathan, K. CXCR3 ligands in cancer and autoimmunity, chemoattraction of effector T cells, and beyond. Front. Immunol. 11 (2020).
  56. Xianyang, L. et al. Autophagy-mediated activation of the AIM2 inflammasome enhances M1 polarization of microglia and exacerbates retinal neovascularization. MedComm 5 (2024).
  57. Yijie, Y. et al. Targeted metabolomics reveals dysregulated tryptophan metabolism in retinitis pigmentosa. Exp. Eye Res. 260 (2025).
  58. Chao, H., Carter, A. B. The metabolic prospective and redox regulation of macrophage polarization. J. Clin. Cell. Immunol. 6 (2015).
  59. Haoran, L., Biao, L., Yanlin, Z. Role of microglia/macrophage polarisation in intraocular diseases (Review). Int. J. Mol. Med. 53, 1-19 (2024).
  60. Chongqing, Y. et al. Spatiotemporal immune dynamics in experimental retinal ganglion cell injury models. Immun. Inflamm. Dis. 13 (2025).
  61. Christopher, E. M. et al. CNS remyelination and the innate immune system. Front. Cell Dev. Biol. 4 (2016).
  62. Ashish Ranjan, S. et al. Recent research progress on circular RNAs: Biogenesis, properties, functions, and therapeutic potential. Mol. Ther. Nucleic Acids 25, 355-371 (2021).
  63. Bing, H., Jie, C., Honghong, Y. Circular RNA and its mechanisms in disease: From the bench to the clinic. Pharmacol. Ther. 187, 31-44 (2018).
  64. Carolyn, M., Bartholomew, S., Denis, W. Extracellular vesicles in immunomodulation and tumor progression. Nat. Immunol. 22, 560-570 (2021).
  65. Dany, P. et al. Clinical applications for exosomes: Are we there yet? Br. J. Pharmacol. 178, 2375-2392 (2021).
  66. Dan, Y. et al. Exosomes as a new frontier of cancer liquid biopsy. Mol. Cancer 21 (2022).
  67. Fang, L. et al. Novel insights into the role of long noncoding RNA in ocular diseases. Int. J. Mol. Sci. 17, 478 (2016).
  68. Hande, Ç., Erdağı, B. A., Özlem, Ş. Comparison of efficacy and side effects of multispot lasers and conventional lasers for diabetic retinopathy treatment. Turk Oftalmoloiji Derg. 47, 34-41 (2017).
  69. Cheng, P. et al. LncRNA-MALAT1/miRNA-204-5p/Smad4 axis regulates epithelial–mesenchymal transition, proliferation and migration of lens epithelial cells. Curr. Eye Res. 46, 1137-1147 (2021).
  70. Glory, R. et al. Exosomal mitochondrial tRNAs and miRNAs as potential predictors of inflammation in renal proximal tubular epithelial cells. Mol. Ther. Nucleic Acids 28, 794-813 (2022).
  71. Jafar, R., Maryam, F., Tahereh, E. A review on exosomes application in clinical trials: perspective, questions, and challenges. Cell Commun. Signal. 20 (2022).
  72. Jianli, W., Minghua, W. The up-regulation of miR-21 by gastrodin to promote the angiogenesis ability of human umbilical vein endothelial cells by activating the signaling pathway of PI3K/Akt. Bioengineered 12, 5402-5410 (2021).
  73. Jason, A. Z. et al. Systemic and ocular adverse events with intravitreal anti-VEGF therapy used in the treatment of diabetic retinopathy: A review. Curr. Diab. Rep. 22, 525-536 (2022).
  74. Jiahui, Z. et al. Engineered neutrophil-derived exosome-like vesicles for targeted cancer therapy. Sci. Adv. 8 (2022).
  75. Jin, Y. et al. Long non-coding RNA MALAT1 regulates retinal neurodegeneration through CREB signaling. EMBO Mol. Med. 14 (2022).
  76. Jong Ik, H., Juhee, R. Exosomal noncoding RNA: A potential therapy for retinal vascular diseases. Mol. Ther. Nucleic Acids 35, 102128 (2024).
  77. Juha, M. T. H. et al. Non-coding RNAs regulating mitochondrial functions and the oxidative stress response as putative targets against age-related macular degeneration (AMD). Int. J. Mol. Sci. 24 (2023).
  78. Juhee, R. et al. Circular RNA circSmoc1-2 regulates vascular calcification by acting as a miR-874-3p sponge in vascular smooth muscle cells. Mol. Ther. Nucleic Acids 27, 645-655 (2022).
  79. Lara, C., Mariafrancesca, S., Cesare, I. Exosomes in inflammation and role as biomarkers. Clin. Chim. Acta 488, 165-171 (2019).
  80. Marta, Z. et al. Exosomes in cardiovascular diseases. Diagnostics 10 (2020).
  81. Michael, C. G., Ashay, D. B., Thomas, C. RNA therapeutics for retinal diseases. Expert Opin. Biol. Ther. 21, 603-613 (2021).
  82. Meng, K. et al. Mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicles for immunomodulation and regeneration: a next generation therapeutic tool? Cell Death Dis. 13 (2022).
  83. Roi, I. et al. Exosomes as mediators of intercellular crosstalk in metabolism. Cell Metab. 33, 1744-1762 (2021).
  84. Pradeep Reddy, C. tRF-1001: A potential therapeutic target for ocular neovascular diseases. Mol. Ther. Nucleic Acids 31, 293-294 (2023).
  85. Shenrui, G. et al. Microglia polarization from M1 to M2 in neurodegenerative diseases. Front. Aging Neurosci. 14 (2022).
  86. Run Wen, Y., Yang, W., Ling Ling, C. Cellular functions of long noncoding RNAs. Nat. Cell Biol. 21, 542-551 (2019).
  87. Soudeh, G.-F. et al. Non-coding RNAs regulate angiogenic processes. Vasc. Pharmacol. 133-134 (2020).
  88. Wei Yi, Z. et al. Circular RNA: metabolism, functions and interactions with proteins. Mol. Cancer 19 (2020).
  89. Wenye, C. et al. Long non-coding RNAs in retinal neovascularization: current research and future directions. Graefes Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 261, 615-626 (2023).
  90. Xingyu, C. et al. miRNA, lncRNA and circRNA: Targeted molecules full of therapeutic prospects in the development of diabetic retinopathy. Front. Endocrinol. 12 (2021).
  91. Xiaolei, W. et al. TGF-β participates choroid neovascularization through Smad2/3-VEGF/TNF-α signaling in mice with laser-induced wet age-related macular degeneration. Sci. Rep. 7 (2017).
  92. Yuan, Z. et al. Characteristics and roles of exosomes in cardiovascular disease. DNA Cell Biol. 36, 202-211 (2017).
  93. Altesha, M. A. et al. Circular RNA in cardiovascular disease. J. Cell. Physiol. 234, 5588-5600 (2019).
  94. Andre, J. W. et al. Occlusive retinal vasculitis following intravitreal brolucizumab. J. Vitreoretin. Dis. 4, 269-279 (2020).
  95. Anil, K., Xuri, L. PDGF-C and PDGF-D in ocular diseases. Mol. Aspects Med. 62, 33-43 (2018).
  96. Bowen, Y., Yu, C., Jianlin, S. Exosome biochemistry and advanced nanotechnology for next-generation theranostic platforms. Adv. Mater. 31 (2019).
  97. Chunchen, L. et al. Single-exosome-counting immunoassays for cancer diagnostics. Nano Lett. 18, 4226-4232 (2018).
  98. Gum Yong, K. et al. Exosomal proteins in the aqueous humor as novel biomarkers in patients with neovascular age-related macular degeneration. J. Proteome Res. 13, 581-595 (2014).
  99. Ilgin, K.-G., Suphi, S. O. Exosomes: Large-scale production, isolation, drug loading efficiency, and biodistribution and uptake. J. Control. Release 347, 533-543 (2022).
  100. Jeong Sun, H. et al. Tear-derived exosome proteins are increased in patients with thyroid eye disease. Int. J. Mol. Sci. 22, 1-12 (2021).
  101. Han, D. et al. Oxidative stress-induced lncRNA CYLD-AS1 promotes RPE inflammation via Nrf2/miR-134-5p/NF-κB signaling pathway. FASEB J. 36 (2022).
  102. Joshua, A. C.-T. et al. MicroRNA-124 dysregulation is associated with retinal inflammation and photoreceptor death in the degenerating retina. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 59, 4094-4105 (2018).
  103. Jared, E. K. et al. Modulation of immune responses by extracellular vesicles from retinal pigment epithelium. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 57, 4101-4107 (2016).
  104. Marie, F. et al. Recent advances in age-related macular degeneration therapies. Molecules 27 (2022).
  105. Mikael, K., Stamer, W. D., Catherine Bowes, R. Polarized exosome release from the retinal pigmented epithelium. Adv. Exp. Med. Biol. 1074, 539-544 (2018).
  106. Lydia, A.-E. et al. Alpha-synuclein release by neurons activates the inflammatory response in a microglial cell line. Neurosci. Res. 69, 337-342 (2011).
  107. Lin, S. et al. KIBRA controls exosome secretion via inhibiting the proteasomal degradation of Rab27a. Nat. Commun. 10 (2019).
  108. Qing Fang, H. et al. Exosome biogenesis: machinery, regulation, and therapeutic implications in cancer. Mol. Cancer 21 (2022).
  109. Shiqi, Y., Jingke, Z., Xiaodong, S. Resistance to anti-VEGF therapy in neovascular age-related macular degeneration: A comprehensive review. Drug Des. Devel. Ther. 10, 1857-1867 (2016).
  110. Wanrong, M. et al. Exosome-orchestrated hypoxic tumor microenvironment. Mol. Cancer 18 (2019).
  111. Shuaishuai, Z. et al. Calpain-2 facilitates autophagic/lysosomal defects and apoptosis in ARPE-19 cells and rats induced by exosomes from RPE cells under NaIO3 stimulation. Oxid. Med. Cell. Longev. (2023).
  112. Yvonne, C. et al. A brief history of nearly EV-erything – The rise and rise of extracellular vesicles. J. Extracell. Vesicles 10 (2021).
  113. Zhenqiang, S. et al. Emerging role of exosome-derived long non-coding RNAs in tumor microenvironment. Mol. Cancer 17 (2018).
  114. Chen KY, Chan HC, Chan CM. Comparative effectiveness and safety landscape of anti-VEGF therapies for neovascular age-related macular degeneration: Insights from a systematic review and network meta-analysis. Biomed Pharmacother. 2026;196:118881. doi:10.1016/j.biopha.2025.118881.
  115. Chen KY, Chan HC, Chan CM. How do genetic polymorphisms influence the efficacy of age-related macular degeneration treatments? A systematic review and meta-analysis. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2026. doi:10.1007/s00417-025-07058-3.
  116. Chen KY, Chan HC, Lin WW, Chan CM. Mitochondrial dynamics and their role in the pathogenesis of age-related macular degeneration: A comprehensive review. Redox Biol. 2026;93:103976. doi:10.1016/j.redox.2025.103976.
  117. Chen KY, Chan HC, Chan CM. Can artificial intelligence with multimodal imaging outperform traditional methods in predicting age-related macular degeneration progression? A systematic review and exploratory meta-analysis. BMC Med Inform Decis Mak. 2025;25:321. doi:10.1186/s12911-025-03119-z.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

MedycynaNumer 233Numer 233mikroRNAdługie niekodujące RNAnabłonek barwnikowy siatkówki