Analiza ekspresji w publicznych zbiorach danych i sparowanych tkankach klinicznych
Wzorzec ekspresji miR-192 ponownie oceniono, wykorzystując dane miRNA-seq z TCGA-COAD i TCGA-READ pochodzące z GDC (Rysunek 1). W tych plikach wpis na poziomie bazy danych został opisany jako hsa-mir-192, a nie bezpośrednio jako dojrzały gatunek hsa-miR-192-5p; w związku z tym wynik z tej publicznej bazy danych zinterpretowano jako sygnał TCGA miR-192. W połączonej kohorcie COADREAD przeanalizowano 616 guzów pierwotnych i 11 normalnych próbek tkanek stałych. Próbki nowotworowe wykazały wyższą ekspresję miR-192 niż próbki normalne (mediana 16,05 vs 13,46 log2[RPM + 1], test Mann-Whitneya p = 9,96 x 10-8). Ten sam kierunek wyższej ekspresji w guzach zaobserwowano w samym COAD (455 guzów i 8 próbek normalnych, p = 9,89 x 10-8) oraz w samym READ (161 guzów i 3 próbki normalne, p = 1,94 x 10-5). Analiza par w TCGA również wykazała wyższą ekspresję w guzach w 11 dopasowanych przypadkach (mediana różnicy guz-norma = 3,13 log2[RPM + 1], test Wilcoxona p = 0,0029). Wyniki te pozostały niezgodne z lokalnym wynikiem par qRT-PCR, który wskazywał na obniżoną ekspresję dojrzałego miR-192-5p w tkankach CRC (Rysunek 2).
Wydajność diagnostyczna i powiązania kliniczno-patologiczne
Analizę ROC w oparciu o dane TCGA powtórzono, stosując opisaną powyżej definicję rozróżnienia między próbkami guza a próbkami prawidłowymi (Rysunek 3). Wartość AUC wyniosła 0,968 dla połączonej kohorty COADREAD, 0,947 dla samego COAD i 0,994 dla samego READ. Dodatkowe zrównoważone ponowne próbkowanie dało mediany AUC wynoszące 0,983 dla COADREAD, 0,984 dla COAD i 1,000 dla READ; jednak 95% przedziały ufności były szerokie dla COADREAD (0,868–1,000) oraz COAD (0,781–1,000), a grupa READ obejmowała tylko trzy próbki prawidłowe. Analiza typu leave-one-out dla próbek prawidłowych wykazała również, że szacunek ROC był wrażliwy na małą liczebność grupy prawidłowej. W związku z tym wynik ROC zachowano jedynie jako dowód eksploracyjny separacji guza od tkanek prawidłowych, a nie jako wystarczający dowód dla klinicznego biomarkera diagnostycznego. Analiza powiązań kliniczno-patologicznych oparta na medianie ekspresji miR-192 w TCGA wykazała istotne korelacje z etapem N (p = 0,019) i wiekiem (p = 0,004), podczas gdy etap T (p = 0,110) i etap M (p = 0,932) nie były istotne (Tabela 1).
Analiza przeżywalności
Analiza przeżycia całkowitego nie wykazała istotnego związku prognostycznego dla ekspresji miR-192 z bazy TCGA w CRC (Rycina 3). W połączonej kohorcie COADREAD porównanie metodą Kaplana-Meiera z podziałem medianowym nie było istotne (log-rank p = 0.857), a jednowymiarowa regresja Coxa również nie wykazała istotnego związku (HR = 0.934 na jednostkę ekspresji log2, p = 0.374). Taki sam wniosek zaobserwowano w przypadku COAD (log-rank p = 0.889; Cox p = 0.493) oraz READ (log-rank p = 0.807; Cox p = 0.716). Zatem dane nie potwierdzają tezy o silnym potencjale miR-192 jako biomarkera prognostycznego w CRC.
Kandydackie geny docelowe i wzbogacenie funkcjonalne
Analizę potencjalnych genów docelowych przeprowadzono poprzez integrację przewidywań miRWalk z genami o zróżnicowanej ekspresji z zestawów danych GEO GSE89076 i GSE156355. Przesiew ten pozwolił na zidentyfikowanie 93 genów kandydackich do dalszych analiz sieciowych i analiz wzbogaceń (Rysunek 4). Analiza oddziaływań białkowych wykazała, że KIF20A, TPX2, CDCA5, CCNB1, CDK1, PLP1, NRXN1, GRIK3 i KIF5C stanowią eksploracyjne geny hub (Rysunek 5). Analiza czułości RNA-seq z TCGA wykazała, że poziom KIF20A, TPX2, CDCA5, CCNB1 i CDK1 był wyższy w tkance nowotworowej niż w tkance prawidłowej, natomiast poziom PLP1, NRXN1, GRIK3 i KIF5C był niższy w tkance nowotworowej. Analiza korelacji z ekspresją miR-192 w TCGA dała mieszane wyniki: CDCA5, CCNB1 i CDK1 wykazały korelacje dodatnie, natomiast PLP1, NRXN1 i KIF5C wykazały korelacje ujemne. Analiza wzbogaceń wyróżniła reprezentatywne terminy związane z metabolizmem leków przez cytochrom P450, metabolizmem ksenobiotyków przez cytochrom P450, metabolizmem retinolu, terminami związanymi z synapsami glutaminergicznymi oraz organizacją presynaptyczną (Rysunek 6). Wyniki te potwierdzają biologiczną istotność sieci genów hub, lecz nie ustanawiają bezpośredniego targetowania przez miR-192-5p.
Test migracji komórek
Komórki HT29 poddano transfekcji mimetykami miR-192, aby ocenić funkcjonalne skutki nadekspresji miR-192. Mikroskopia fluorescencyjna potwierdziła pomyślną transfekcję w grupach z mimetykiem miR-192-5p oraz w grupach z transfekcją kontrolną negatywną (Rysunek 7). W teście gojenia ran (wound-healing assay) szybkość migracji komórek HT29 po transfekcji miR-192 była niższa niż w przypadku nietransfekowanych komórek HT29 oraz komórek z transfekcją kontrolną negatywną zarówno po 24 h, jak i 48 h (Rysunek 8). Po 24 h szybkość migracji wynosiła 9,75 +/- 2,43% w grupie z transfekcją miR-192 w porównaniu z 15,69 +/- 3,47% w grupie nietransfekowanej i 15,45 +/- 3,92% w grupie kontrolnej negatywnej (P = 0,010). Po 48 h szybkość migracji wynosiła 20,04 +/- 2,54% w grupie z transfekcją miR-192 w porównaniu z odpowiednio 26,84 +/- 7,65% i 27,98 +/- 6,78% w dwóch grupach kontrolnych (P = 0,021). Wyniki te sugerują, że nadekspresja miR-192 hamuje migrację komórek HT29 in vitro.
Analiza korelacji sygnatury immunologicznej
Związek między ekspresją miR-192 w TCGA a sygnaturami związanymi z odpornością został ponownie oceniony z wykorzystaniem danych RNA-seq z guzów pierwotnych (Ryc. 9). W analizie korelacji wyników sygnatur uwzględniono łącznie 425 próbek guzów z dopasowanymi danymi miRNA i RNA-seq. Ekspresja miR-192 wykazała słabe korelacje ujemne z wieloma sygnaturami komórek odpornościowych, w tym z komórkami Tfh (rho = -0.205, p = 2.15e-05), aktywowanymi komórkami dendrytycznymi (rho = -0.186, p = 0.00011), komórkami Treg (rho = -0.185, p = 0.00013), plazmacytoidalnymi komórkami dendrytycznymi (rho = -0.169, p = 0.00046), makrofagami (rho = -0.149, p = 0.0020), komórkami Tcm (rho = -0.136, p = 0.0050), komórkami NK CD56bright (rho = -0.132, p = 0.0065) oraz komórkami Tem (rho = -0.129, p = 0.0078). Zaobserwowano słabe korelacje dodatnie dla sygnatur eozynofilów (rho = 0.139, p = 0.0040) i komórek Th17 (rho = 0.121, p = 0.0129). Zatem powiązania immunologiczne miR-192 w CRC wydają się heterogeniczne i nie powinny być opisywane jako jednolicie dodatnie w obrębie nacieków odpornościowych.
Dostępność danych
Publiczne zbiory danych analizowane w niniejszym badaniu są dostępne w portalu GDC/TCGA oraz w bazie danych Gene Expression Omnibus (GEO) pod numerami dostępu GSE89076 oraz GSE156355. Analizy komputerowe (dry-lab) oraz reanalizy przeprowadzone w ramach tego badania zostały przedstawione w Tabeli uzupełniającej 1. Podstawowe dane eksperymentalne wspierające analizy qRT-PCR i gojenia ran, w tym surowe wartości Ct z qRT-PCR, pomiary szerokości rany, oryginalne obrazy mikroskopowe oraz powiązane dane eksperymentalne, znajdują się w Folderze uzupełniającym 1.

Rycina 1: Przegląd ekspresji miR-192 w różnych typach nowotworów w bazie TCGA. Oś X przedstawia skróty nazw nowotworów, a oś Y względną ekspresję miR-192. Kolor niebieski oznacza tkankę prawidłową, a czerwony tkankę nowotworową. Istotność statystyczna została określona następująco: * = p < 0,05, ** = p < 0,01, *** = p < 0,001; NS = brak istotności. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

Rysunek 2: Ekspresja miR-192/miR-192-5p w zbiorach danych CRC i w parach tkanek. (A) Analiza miRNA-seq z TCGA/GDC wykazująca wyższy sygnał hsa-mir-192 na poziomie bazy danych w próbkach guzów CRC niż w próbkach prawidłowych. (B) Analiza qRT-PCR sparowanych lokalnych próbek tkanek wykazująca niższą ekspresję dojrzałego miR-192-5p w tkankach CRC niż w przyległych tkankach niezwyrodziałych. Prosimy kliknąć tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.

Rycina 3: Eksploracyjne analizy diagnostyczne i przeżywalności w oparciu o ekspresję hsa-mir-192 w TCGA. (A–C) Krzywe przeżywalności Kaplana-Meiera. Analiza przeżywalności nie wykazała istotnego związku prognostycznego. (D) Krzywa ROC dla rozróżnienia tkanki nowotworowej od prawidłowej w kohorcie TCGA. Wartość AUC należy interpretować ostrożnie ze względu na niewielką liczbę próbek prawidłowych. Proszę kliknąć tutaj, aby wyświetlić większą wersję tej ryciny.

Rycina 4: Przesiewanie potencjalnych genów docelowych oraz analiza oddziaływań białkowych. (A) Diagram Venna przedstawiający nakładanie się wyników przewidywania celów miRNA oraz genów o różnej ekspresji z zestawów GSE89076 i GSE156355. (B) Sieć oddziaływań białko-białko dla 93 potencjalnych genów. Węzły reprezentują geny, a krawędzie reprezentują przewidywane lub opracowane powiązania genetyczne. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

Rycina 5: Przesiewowy dobór genów centralnych (hub-genes) z sieci potencjalnych celów. (A,B) Moduły sieci zidentyfikowane podczas przesiewu modułowego. (C) Ranking genów centralnych oparty na łączności sieci. (D) Potencjalne cele centralne wyselekcjonowane po zintegrowaniu przesiewu modułowego i opartego na stopniu węzła. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

Rysunek 6: Wybrane terminy wzbogacenia GO i KEGG dla genów kandydackich oraz istotnych modułów sieci. Wykres bąbelkowy przedstawia reprezentatywne wzbogacone funkcje biologiczne i szlaki. Wyniki wzbogacenia mają charakter eksploracyjny i wymagają walidacji eksperymentalnej. Aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku, kliknij tutaj.

Rycina 7: Obrazy transfekcji komórek HT29. (A) Reprezentatywne komórki HT29. (B) Obraz fluorescencyjny komórek HT29 przetransfekowanych mimetykiem miR-192-5p. (C) Obraz fluorescencyjny komórek HT29 przetransfekowanych negatywną kontrolą con238. Pasek skali = 100 µm. Kliknij tutaj, aby zobaczyć powiększoną wersję tej ryciny.

Rycina 8: Test gojenia ran w komórkach HT29. (A) Reprezentatywne obrazy zadrapań w 0 h, 24 h i 48 h w nietransfekowanych komórkach HT29, komórkach HT29 transfekowanych mimikiem miR-192-5p oraz komórkach HT29 transfekowanych con238. (B) Ilościowe określenie tempa gojenia ran w 24 h i 48 h, przedstawione w procentach. Pasek skali = 100 µm. Kliknij tutaj, aby zobaczyć powiększoną wersję tej ryciny.

Rycina 9: Korelacja między ekspresją miR-192 z bazy TCGA a wynikami sygnatur związanych z odpornością w próbkach guza CRC. Analiza wykazała heterogeniczne powiązania immunologiczne, z kilkoma słabymi korelacjami negatywnymi oraz, głównie w przypadku sygnatur eozynofili i komórek Th17, korelacjami pozytywnymi. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.
| Charakterystyka | Niska ekspresja TCGA miR-192 | Wysoka ekspresja TCGA miR-192 | wartość p | Metoda |
| n | 308 | 308 | | |
| Stopień T, n (%) | 0.11 | Test chi-kwadrat |
| T1 | 9 (1.5%) | 11 (1.8%) | | |
| T2 | 44 (7.2%) | 59 (9.6%) | | |
| T3 | 209 (34.1%) | 211 (34.4%) | | |
| T4 | 43 (7%) | 27 (4.4%) | | |
| Stopień N, n (%) | 0.019 | Test chi-kwadrat |
| N0 | 156 (25.5%) | 190 (31%) | | |
| N1 | 88 (14.4%) | 63 (10.3%) | | |
| N2 | 61 (10%) | 54 (8.8%) | | |
| Stopień M, n (%) | 0.932 | Test chi-kwadrat |
| M0 | 214 (39.9%) | 234 (43.7%) | | |
| M1 | 41 (7.6%) | 47 (8.8%) | | |
| Wiek, mediana (IQR) | 66 (56, 75) | 69 (60, 77) | 0.004 | Test Wilcoxona |
Tabela 1: Związek między grupami ekspresji miR-192 w TCGA a charakterystyką kliniczno-patologiczną w CRC. Grupy wysokiej i niskiej ekspresji zdefiniowano na podstawie mediany poziomu ekspresji miR-192 w TCGA. W tabeli podsumowującej stopień N oraz wiek były istotne, natomiast stopień T i stopień M nie były istotne.
Tabela uzupełniająca 1: Wyniki reanalizy bioinformatycznej przeprowadzonej na potrzeby niniejszego badania. Arkusz zawiera porównania ekspresji TCGA/GDC, zrównoważone analizy czułości ROC, analizy z pominięciem jednej próbki normalnej (leave-one-normal-out), analizy powiązań kliniczno-patologicznych, analizy przeżywalności, podsumowania ekspresji i korelacji genów hubowych oraz wyniki korelacji sygnatur immunologicznych.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Folder uzupełniający 1: Surowe dane eksperymentalne wspierające eksperymenty qRT-PCR, transfekcji komórek i gojenia ran. Pliki te zawierają oryginalne wartości Ct dla qRT-PCR, dane z cytometrii przepływowej/transfekcji, pomiary szerokości rany oraz reprezentatywne obrazy mikroskopowe wykorzystane w analizach przedstawionych w manuskrypcie.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.