Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Protokoły efektywnego hodowania i analizy funkcjonalnej endoparazitoida Asobara japonica oraz jego żywiciela Drosophila melanogaster

177 wyświetleń

DOI:

10.3791/72035

24 lipca 2026

W tym artykule

Podsumowanie

Celem tego protokołu jest ułatwienie analizy funkcjonalnej interakcji parazytoid-gospodarz w Asobara japonica i Drosophila melanogaster poprzez zoptymalizowane metody chowu, pojedynczy test infekcji jajorodności i wyciszenia genu z wykorzystaniem RNAi.

Streszczenie

Pasożytnictwo to interakcja biologiczna, w której jeden organizm wykorzystuje ciało lub zasoby innego (żywiciela), powodując znaczne uszkodzenia lub śmierć żywiciela. Wśród pasożytniczych zwierząt, błonkoskrzydłe pasożytoidy są jednym z najbogatszych gatunkowo kladów, stanowiąc prawie 20% wszystkich gatunków owadów. W szczególności, błonkoskrzydłe pasożytoidy endoparazytyczne składają jaja bezpośrednio w ciałach żywicieli i uwalniają zróżnicowaną gamę czynników jadu w celu manipulacji rozwojem, odpornością i fizjologią żywiciela. W odpowiedzi na atak osy, żywiciele próbują eliminować jaja pasożytoidów poprzez wrodzone mechanizmy odpornościowe. Jednak mechanizmy molekularne i komórkowe, za pomocą których poszczególne składniki jadu modulują biologię żywiciela i sprzyjają pomyślnemu pasożytnictwu, pozostają słabo poznane. Przedstawiamy tu standaryzowany protokół laboratoryjny do hodowli pasożytoidowej osy Asobara japonica oraz jej żywiciela Drosophila melanogaster. Dostępne są zarówno szczepy partenogenetyczne, jak i płciowe A. japonica, a szczep partenogenetyczny wykazuje wysoką skuteczność pasożytnictwa, umożliwiając stabilne utrzymanie szczepów laboratoryjnych do analizy genomu i badań pasożytnictwa. Dla analizy funkcjonalnej genów jadu zoptymalizowano pojedynczy test infekcji składaniem jaj oraz metodę wyciszenia genu opartą na podwójnie łańcuchowej RNK. Razem, te protokoły zapewniają praktyczną ramę eksperymentalną do analizy mechanizmów molekularnych leżących u podstaw interakcji pasożyt-żywiciel i ułatwią przyszłe badania w dziedzinie biologii rozwoju, immunologii i fizjologii.

Wprowadzenie

Pasożytnictwo to sposób życia, w którym jeden organizm wykorzystuje zasoby pokarmowe innego i jest szeroko rozpowszechnione wśród różnych taksonów. Szacuje się, że aż do połowy wszystkich znanych organizmów wykazuje pasożytnictwo w swoim cyklu życia1. Wśród pasożytów, błonkoskrzydłe pasożytoidy są szczególnie zróżnicowaną grupą, stanowiącą około 20% wszystkich owadów2. Eksploatują one szeroki zakres gatunków stawonogów, takich jak owady, pająki i roztocza, i wykazują niezwykłą różnorodność w swoich historiach życia i strategiach pasożytniczych3. Te cechy sprawiają, że błonkoskrzydłe pasożytoidy są....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Schematyczne przedstawienie synchronizowanej metody hodowli D. melanogaster i A. japonica przedstawiono na Rysunku 1.

1. Hodowla gospodarza muszki owocowej Drosophila melanogaster w laboratorium

  1. Utrzymuj wszystkie zwierzęta eksperymentalne w temperaturze 25 °C i 50-60% wilgotności względnej w cyklu 12:12 h światło/ciemność. Użyj szczepu typu dzikiego Oregon-R (OR) jako gospodarza dla A. japonica (Rysunek 2A).
  2. Przenieś dorosłe muchy do nowego pojemnika z pokarmem zawierającego standardowy agar z mąki kukurydz....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Szczepy bezpłciowe i płciowe Asobara japonica
A. japonica występuje powszechnie w całej Japonii. Szczepy partenogenetyczne telitokowe dominują na głównych wyspach, natomiast szczepy płciowe arrenotokowe występują na wyspach subtropikalnych, w tym na wyspach Amami-Oshima i Iriomote-jima8,12. W szczepach płciowych samce wykluwają się o kilka dni wcześniej niż samice, przez co czas przenoszenia osobników dorosłych różni się pom.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

W niniejszym badaniu stworzyliśmy wszechstronny eksperymentalny system do badania interakcji pasożytoid-gospodarz na poziomie molekularnym. Poprzez optymalizację warunków chowu, pojedynczego testu infekcji jajorodowej oraz protokołu RNAi, zapewniliśmy solidny system do funkcjonalnych badań czynników pochodzących od pasożytoidów. Platforma ta ułatwi przyszłe badania mające na celu poznanie mechanizmów, za pomocą których osy pasożytoidy manipulują rozwojem gospodarza, a także może przyczynić się do rozwoju biologicznych st.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie mamy żadnego konfliktu interesów do ujawnienia.

Podziękowania

Autorzy chcą podziękować Kanata Tachibana, Shion Kudo, Toshiya Makino, Shunta Yorimoto, Shuji Shigenobu, Akiko Kawamura, Ari Fujinoki i Masako Iida za pomoc techniczną. Dziękujemy również wszystkim pozostałym członkom naszego laboratorium.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
50 mL tubeGreiner Bio-One210261Ocena zakażenia
1 mL syringeTERUMOSS-01TWstrzyknięcie dsRNA
AgarDaisin, Ltd.P-700Hodowla
Asnol Petri Dish φ40×13.5mmAs One Corporation1-8549-01Ocena zakażenia
Asnol Petri Dish φ55×17mmAs One Corporation1-8549-02Wstrzyknięcie dsRNA
Blue dye (Erioglaucine disodium salt)Sigma-Aldrich Co. Llc.861146-25GWstrzyknięcie dsRNA
Butyl p-HydroxybenzoateNacalai Tesque, Inc.06327-15Hodowla
CO2 pressure regulatorYAMATOSANGYOYR-507F-2Ocena zakażenia
Confocal laser scanning microscopeZeissLSM700Analiza obrazów
Corn mealSunny Maize Co., Ltd.No.4MHodowla
DAPIThermo Fisher Scientific Inc.PI62247Barwienie jąder, 1:10000
Deionized waterMillipore Inc.ZLXEV030WWOcena zakażenia
Dual-Stage Glass Micropipette PullerNarishigePC-10Wstrzyknięcie dsRNA
FijiNAhttps://fiji.scAnaliza obrazów
Filter paperAdvantecITEM 526Hodowla
Fly food vialChiyoda Science Co., Ltd.KFB-3MHodowla
Fly food vial plugChiyoda Science Co., Ltd.AS-275Hodowla
ForcepsDumont Biologie11252-20Sekcja
Freezer, -20 °CNihon FreezerGS-3120HCPrzechowywanie próbek
Freezer, -80 °CNihon FreezerCLN-52UD2Przechowywanie próbek
Glass slidesMatsunami Glass Ind., LtdS7213Ocena zakażenia
GlucoseShowa Sangyo Co., Ltd. Not availavleHodowla
KOD Plus NeoToyoboKOD-401Synteza dsRNA
IncubatorPanasonicMIR-254-PJHodowla
Ligation high Ver.2ToyoboLGK-201Synteza dsRNA
Micropipette GrinderNarishigeEG-401Wstrzyknięcie dsRNA
Mineral oilNacalai Tesque, Inc.23306-84Wstrzyknięcie dsRNA
Nanoject IIIDrummond Scientific Company3-000-207Wstrzyknięcie dsRNA
Nanoject Glass CapillariesDrummond Scientific Company3-000-203-G/XWstrzyknięcie dsRNA
pBluescript KS (+) plasmidNot availavleNot availavleSynteza dsRNA
pBluescript SK (-) plasmidNot availavleNot availavleSynteza dsRNA
PrimeScript reverse TranscriptaseTakara2680ASynteza dsRNA
Propionic acidNacalai Tesque, Inc.29018-55Hodowla
PROWIPEDaio Paper Corporation2-2624-02Ocena zakażenia, wstrzyknięcie dsRNA.
ReverTra Ace qPCR RT Master Mix with gDNA RemoverToyoboFSQ-301qRT-PCR
RNAiso Plus reagentTakara9108qRT-PCR
Small vial (Test tube 12 mL)SarstedtREF 58.487Ocena zakażenia
Small vial plugChiyoda Science Co., ltd.QD-S4Ocena zakażenia
SpatulaAs One Corporation6-522-02Hodowla
Square petri dishEiken Chemical Co., Ltd.64-2192-55, AW2000Wstrzyknięcie dsRNA
StereomicroscopeLeica Microsystemslvesta3 (C-Mount)Ocena zakażenia
StereomicroscopeNikon Solutions Co., Ltd.SMZ1000Wstrzyknięcie dsRNA
T7 RiboMAX Express RNAi SystemPromegaP1700Synteza dsRNA
Thermal Cycler Dice Real Time SystemTakaraTP815qRT-PCR
Thermal Cycler GeneAtlasAstelG02Synteza dsRNA, qRT-PCR
THUNDERBIRD SYBR qPCR MixToyoboQPS-201qRT-PCR
TissueLyser IIQiagenNot availavleqRT-PCR
Vitamin C, L-Ascorbic AcidNacalai Tesque, Inc.03420-65Hodowla
Welch's grape 100 juiceAsahi Soft drinks Co., Ltd.32390Ocena zakażenia
YeastAsahi Group Foods, Ltd.HB-P02Hodowla

Bibliografia

  1. Hasik AZ, et al. Parasitism as a driver of host diversification. Nat Rev Biodivers. 2025;1(6):401-410.
  2. Pennacchio F, Strand MR. Evolution of developmental strategies in parasitic Hymenoptera. Annu Rev Entomol. 2006;51:233-258.
  3. Quicke DL. Parasitic Wasps. 1997:221-255.
  4. Moreau S, Asgari S. Venom proteins from parasitoid wasps and their biological functions. Toxins. 2015;7(7):2385-2412.
  5. Huang J, Chen XX, Zhan S. Molecular mechanisms underlying parasitoid-derived host manipulation strategies. Annu Rev Entomol. 2026;71:51-68.
  6. Belokobylskij SA. Key to the Insects of Russian Far East. Tribe Alysiini. In: Ler PA, ed. 1998;4(3):163-....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Biologia rozwojowaNumer 233Numer 233Warto pustaNumerosa paso ytniczapaso ytnictwointerferencja RNAwarunki hodowlitest infekcji z pojedynczym sk adaniem jaj