Niniejsze badanie zostało zwolnione z oceny etycznej przez Komisję Etyki Medycznej Pierwszego Szpitala Ludowego w Zhaoqing (numer referencyjny B2026-08-03). W badaniu wykorzystano retrospektywnie zgromadzone, zanonimizowane dane genetyczne i transkrypcyjne na poziomie zbiorczym, w tym dane z kontrolowanym dostępem zatwierdzone przez Komitet Dostępu do Danych z EGAD00010001657 oraz zestawy danych uzyskane z GEO, eQTLGen i GTEx zgodnie z ich odpowiednimi warunkami dostępu i użytkowania. Nie rekrutowano nowych uczestników, nie pobierano biospecymentów ani nie uzyskano dostępu do możliwych do zidentyfikowania danych na poziomie uczestnika. Zgoda etyczna i świadoma zgoda na badania pierwotne zostały uzyskane przez odpowiednich twórców danych, a dane z kontrolowanym dostępem były wykorzystywane zgodnie z obowiązującą Umową o Dostępie do Danych.
Projekt badania
W niniejszym badaniu zastosowano wieloetapowy schemat w celu priorytetyzacji genów związanych z ferroptozą, które korelują z podatnością na glejak wielopostaciowy (GBM), oraz oceny ich efektów transkrypcyjnych istotnych dla przebiegu choroby (Rycina 1). W pierwszej kolejności geny związane z ferroptozą, wyselekcjonowane z bazy FerrDb V2, oceniono za pomocą randomizacji mendlowskiej (MR) dla dwóch próbek, wykorzystując dane o cis-ekspresyjnych locus cech ilościowych (cis-eQTL) oraz szerokie badanie asocjacyjne całego genomu (GWAS) dla GBM. Podstawową metodą przesiewową była MR z ważeniem odwrotnością wariancji (IVW), bayesowska randomizacja mendlowska z ważeniem (BWMR) zapewniła uzupełniającą ocenę odporności wyników, a niezależny zbiór danych eQTL posłużył do MR na etapie replikacji. Po drugie, geny potwierdzone w analizach genetycznych oceniono w trzech niezależnych kohortach transkrypomicznych (guz–kontrola), a następnie przeprowadzono metaanalizę międzykohortową. Po trzecie, dane transkrypomiczne z pojedynczych komórek pochodzących od pacjentów wykorzystano do przeprowadzenia wirtualnej perturbacji genów w komórkach złośliwych oraz identyfikacji powtarzalnych odpowiedzi transkrypcyjnych downstream. Odpowiedzi te scharakteryzowano następnie poprzez analizy wzbogacenia funkcjonalnego oraz analizy sieci wspólnych. Ogólnie rzecz biorąc, analizy genetyczne zaprojektowano w celu identyfikacji genów związanych z podatnością na GBM, natomiast analizy transkrypomiczne i analizy pojedynczych komórek służyły ocenie zgodności biologicznej i generowaniu hipotez do późniejszej walidacji eksperymentalnej.
Źródła danych
Geny związane z ferroptozą pozyskano z bazy FerrDb V2, co po harmonizacji symboli genów i usunięciu duplikatów dało 483 unikalne ludzkie geny kodujące białka14. Statystyki podsumowujące cis-ilościowych cech ekspresyjnych (cis-eQTL) krwi pełnej z konsorcjum eQTLGen wykorzystano jako zbiór danych ekspozycji w etapie odkrywania w ramach randomizacji mendlowskiej (MR), natomiast dane cis-eQTL krwi pełnej z wersji GTEx V10 posłużyły jako niezależny zbiór danych ekspozycji w etapie replikacji MR11,15. Powiązania z wynikiem GBM uzyskano ze statystyk podsumowujących badań asocjacyjnych całego genomu (GWAS) z kontrolowanym dostępem, dostępnych w European Genome-phenome Archive, obejmujących 6183 przypadki i 18 169 kontroli pochodzenia europejskiego16. Ekspresję na poziomie tkankowym genów o priorytecie genetycznym oceniono w trzech niezależnych kohortach Gene Expression Omnibus (GEO): GSE196533, obejmującej 61 próbek glejaka stopnia 4 opisanych w metadanych jako GBM oraz dziewięć nieżełudkowych próbek mózgu; GSE4290, obejmującej próbki GBM oraz nieguzowe próbki mózgu pochodzące od pacjentów z epilepsją; oraz GSE116520, zawierającej sparowane próbki rdzenia guza i obszarów okołoguzowych wraz z nieżełudkowymi kontrolami17,18,19. Dane Smart-seq2 pochodzące od pacjentów z GSE131928 wykorzystano do analizy wirtualnej perturbacji komórek złośliwych20. Charakterystyka zbiorów danych oraz ich odpowiednie role analityczne zostały podsumowane w Tabeli 1. Wszystkie analizy przeprowadzono z wykorzystaniem wcześniej zgromadzonych, zanonimizowanych zbiorów danych, dla których w oryginalnych badaniach uzyskano zgodę komisji etycznej oraz świadomą zgodę uczestników.
Wybór instrumentów genetycznych i harmonizacja danych
Instrumenty kandydujące ograniczono do cis-ekspresyjnych loci cech ilościowych (cis-eQTLs) powiązanych z ekspresją genów na poziomie istotności całego genomu (P < 5 × 10⁻8). Warianty pogrupowano (clumping) z wykorzystaniem panelu referencyjnego dla populacji europejskiej z projektu 1000 Genomes Project, stosując próg nierównowagi sprzężeń (LD) r2 < 0.001 w oknie 10 000 kb. Geny, które po grupowaniu posiadały mniej niż trzy niezależne instrumenty, zostały wykluczone z głównej analizy randomizacji mendlowskiej (MR). Ze względu na eksploracyjny cel przesiewowy, z góry określono minimum trzech instrumentów, aby zachować geny ze słabym, ale silnym wsparciem cis-eQTL, umożliwiając jednocześnie estymację IVW przy użyciu wielu instrumentów. Próg ten został uzupełniony rygorystycznym grupowaniem LD oraz filtrowaniem statystyk F; estymacje oparte na zaledwie trzech lub czterech instrumentach interpretowano z ostrożnością, a analizy wrażliwości przeprowadzano tylko wtedy, gdy było to metodologicznie zasadne. Siłę instrumentu oceniano dla każdego wariantu za pomocą statystyki F (F = β2/SE2), gdzie β i SE reprezentują odpowiednio szacunek efektu cis-eQTL i jego błąd standardowy. Warianty z F < 10 zostały wykluczone, aby zminimalizować błąd wynikający ze słabych instrumentów21,22. Zbiory danych ekspozycji i wyniku zharmonizowano poprzez wyrównanie alleli efektowych i kierunków efektu. Wykluczono warianty powielone, warianty niedostępne w zbiorze danych GBM GWAS oraz warianty z niekompatybilnym kodowaniem alleli. Ponieważ częstotliwości alleli efektowych nie były dostępne dla GBM GWAS, warianty palindromiczne o niejednoznacznej orientacji nici zostały usunięte zamiast być wnioskowane. Z tego samego powodu nie przeprowadzono formalnego testu kierunkowości Steigera.
Analizy randomizacji mendlowskiej
Związek między genetycznie przewidywaną ekspresją genów a podatnością na GBM oceniono za pomocą dwupróbkowej randomizacji mendlowskiej (MR). W etapie odkrywania uwzględniono wyłącznie geny posiadające co najmniej trzy niezależne instrumenty cis-eQTL (cis-expression quantitative trait locus), a głównym podejściem analitycznym była metoda ważonej odwrotnością wariancji (IVW). Szacunki efektów przedstawiono jako ilorazy szans (OR) z 95% przedziałami ufności (CI) na jednostkę wzrostu genetycznie przewidywanej ekspresji genów. Aby uwzględnić wielokrotne testowanie w obrębie ocenianych genów, wartości P dla metody IVW skorygowano przy użyciu procedury Benjamini-Hochberga23. Jako kandydaci eksploracyjni zachowano geny z wartością P < 0,05 oraz wskaźnikiem fałszywych odkryć Benjamini-Hochberga (BH-FDR) < 0,20. Wybrano ten stosunkowo liberalny próg FDR, aby uniknąć przedwczesnego wykluczenia potencjalnie istotnych genów na etapie odkrywania; w związku z tym status kandydata interpretowano w powiązaniu z późniejszymi analizami, a nie jako dowód potwierdzający. Następnie do kandydatów z etapu odkrywania zastosowano bayesowską ważoną randomizację mendlowską (BWMR), wykorzystując te same zharmonizowane instrumenty24. Zgodność między wynikami IVW i BWMR oceniano na podstawie istotności statystycznej oraz kierunku efektu. W przypadkach, gdy pozwalała na to liczba dostępnych instrumentów, przeprowadzono test Q Cochrana, test przecięcia MR-Egger, analizę MR-PRESSO oraz analizy leave-one-out w celu oceny heterogeniczności, plejotropii horyzontalnej, wpływowych wariantów odstających oraz wpływu poszczególnych polimorfizmów pojedynczego nukleotydu (SNP)22.
MR na etapie replikacji przeprowadzono z wykorzystaniem danych cis-eQTL z krwi pełnej z GTEx V10. W przypadku dostępności tylko jednego instrumentu zastosowano metodę stosunku Walda, natomiast w przypadku genów z dwoma lub więcej instrumentami wykorzystano metodę IVW. Replikację zdefiniowano jako P < 0,05, BH-FDR < 0,20 oraz kierunek efektu zgodny z odpowiadającą mu szacunkową wartością z etapu odkrycia. Ponieważ kilka szacunków replikacyjnych GTEx oparto na zaledwie jednym lub dwóch instrumentach, zinterpretowano je jako dowody wspierające replikację, a nie jako niezależne dowody przyczynowości.
Międzykohortowa ocena transkryptomiczna
Cztery geny wyłonione w analizach randomizacji mendlowskiej (MR) w fazie odkrywania i replikacji zostały ocenione w trzech niezależnych kohortach transkryptomicznych. W przypadku GSE196533 surowe dane liczbowe z sekwencjonowania RNA analizowano przy użyciu DESeq225. Wykluczono geny z liczbą zliczeń poniżej 10 we wszystkich próbach z wyjątkiem dwóch, natomiast cztery geny docelowe zachowano niezależnie od filtrowania ekspresji. Ekspresję różnicową oceniano pomiędzy 61 próbkami glejaka stopnia 4, oznaczonymi jako GBM w złożonych metadanych, a dziewięcioma niepotworowymi próbkami mózgu.
W przypadku zestawu GSE4290 wykluczono cztery próbki bez jednoznacznej diagnozy histopatologicznej, co pozostawiło 77 próbek GBM oraz 23 nieguzowe próbki mózgu. Przetworzone intensywności mikromacierzy poddano transformacji log2, normalizacji kwantylowej oraz analizie przy użyciu odpornych liniowych modeli empirycznego Bayesa zaimplementowanych w limma26. W sytuacjach, gdy wiele sond mapowało do tego samego genu, wybierano sondę o najwyższej średniej ekspresji we wszystkich uwzględnionych próbkach, niezależnie od istotności ekspresji różnicowej.
Zbiór GSE116520 obejmował sparowane próbki z rdzenia guza oraz obszarów peritumoranych pochodzące od 17 pacjentów, a także osiem kontroli nienowotworowych. Zdeponowane dane ekspresji, poddane transformacji logarytmicznej i normalizacji kwantylowej, zostały przeanalizowane przy użyciu pakietu limma. Korelacje wewnątrzpacjenckie między próbkami z rdzenia guza a próbkami peritumoranymi uwzględniono poprzez blokowanie na poziomie pacjenta oraz funkcję duplicateCorrelation. Porównanie rdzenia guza z grupą kontrolną stanowiło uprzednio określone zestawienie dla metaanalizy międzykohortowej, natomiast porównania peritumorane oraz trend uporządkowany kontrola–peritumoralny–rdzeń guza oceniano oddzielnie.
Specyficzne dla badania zmiany log2 fold change oraz błędy standardowe zestawiono, wykorzystując model efektów losowych z ograniczoną maksymalną wiarygodnością i wnioskowaniem Hartunga–Knappa, zaimplementowany w pakiecie metafor. Heterogeniczność międzybadawczą oceniono za pomocą statystyki Q Cochrana oraz I2. Połączone wartości P dla czterech genów docelowych skorygowano za pomocą procedury Benjamini–Hochberg. Silne wsparcie transkrypcyjne zdefiniowano jako stopień fałszywych odkryć (FDR) w metaanalizie < 0,05, istotność FDR na poziomie kohorty w co najmniej dwóch zbiorach danych oraz zgodny kierunek efektu we wszystkich trzech kohortach.
Analiza wirtualnego nokautu na poziomie pojedynczych komórek
Dane Smart-seq2 pochodzące od pacjentów z zestawu GSE131928 zostały wykorzystane do oceny czterech genów zreplikowanych w MR w komórkach złośliwych. Dorosłe komórki złośliwe zidentyfikowano zgodnie z adnotacjami zawartymi w oryginalnym badaniu, a z każdego kwalifikującego się pacjenta pobrano losowo taką samą liczbę komórek, aby zminimalizować dysproporcje w reprezentacji pacjentów. Wirtualny knockout przeprowadzono przy użyciu scTenifoldKnk i powtórzono w pięciu niezależnych seriach. Geny z wartością P < 0,05 po korekcie Benjamini–Hochberg w pojedynczej serii uznano za istotne. Geny downstream, które pojawiły się w co najmniej trzech z pięciu serii, zdefiniowano jako główny zestaw konsensusowy, natomiast do analizy czułości zastosowano bardziej rygorystyczne kryterium czterech z pięciu serii. Wyniki te zinterpretowano jako obliczeniowe przewidywania zaburzeń transkrypcyjnych, a nie jako dowód bezpośredniej regulacji molekularnej.
Analiza wzbogacenia funkcjonalnego i wspólnych sieci
Analizę wzbogacenia funkcjonalnego przeprowadzono z wykorzystaniem genów downstream specyficznych dla celu, które zostały powtarzalnie zidentyfikowane w co najmniej trzech z pięciu uruchomień wirtualnego nokautu. Wzbogacenie ścieżek Gene Ontology (GO), Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG) oraz Reactome oceniono za pomocą jednostronnych testów hipergeometrycznych, przyjmując 1 004 geny ujęte w wnioskowaniu sieci jako tło zestawu genów. Wartości P korygowano oddzielnie dla każdej bazy adnotacji zgodnie z procedurą Benjamini–Hochberga; za statystycznie istotne uznano skorygowaną wartość P < 0,05.
W celu przedstawienia relacji między czterema celami knockoutu a ich konsensusowymi genami downstream skonstruowano sieć bipartycyjną. Geny powiązane z wieloma celami zidentyfikowano na podstawie ich wspólnego stopnia, a stopień pokrycia zestawów genów specyficznych dla danych celów określono za pomocą liczby części wspólnych oraz indeksów Jaccarda. Krawędzie sieci reprezentują powiązania między powtarzalnymi perturbacjami obliczeniowymi i nie powinny być interpretowane jako dowód bezpośrednich oddziaływań molekularnych.
Analiza statystyczna i powtarzalność
O ile nie określono inaczej, testy statystyczne były dwustronne, a porównania wielokrotne kontrolowano przy użyciu procedury Benjamini–Hochberg. Kryteria istotności specyficzne dla poszczególnych analiz opisano w odpowiednich podrozdziałach. Wszystkie analizy przeprowadzono przy użyciu języków R lub Python. W procedurach randomizowanych zastosowano wcześniej określone ziarna (seeds), a kod analityczny, wersje oprogramowania oraz szczegółowe ustawienia parametrów zarchiwizowano w celu zapewnienia powtarzalności. Wszystkie zbiory danych zostały zebrane wcześniej i zanonimizowane; zgody etyczne oraz świadome zgody uczestników uzyskano w ramach oryginalnych badań.