Wyniki przewidywania celów PLB i raka prostaty
Numer PubChem CID dla PLB to 10205, nazwa IUPAC: 5-hydroksy-2-metylonaftalen-1,4-dion, SMILES: CC1=CC(=O)C2=C(C1=O)C=CC=C2O, InChIKey: VCMMXZQDRFWYSE-UHFFFAOYSA-N, InChI: InChI=1S/C11H8O3/c1-6-5-9(13)10-7(11(6)14)3-2-4-8(10)12/h2-5,12H,1H3, masa cząsteczkowa: 188,18, wzór sumaryczny: C11H8O3, numer CAS: 481-42-5. Po usunięciu duplikatów w niniejszym badaniu przewidziano 500 potencjalnych celów PLB przy użyciu baz danych SwissTarget, SEA, TargetNet, PharmMapper, CTD, TCMSP i HERB (Tabela uzupełniająca S1). Po usunięciu duplikatów, przy użyciu baz danych GeneCards, DrugBank, TCMSP, CTD i HERB, przewidziano 1199 potencjalnych celów dla raka prostaty (Tabela uzupełniająca S2).
Mechanizm działania PLB w raku prostaty przewidziany przez farmakologię sieciową
W celu analizy części wspólnej celów sporządzono diagram Venna, który wykazał 151 wspólnych celów (Rysunek 1). Następnie dla tych wspólnych genów skonstruowano sieć oddziaływań białko-białko (PPI) (Rysunek 2) i zwizualizowano ją pod kątem stopnia węzła, gdzie ciemniejszy czerwony kolor i większy rozmiar węzła oznaczały wyższy stopień (Rysunek 3). Do analizy kluczowych genów celowych (top 20) spośród genów wspólnych wykorzystano oprogramowanie Cytoscape; najwyższy stopień, wynoszący 112, wykazał gen TP53, a następnie AKT1 ze stopniem 111 (Rysunek 4).
Następnie geny wspólne przesłano do bazy danych DAVID w celu przeprowadzenia analiz wzbogacenia ontologii genów (GO) oraz szlaków KEGG. Analiza GO wykazała 4 156 procesów biologicznych (Tabela uzupełniająca S3), 292 komponenty komórkowe (Tabela uzupełniająca S4) oraz 562 funkcje molekularne (Tabela uzupełniająca S5). Zwizualizowano 10 najistotniej wzbogaconych terminów w każdej kategorii (Rysunek 5A-C). Zgodnie z analizą KEGG, istotnie wzbogacono 187 szlaków (Tabela uzupełniająca S6), a 10 z nich, o największej istotności, przedstawiono na Rysunku 5D. Obejmowały one szlaki związane z rakiem prostaty, zapaleniem wątroby typu B, proteoglikanami w nowotworach, opornością na inhibitory kinazy tyrozynowej EGFR, metabolizmem lipidów i miażdżycą, zakażeniem cytomegalowirusem ludzkim, rakiem jelita grubego, opornością endokrynną, szlakiem AGE-RAGE w powikłaniach cukrzycy oraz szlakiem sygnałowym PI3K-Akt.
Główne cele PLB w leczeniu raka prostaty
Analiza farmakologii sieciowej pozwoliła zidentyfikować 151 genów wspólnych dla PLB i raka prostaty. Na podstawie sieci PPI wyselekcjonowano 20 potencjalnych kluczowych genów docelowych o najwyższym stopniu połączenia: białko nowotworowe p53 (TP53), kinaza seryno-treoninowa 1 AKT (AKT1), białko sygnałowe i aktywator transkrypcji 3 (STAT3), receptor estrogenowy 1 (ESR1), regulator apoptozy BCL2 (BCL2), interleukina 6 (IL6), receptor naskórkowego czynnika wzrostu (EGFR), beta-katenina 1 (CTNNB1), czynnik martwicy nowotworów (TNF), homolog fosfatazy i tensyny (PTEN), kaspaza 3 (Kaspaza 3 (CASP3)), kinaza białkowa aktywowana mitogenem 3 (MAPK3), białko szoku cieplnego 90 alfa, rodzina klasa A, członek 1 (HSP90AA1), protoonkogen SRC, niereceptorowa kinaza tyrozynowa (SRC), receptor gamma aktywowany proliferatorem peroksysomów (PPARG), kinaza mTOR (MTOR), białko szoku cieplnego 90 alfa, rodzina klasy B, członek 1 (HSP90AB1)), kinaza syntazy glikogenu 3 beta (GSK3B), syntaza prostaglandynowych endoperoksydów 2 (PTGS2)), oraz metalopeptydazę macierzy 9 (MMP9). TP53 wykazywał najwyższą łączność, a następnie AKT1co sugeruje, że mogą one stanowić kluczowe cele.
Aby wybrać ostateczne cele do dokowania i symulacji dynamiki molekularnej, nadaliśmy priorytet genom kodującym białka proonkogenne z dostępnymi strukturami krystalicznymi i zdefiniowanymi kieszeniami wiążącymi, w tym AKT1, STAT3, ESR1, BCL2, IL6, EGFR, TNF, MAPK3, HSP90AA1, SRC, PPARG, MTOR, HSP90AB1, GSK3B, PTGS2 oraz MMP9. Z kolei geny supresorowe nowotworów, w tym TP53, zostały wykluczone, ponieważ nie wpisują się w strategię terapeutyczną polegającą na inhibicji celu.
W związku z tym przeprowadzono dalsze badania dokowania molekularnego. Wyniki wykazały, że PLB oddziałuje z AKT1 poprzez TRP80, SER205, LEU210, LEU264 i LYS268, z energią wiązania (BE) wynoszącą -7,764 kcal/mol27; PLB oddziałuje ze STAT3 poprzez GLU612, SER613, ARG609 i PRO639, z BE wynoszącą -5,149 kcal/mol28; PLB oddziałuje z ESR1 poprzez LEU346, PHE404, ALA350, LEU387 i LEU391, z BE wynoszącą -7,165 kcal/mol29; PLB oddziałuje z BCL2 poprzez LYS53, PHE54 i HIS50, z BE wynoszącą -5,564 kcal/mol30; PLB oddziałuje z IL6 poprzez GLN28, LYS27 i ARG24, z BE wynoszącą -4,462 kcal/mol31; PLB oddziałuje z EGFR poprzez LEU778, LEU707 i LEU789, z BE wynoszącą -6,255 kcal/mol32; PLB oddziałuje z TNF poprzez TYR59, GLY121 i LEU120, z BE wynoszącą -6,570 kcal/mol33; PLB oddziałuje z MAPK3 poprzez ALA69, VAL56, ILE48, LEU124, MET125 i LEU173, z BE wynoszącą -7,369 kcal/mol34; PLB oddziałuje z HSP90AA1 poprzez LEU107, PHE138, TYR139 i TRP162, z BE wynoszącą -8,947 kcal/mol35; PLB oddziałuje z SRC poprzez LEU276, TYR343, MET344, ALA296, LEU396 i VAL284, z BE wynoszącą -7,469 kcal/mol36; PLB oddziałuje z PPARG poprzez LEU330, ARG288, ILE326, MET329 i ALA292, z BE wynoszącą -6,538 kcal/mol37; PLB oddziałuje z MTOR poprzez ALA2073, SER2069 i HIS2024, z BE wynoszącą -4,672 kcal/mol38; PLB oddziałuje z HSP90AB1 poprzez TYR134, PHE133, TRP157 i LEU102, z BE wynoszącą -6,928 kcal/mol39; PLB oddziałuje z GSK3B poprzez VAL70, VAL135 i ALA83, z BE wynoszącą -6,799 kcal/mol40; PLB oddziałuje z PTGS2 poprzez VAL315, THR561, ARG311 i ILE558, z BE wynoszącą -5,081 kcal/mol41; PLB oddziałuje z MMP9 poprzez LEU187, ALA189, MET247, TYR248, LEU188, HIS226 i VAL223, z BE wynoszącą -7,101 kcal/mol42. Z wyjątkiem IL6 i MTOR, energie wiązania PLB z pozostałymi białkami były niższe niż -5 kcal/mol, co wskazuje, że PLB może stabilnie wiązać się z tymi białkami (Tabela 1).
Następnie przeprowadzono symulacje dynamiki molekularnej, aby dokładniej przeanalizować oddziaływania PLB z tymi białkami docelowymi oraz zweryfikować stabilność wiązania. Chociaż niektóre związki uzyskały wysokie wyniki w dokowaniu, wstępne symulacje dynamiki molekularnej wykazały wczesny dryf ligandu lub poważne zniekształcenia konformacyjne w kilku układach. W związku z tym wykluczono te niestabilne kompleksy i zachowano jedynie te, które utrzymały spójne pozy wiązania po wstępnej relaksacji, przyjmując je jako kandydatów do rozszerzonych symulacji dynamiki molekularnej. Ostatecznie zachowanymi celami były AKT1 (Supplementary File 1—Supplementary Figure S1), ESR1 (Supplementary File 1—Supplementary Figure S2), BCL2 (Supplementary File 1—Supplementary Figure S3), EGFR (Supplementary File 1—Supplementary Figure S4), TNF (Supplementary File 1—Supplementary Figure S5), MAPK3 (Supplementary File 1—Supplementary Figure S6), HSP90AA1 (Supplementary File 1—Supplementary Figure S7), SRC (Supplementary File 1—Supplementary Figure S8) oraz PPARG (Supplementary File 1—Supplementary Figure S9). Po 200 ns symulacji wartość RMSD struktur kompleksów PLB z AKT1, ESR1, BCL2, EGFR, TNF, MAPK3, HSP90AA1, SRC i PPARG stopniowo stabilizowała się w trakcie trwania symulacji (patrz Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, panel A). Jednocześnie parametry takie jak Rg (patrz Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, panel B), średni kwadrat fluktuacji (RMSF) (patrz Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, panel C), odległość między białkiem a miejscem wiązania ligandu (Dock site-ligand) (patrz Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, panel D), zakryta dostępna powierzchnia rozpuszczalnika (Buried SASA) (patrz Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, panel E) oraz superpozycja konformacji wiązania (patrz Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, panel F) stopniowo stabilizowały się w miarę postępu symulacji. Wyniki te sugerują, że kompleksy białko-ligand zachowały stabilność strukturalną przez cały czas trwania symulacji. RMSD, Rg, RMSF, odległość białko-ligand oraz Buried SASA stopniowo osiągały stabilne wartości, co wskazuje na zwarty kompleks z ograniczonymi fluktuacjami atomowymi i trwałym zajmowaniem kieszeni wiążącej przez ligand. Ponadto powierzchnia kontaktu między plumbaginem a białkiem pozostawała relatywnie stała w czasie. Oddziaływania van der Waalsa, hydrofobowe i elektrostatyczne również wykazywały stabilne profile w trakcie symulacji, co dodatkowo potwierdza ogólną stabilność kompleksów białko-plumbagin (patrz Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, panel G).
Biorąc pod uwagę energię solwatacji oraz dokonując kompleksowej oceny RMSD, Rg, odległości, zakopanego SASA i energii oddziaływań, wybrano trajektorie kompleksów w stanie stabilnym do obliczenia parametrów związanych z energią wiązania (BE) przy użyciu metody MM-PBSA (Molecular Mechanics-Poisson Boltzmann Surface Area). Aby zapewnić miary wiarygodności dla raportowanych rankingów powinowactwa, wszystkie wolne energie wiązania przedstawiono jako średnią ± SEM obliczoną z migawek wyodrębnionych z zrównoważonych trajektorii MD (Tabela 2). Wśród nich AKT1 wykazało najbardziej ujemną wolną energię wiązania, a następnie ESR1, HSP90AA1, SRC i PPARG, co sugeruje, że PLB może stabilnie wiązać się z tymi białkami docelowymi.
Ponadto w badaniu przeanalizowano reszty oddziałujące między PLB a celami (szczegóły w Tabeli 3), wykazując, że PLB wiąże się stabilnie z białkami docelowymi głównie poprzez wiązania wodorowe (patrz Plik uzupełniający 1—Rycina uzupełniająca S1-S9, panel I), oddziaływania hydrofobowe oraz siły van der Waalsa. Analiza wkładu energii wiązania aminokwasów (patrz Plik uzupełniający 1—Rycina uzupełniająca S1-S9, panel H) oraz oddziaływań białko-PLB ujawniła, że: dla AKT1 kluczowymi aminokwasami dla wiązania PLB są TRP80 i LEU264, przy czym główną rolę odgrywają siły van der Waalsa, a mniejszą oddziaływania elektrostatyczne i hydrofobowe; dla ESR1 kluczowymi aminokwasami są LEU346 i LEU525, gdzie główną rolę odgrywają siły van der Waalsa, drugorzędną oddziaływania hydrofobowe, a uzupełniającą oddziaływania elektrostatyczne; dla BCL2 kluczowymi aminokwasami są TYR108 i PHE104, przy czym główną rolę odgrywają siły van der Waalsa, a mniejszą oddziaływania elektrostatyczne i hydrofobowe; dla EGFR kluczowymi aminokwasami są MET1002 i TYR998, gdzie główną rolę odgrywają siły van der Waalsa, a mniejszą oddziaływania elektrostatyczne i hydrofobowe; dla TNF-α kluczowymi aminokwasami są TYR59 i HIE15, przy czym główną rolę odgrywają siły van der Waalsa, a mniejszą oddziaływania elektrostatyczne i hydrofobowe; dla MAPK3 kluczowymi aminokwasami są TYR53 i LEU173, gdzie główną rolę odgrywają siły van der Waalsa, a mniejszą oddziaływania elektrostatyczne i hydrofobowe; dla HSP90AA1 kluczowymi aminokwasami są PHE138 i LEU107, przy czym główną rolę odgrywają siły van der Waalsa, a mniejszą oddziaływania elektrostatyczne i hydrofobowe; dla SRC kluczowymi aminokwasami są LEU276 i LEU396, gdzie główną rolę odgrywają siły van der Waalsa, a mniejszą oddziaływania elektrostatyczne i hydrofobowe; dla PPARG kluczowymi aminokwasami są LEU330 i ILE326, przy czym główną rolę odgrywają siły van der Waalsa, a mniejszą oddziaływania elektrostatyczne i hydrofobowe.
Wszystkie struktury krystaliczne białek wykorzystane w niniejszym badaniu, z wyjątkiem BCL2, zostały współkrystalizowane ze znanymi inhibitorami. Aby dodatkowo potwierdzić wiarygodność zastosowanego podejścia do dokowania oraz potencjał wiązania PLB, zdefiniowano aktywne kieszenie wiążące na podstawie oryginalnych miejsc wiązania inhibitorów. Zarówno PLB, jak i odpowiednie natywne inhibitory zostały zadokowane do tych samych kieszeni, a następnie obliczono i porównano ich wolne energie wiązania. W przypadku każdego celu do porównania energii przyjęto jedynie te pozy dokowania natywnego inhibitora, które ściśle odtwarzały krystalograficzną konformację wiązania. Jak pokazano w Tabeli 4, wolne energie wiązania PLB otrzymane w procesie dokowania były porównywalne z energiami odpowiednich natywnych inhibitorów dla wszystkich ośmiu celów, co sugeruje, że PLB wykazuje podobne powinowactwo do wiązania w kieszeniach, co te zwalidowane związki aktywne. Wynik ten wskazuje, że PLB, jako nowa cząsteczka rusztowaniowa, może służyć jako obiecujący szablon chemiczny do opracowania nowych środków przeciwnowotworowych w raku prostaty, celujących w te onkogenne centra.
Wartość prognostyczna genów docelowych w raku prostaty
Jako reprezentatywne cele oceniliśmy znaczenie prognostyczne SRC oraz MAPK3 w raku prostaty, wykorzystując zestawy danych TCGA. W przypadku SRC analiza rozkładu gradientowego wykazała, że wyższa ekspresja SRC wiązała się ze zwiększoną śmiertelnością i istotnie krótszymi czasami przeżycia w okresie obserwacji (Rycina 6A). Analiza przeżycia Kaplana-Meiera (Rycina 6B) potwierdziła, że grupa o wysokiej ekspresji charakteryzowała się wyraźnie gorszym przeżyciem całkowitym niż grupa o niskiej ekspresji (Log-rank P = 0,0317, HR = 9,708, 95% CI: 1,22–77,234). Krzywe skumulowanego ryzyka wskazały na wyższe prawdopodobieństwo zgonu w każdym punkcie czasowym w kohorcie o wysokiej ekspresji, co identyfikuje SRC jako czynnik ryzyka złego rokowania. Zależne od czasu krzywe ROC (Rycina 6C) wykazały wartości AUC wynoszące odpowiednio 0,99, 0,878 i 0,829 dla 1, 3 i 5 lat, przy czym wszystkie przekroczyły wartość 0,7, co wskazuje na doskonałą wydajność predykcyjną zarówno dla przeżycia krótkoterminowego, jak i długoterminowego. Łącznie wyniki te sugerują, że wysoka ekspresja SRC może służyć jako niezależny marker molekularny niekorzystnego rokowania w raku prostaty.
W przypadku MAPK3 rozkład gradientu wykazał, że podwyższona ekspresja wiązała się z większym postępem nowotworu i krótszym czasem przeżycia bez progresji, co wstępnie sugeruje, że MAPK3 jest potencjalnym genem ryzyka (Rycyna 7A). Analiza czasu przeżycia bez progresji metodą Kaplana-Meiera (Rycyna 7B) wykazała, że grupa z wysoką ekspresją miała istotnie krótszy czas przeżycia bez progresji niż grupa z niską ekspresją (Log-rank P = 0,0298, HR = 1,581, 95% CI: 1,046–2,391), przy czym mediana czasu przeżycia bez progresji w grupie z wysoką ekspresją wynosiła zaledwie 5,8 roku. Krzywe skumulowanego ryzyka dodatkowo potwierdziły wyższe prawdopodobieństwo progresji w każdym punkcie czasowym. Jednakże zależne od czasu krzywe ROC (Rycyna 7C) wykazały wartości AUC wynoszące odpowiednio tylko 0,568, 0,563 i 0,574 po 1, 3 i 5 latach, co jest wartościami znacznie poniżej 0,7, wskazując, że sam MAPK3 ma ograniczoną niezależną wartość prognostyczną w ocenie ryzyka progresji raka prostaty. Podsumowując, choć wysoka ekspresja MAPK3 koreluje z gorszym czasem przeżycia bez progresji w raku prostaty, jego użyteczność jako jedynego wskaźnika prognostycznego jest ograniczona przez umiarkowaną dokładność predykcyjną.
Oświadczenie o dostępności danych
Oryginalny wkład zaprezentowany w niniejszym badaniu zawarto w artykule lub materiałach uzupełniających.

Rycina 1: Część wspólna celów plumbaginy i raka prostaty. Kolor niebieski reprezentuje liczbę celów plumbaginy, a kolor żółty reprezentuje liczbę celów raka prostaty.

Rysunek 2: Sieć oddziaływań białko-białko 151 wspólnych celów. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.

Rysunek 3: Wizualizacja 151 głównych celów w zależności od stopnia węzła w sieci oddziaływań białko-białko. Większy rozmiar i ciemniejszy kolor kół reprezentują wyższe wartości stopnia w sieci. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.

Rycina 4: Wartości stopnia dla 20 najważniejszych celów rdzeniowych. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

Rysunek 5: Analiza wzbogacenia 151 głównych celów. (A) 10 najważniejszych terminów w kategorii procesów biologicznych analizy GO, (B) 10 najważniejszych terminów w kategorii komponentów komórkowych analizy GO oraz (C) 10 najważniejszych terminów w kategorii funkcji molekularnych analizy GO. (D) 10 najważniejszych wzbogaconych ścieżek KEGG dla 151 głównych celów. Skróty: GO = Gene Ontology; KEGG = Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.

Rycina 6: Analiza prognostyczna SRC w raku prostaty (TCGA). (A) Rozkład gradientowy ekspresji SRC w zależności od statusu przeżycia i czasu obserwacji. (B) Krzywe przeżycia całkowitego Kaplan–Meier dla grup o wysokiej i niskiej ekspresji SRC (Log-rank P = 0.0317, HR = 9.708, 95% CI: 1.22–77.234). (C) Zależne od czasu krzywe ROC dla 1, 3 i 5 lat (AUC = 0.990, 0.878 oraz 0.829). Skróty: TCGA = The Cancer Genome Atlas; HR = hazard ratio; CI = przedział ufności; ROC = charakterystyka operacyjna odbiornika; AUC = pole pod krzywą. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

Rycina 7: Analiza prognostyczna MAPK3 w raku prostaty (TCGA). (A) Rozkład gradientu ekspresji MAPK3 w zależności od statusu progresji oraz czasu wolnego od progresji. (B) Krzywe przeżycia wolnego od progresji Kaplana-Meiera dla grup z wysoką i niską ekspresją MAPK3 (Log-rank P = 0.0298, HR = 1.581, 95% CI: 1.046-2.391). (C) Zależne od czasu krzywe ROC dla 1, 3 i 5 lat (AUC = 0.568, 0.563 i 0.574). Skróty: TCGA = The Cancer Genome Atlas; HR = hazard ratio (iloraz ryzyka); CI = confidence interval (przedział ufności); ROC = receiver operating characteristic (charakterystyka pracy odbiornika); AUC = area under the curve (pole pod krzywą). Kliknij tutaj, aby zobaczyć powiększoną wersję tej ryciny.
Tabela 1: Energie wiązania i oddziałujące reszty plumbaginy w dokowaniu molekularnym z kluczowymi cząsteczkami docelowymi. Przytoczone referencje odpowiadają wpisom struktur PDB (przypisaniom krystalograficznym kieszeni wiążącej ligand), a nie badaniom walidacji biologicznej, przy czym odpowiednie identyfikatory PDB ID są wyraźnie wskazane. Kliknij tutaj, aby pobrać tę tabelę.
Tabela 2: Energie wiązania i ich składniki kompleksów plumbaginy z celami w warunkach stanu stacjonarnego (kJ/mol). Dla każdego kompleksu przeprowadzono tylko jedną trajektorię 200 ns z pojedynczym, losowym ziarnem prędkości, bez powtórzeń równoległych. Całe próbkowanie konformacyjne wyodrębniono z regionu plateau po osiągnięciu równowagi, obejmującego zakres 100–200 ns każdej trajektorii. ΔEele reprezentuje oddziaływanie elektrostatyczne między małą cząsteczką a białkiem, ΔEvdw reprezentuje oddziaływanie van der Waalsa, ΔEpol to polarna energia solwatacji, która może reprezentować elektrostatyczną energię potencjalną, a ΔEnonpol to niepolarna energia solwatacji, która może reprezentować oddziaływanie hydrofobowe. ΔEMMPBSA = ΔEele + ΔEvdw + ΔEpol + ΔEnonpol. Energia wiązania Gibbsa, ΔGbind = ΔEMMPBSA + -TΔS. Prosimy kliknąć tutaj, aby pobrać tę tabelę.
Tabela 3: Schematyczny rysunek oddziałujących reszt z symulacji dynamiki molekularnej plumbaginy z białkami docelowymi. Kliknij tutaj, aby pobrać tę tabelę.
Tabela 4: Dockingowe wolne energie wiązania plumbaginy oraz natywnych inhibitorów kokrystalizowanych dla dziewięciu białek docelowych. Kliknij tutaj, aby pobrać tę tabelę.
Plik uzupełniający 1: Analizy symulacji dynamiki molekularnej kompleksów plumbaginy z AKT1, ESR1, BCL2, EGFR, TNF-α, MAPK3, HSP90AA1, SRC i PPARG. Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Tabela uzupełniająca S1: Potencjalne cele PLB przewidziane przez bazy danych SwissTarget, SEA, TargetNet, PharmMapper, CTD, TCMSP i HERB.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Tabela uzupełniająca S2: Potencjalne cele raka prostaty przewidziane przez bazy danych GeneCards, DrugBank, TCMSP, CTD i HERB.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Tabela uzupełniająca S3: Procesy biologiczne GO wzbogacone dla 151 wspólnych celów PLB i raka prostaty.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Tabela uzupełniająca S4: Komponenty komórkowe GO wzbogacone dla 151 wspólnych celów PLB i raka prostaty.Prosimy kliknąć tutaj, aby pobrać ten plik.
Tabela uzupełniająca S5: Funkcje molekularne GO wzbogacone dla 151 wspólnych celów PLB i raka prostaty.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Tabela uzupełniająca S6: Szlaki KEGG istotnie wzbogacone dla 151 wspólnych celów PLB i raka prostaty.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.