Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł badawczy

Analiza kliniczna kohorty miR-215-5p jako biomarkera diagnostycznego w artrozie i jego mechanizmu poprzez EREG w modelu chondrocytów wywołanym przez IL-1β

94 wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/72124

⸱

31 lipca 2026

 ,  ,  , 

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

Niniejsze badanie ma na celu ocenić surowicową miR-215-5p jako biomarker diagnostyczny w artrozie i zbadać jej mechanizm regulacji w chrzęstkach indukowanych przez IL-1β.

Streszczenie

Choroba zwyrodnieniowa stawów (OA) jest chorobą zwyrodnieniową stawów charakteryzującą się degradacją chrząstki stawowej i zapalnym naciekiem błony maziowej. Celem niniejszego badania była ocena surowicowego miR-215-5p jako biomarkera diagnostycznego OA oraz zbadanie jego mechanizmu regulacji w chondrocytach indukowanych IL-1β. Do badania zapisano 110 pacjentów z OA i 105 zdrowych kontroli. Ekspresję surowicowego miR-215-5p i EREG wyznaczono za pomocą ilościowej odwrotnej transkrypcji reakcji łańcuchowej polimerazy. Wartość diagnostyczną miR-215-5p dla OA oceniano za pomocą krzywej charakterystyki operacyjnej odbiornika. Stymulacja chondrocytów C28/I2 za pomocą IL-1β służyła do zbudowania modelu komórkowego OA. Wyznaczano żywotność komórek, ich zdolność migracyjną i poziomy cytokin zapalnych za pomocą zestawu do liczenia komórek Kit-8, testu Transwell oraz enzymowego testu immunopochłaniania (ELISA). Związek międzi miR-215-5p a EREG potwierdzono za pomocą testu reporterowego z dwoma luciferase oraz testu immunoprecypitacyjnego RNA (RIP). U pacjentów z OA stwierdzono nadekspresję surowicowego miR-215-5p i podekspresję EREG. MiR-215-5p wykazywał dobrą wydajność diagnostyczną w OA (powierzchnia pod krzywą, AUC = 0,883). W komórkach C28/I2 po obróbce interleukiną-1β (IL-1β) zahamowanie miR-215-5p zwiększyło żywotność komórek i ich zdolność migracyjną oraz zmniejszyło poziomy IL-1β, IL-6 i czynnika nekrozującego guzów-α (TNF-α). EREG potwierdzono jako bezpośrednie cele miR-215-5p. Knockdown EREG częściowo odwrócił efekt promocyjny obniżenia ekspresji miR-215-5p na żywotność i zdolność migracyjną komórek C28/I2 po obróbce IL-1β i zmniejszył jego hamujący wpływ na czynniki zapalne. MiR-215-5p przyczynia się do patogenezy OA poprzez regulację EREG i stanowi obiecujący biomarker diagnostyczny oraz potencjalny cel terapeutyczny w OA.

Wprowadzenie

Choroba zwyrodnieniowa stawów (OA) jest chorobą zwyrodnieniową stawów, a jej patologia charakteryzuje się zwyrodnieniem chrząstki wraz z zapaleniem błony maziowej1,2. Na skalę globalną, częstość występowania OA pozostaje wysoka, a odpowiednie badania wykazały trend wzrostu częstości z roku na rok3,4. Ustalono, że czynniki takie jak otyłość, starzenie się, podatność genetyczna i gęstość kości są związane z rozwojem OA5. Pod względem objawów klinicznych, pacjenci z OA często wykazują ból stawów, obrzęk, ograniczony ruch i sztywność, co poważnie obniża jakość życia pacjentów6,7. Warto zauważyć, że istnieją różne fenotypy OA, a te fenotypy trafnie odzwierciedlają różnorodność patogenezy choroby8. Obecnie leczenie OA nadal koncentruje się na poprawie objawów, a powszechnie stosowanymi lekami klinicznymi są leki przeciwbólowe i niesteroidowe leki przeciwzapalne, które są w stanie tylko złagodzić ból i nie mogą skutecznie odwrócić postępu choroby9. Dlatego też, poszukiwanie nowych biomarkerów OA stało się pilną potrzebą dla obecnych badań.

MikroRNA (miRNA) to kategoria krótkich cząsteczkowych cząstek RNA, które nie biorą udziału w kodowaniu białek10. Służą jako ważne cząsteczki regulacyjne genów w organizmach wielokomórkowych i mogą wpływać na ekspresję licznych kodujących białka genów11. Liczne badania potwierdziły, że miRNA wywierają znaczący wpływ na rozwój OA12. Poprzednie badanie wykazało, że miR-215-5p był wyrażany w przerostowej plazmie i zmniejszał migrację i zdolność inwazyjną trofoblastów poprzez regulację ekspresji CDC613. Przewlekła ekspresja miR-215-5p zmniejszyła uszkodzenie zapalne w komórkach H9c2 w sepsie14. miR-215-5p mogło wywierać efekt ochronny w patogenezie osteoporozy poprzez hamowanie ekspresji XIAP i promowanie różnicowania hBMSCs15. Warto zauważyć, że miR-215-5p zostało znalezione jako ekspresja zwiększona, gdy przeanalizowano profile ekspresji miRNA tkanek błony maziowej pacjentów z OA16. Jednakże, ekspresja miR-215-5p w surowicy i jego potencjalna wartość jako biomarker diagnostyczny OA nie zostały jeszcze zbadane. Rola miR-215-5p w chondrocjach OA, zwłaszcza jego wpływ na żywotność komórek, migrację i reakcję zapalną, pozostaje niejasna. Żadne badania nie poinformowały, czy miR-215-5p wywiera swoją funkcję regulacyjną w OA poprzez określone dolne kanały. Uzupełnienie tych luk dostarczy nowych wglądów w mechanizmy molekularne OA i identyfikuje nowe kandydatów na cele terapeutyczne.

EREG jest członkiem rodziny czynników wzrostu naskórka i zostało udowodnione, że jest zaangażowane w naprawę tkanek i reakcje zapalne17,18. Badanie Chen i wsp. wykazało, że ekspresja EREG była znacznie zmniejszona w chrząstce i tkankach błony maziowej pacjentów z OA w porównaniu z grupą kontrolną19. Jednakże, czy EREG pełni rolę dolnego kanału miR-215-5p w chondrocjach OA i jaka jest rola tej osi regulacyjnej w patogenezie OA, pozostają niejasne obecnie.

Na podstawie powyższego tła, postulujemy, że ekspresja miR-215-5p w surowicy jest zwiększona u pacjentów z OA i prowadzi do dysfunkcji chondrocytów zapalnych poprzez bezpośrednie kierowanie na EREG, podczas gdy hamowanie miR-215-5p łagodzi uszkodzenie chondrocytów wywołane interleukiną-1β (IL-1β). W niniejszym badaniu zastosowano jednolite, mierzalne punkty końcowe i kryteria oceny dla walidacji klinicznej i komórkowej: klinicznie, 110 pacjentów z OA i 105 zdrowych kontroli zostało włączonych; poziomy miR-215-5p i EREG w surowicy zostały zmierzone za pomocą qRT-PCR, a krzywe ROC zostały zastosowane do oceny wydajności diagnostycznej (ważne, jeśli AUC ≥ 0,7, P < 0,05). Korelacje zostały analizowane za pomocą testów Chi-kwadrat pomiędzy miR-215-5p a cechami klinicznymi OA, a wielowymiarowa regresja logistyczna zidentyfikowała niezależne czynniki ryzyka OA (skorygowane P < 0,05). In vitro, chondrocyty C28/I2 były traktowane z 10 ng/mL IL-1β przez 24 h, aby ustanowić model OA, następnie transfekcją z inhibitorem miR-215-5p/mimic i si-EREG. Testy CCK-8, Transwell i ELISA zostały zastosowane do oceny żywotności komórek, migracji i poziomów cytokin zapalnych. Kryteria eksperymentu ratunkowego: inhibitor miR-215-5p przywrócił żywotność i migrację chondrocytów (P < 0,05), a wyciszenie EREG częściowo zniosło ten efekt ochronny (P < 0,05). Bioinformatyczne przewidywania TargetScan, badania reporterowe dual-luciferase i badania RIP dodatkowo potwierdziły ich bezpośred

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Badanie przeprowadzono zgodnie z zasadami Deklaracji Helsińskiej. Komisja Etyki Xianyou County General Hospital zatwierdziła badanie przed jego rozpoczęciem (Numer zgody 202514, z dnia 18 czerwca 2025 r.).

Podsumowanie protokołu znajduje się w Dodatkowej Figurze 1.

Próbki

Do badania zgłosiło się łącznie 110 pacjentów z OA leczonych w tym szpitalu oraz 105 zdrowych osób kontrolnych. Kryteria dopuszczenia do grupy OA były następujące: diagnostyka OA potwierdzona zgodnie z kryteriami klasyfikacyjnymi ustanowionymi przez American College of Rheumatology20. Wszyscy pacjenci przeszli zdjęcie rentgenowskie i klasyfikację zdjęciową Kellgren-Lawrence (K-L); brak leczenia antybiotykami w ciągu 3 miesięcy przed przyjęciem; pełne dane kliniczne; i pisemna zgoda świadomie udzielona przez wszystkich pacjentów. Kryteria wykluczenia dla grupy OA obejmowały pacjentów, którzy otrzymali odpowiednią terapię lub byli w terminalnym stadium choroby; osoby cierpiące na inne choroby stawów, takie jak dna, reumatoidalne zapalenie stawów itp.; te z kombinacją guzów, ciężkimi niewydolnościami wątroby i nerek, chorobami autoimmunologicznymi, chorobami zakaźnymi, chorobami neurologicznymi lub ciężkimi chorobami układu krążenia i oddechowego; oraz te z niepełnosprawnościami fizycznymi, które uniemożliwiały im samodzielną opiekę. W momencie zapisu, dane początkowe wszystkich uczestników zostały nagrane, w tym wiek, płeć, wskaźnik masy ciała (BMI), palenie, picie, wywiad rodzinny, przebieg choroby, stopień K-L, wynik Visual Analog Scale (VAS), wynik Western Ontario and McMaster Universities Osteoarthritis Index (WOMAC) oraz miejsce zmian. Odpowiednie dane zostały przeanalizowane i podsumowane w Tabeli 1. Wszystkim badanym wyciągnięto 8 ml krwi żylnej na czczo, pozostawiono do ostania się przez 3 godziny w temperaturze 4 °C, a następnie wyśrodkowano w temperaturze 4 °C z prędkością 3000 x g przez 15 min w celu izolowaniu surowicy. Surowica była delikatnie pobrana i przechowywana w temperaturze -80 °C aż do dalszych badań.

Krówia krew/surowice (Kategoria B materialu biologicznego zakaźnego) zawierają płyny ustrojowe człowieka, które mogą zawierać nieznane patogeny zakaźne i mogą powodować zakażenia przezskórne lub śluzówkowe poprzez rozbryzgi, nakłucia igiełkami lub kontakt z uszkodzoną skórą. Należy nosić jednorazowe rękawice nitrylowe, jednorazowe kombinezony medyczne, okulary ochronne lub maseczki i maseczki chirurgiczne. Po poddaniu wysokociśnieniowej sterylizacji jest zbierana centralnie i spalana przez certyfikowane instytucje dotyczące usuwania odpadów medycznych.

Hodowla komórek i budowa modelu komórek OA

Komórki chrząstkowe ludzkie C28/I2 były utrzymywane w pożywce DMEM/F12 zawierającej 10% surowicy wołowej (FBS) w temperaturze 37 °C w wilgotnym inkubatorze wypełnionym 5% CO₂. Wszystkie eksperymenty przeprowadzono z wykorzystaniem komórek na przedziałach 3-6 w celu utrzymania stabilnego fenotypu komórkowego. Kolejne manipulacje eksperymentalne przeprowadzano po osiągnięciu przez komórki 80% konfluencji. Komórki w grupie doświadczalnej były leczone 10 ng/mL IL-1β w temperaturze 37 °C przez 24 godziny w celu stworzenia in vitro modelu OA21, podczas gdy komórki w grupie kontrolnej pozostawiono bez leczenia.

Transfekcja komórek

Negatywny inhibitor kontrolny (inhibitor-NC), miR-215-5p inhibitor, mimic-NC, miR-215-5p mimic, negatywny mały interferencyjny RNA (si-NC) oraz si-EREG zostały syntetyzowane komercyjnie. Testy transfekcji przeprowadzono w 6-dołkowych płytkach za pomocą reagensu transfekcyjnego w fazie wzrostu logarytmicznego komórek. Konkretnie, 50 nM inhibitora/mimika lub negatywnych kontroli było rozcieńczane w 125 µL pożywki Opti-MEM na dołek, łączone z 5 µL reagensu transfekcyjnego rozpuszczonego w 125 µL pożywki Opti-MEM i przechowywane w temperaturze pokojowej przez 15 min, aby utworzyć kompleks. Następnie mieszaninę dodawano do komórek. Komórki były zbierane 48 godzin po transfekcją na potrzeby dalszych eksperymentów.

Ilościowa odwrotna transkrypcja z użyciem polimerazy łańcuchowej reakcji z odwrotnym łączeniem (qRT-PCR)

Całkowite RNA było izolowane za pomocą reagensu TRIzol zgodnie z protokołami producenta, a próbki obejmowały surowicę i komórki. Do odwrotnej transkrypcji, w każdej reakcji stosowano 1 µg całkowitego RNA, zgodnie z protokołami producenta PrimeScript Reverse Transcriptase. Po zakończeniu odwrotnej transkrypcji, reakcje amplifikacyjne były prowadzone na urządzeniu do rzeczywistej czasowej PCR za pomocą SYBR-Green Real Master mix jako reagensu reakcji. Parametry termiczne cykli były następujące: początkowa denaturacji w 95°C przez 30 sekund, a następnie 40 cykli w 95°C przez 5 sekund i 60°C przez 30 sekund. qRT-PCR był

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Charakterystyka wyjściowa

Do grupy kontrolnej włączono 105 pacjentów, w tym 58 (55,24%) mężczyzn i 47 (44,76%) kobiet, ze średnim wiekiem 52,81 ± 12,57 lat i BMI wynoszącym 24,25 ± 2,71 kg/m2. Grupa z OA obejmowała 110 pacjentów, w tym 69 (62,73%) mężczyzn i 41 (37,27%) kobiet, ze średnim wiekiem 54,42 ± 12,33 lat i BMI wynoszącym 24,88 ± 3,51 kg/m2. Dodatkowe informacje wyjściowe dla grupy z OA przedstawiono w Tabeli 1.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

OA, powszechne zaburzenie stawów w środowisku klinicznym, stało się trzecią najważniejszą przyczyną organicznej niepełnosprawności po cukrzycy i demencję22,23. Jednak patogeneza OA jest złożona, a jej rozpoznanie często wymaga kombinacji objawów klinicznych, badań obrazowych i innych środków, a długi cykl diagnostyczny poważnie opóźnia terminowe leczenie pacjentów24. Dlatego klinicznie ważne jest poszukiwanie biomarkerów, które mogą być wy...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają żadnych interesów finansowych ani własnościowych w żadnym materiale omówionym w tym artykule.

Podziękowania

Autorzy nie otrzymali żadnego konkretnego finansowania na tę pracę.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
96-well platesCorning/USA3903
Anti-Ago2Abcam/USAAB_867543
RRID: ab186733
Anti-IgGAbcam/USAAB_10673832
RRID: ab133470
C28/I2 chondrocytesMerck Millipore/USASCC043
CCK-8 KitBeyotime/ChinaC0038Zestaw do badania żywotności komórek
Crystal violetSigma-Aldrich/USAV5265
DMEM/F12 mediumGibco/USA11320033
Dual-Luciferase Reporter Assay KitPromega/USAE1910
EZ-Magna RIP KitMerck Millipore/USA17701
FBSThermo Fisher Scientific/USA26010074
FormaldehydeSigma-Aldrich/USAF8775
Graphpad Prism 9.0GraphPad Software Inc. /USAhttps://www.graphpad.com/features
IL-1βSigma-Aldrich/USASRP3083
IL-1β  ELISA kitNanjing Jiancheng/ChinaH002-1-2
IL-6  ELISA kitNanjing Jiancheng/ChinaH007-1-2
IncubatorThermo Fisher Scientific/USABB150-2TCS-L
Inhibitor-NCGenePharma (custom synthesis) /Chinahttps://www.genepharma.com/
Light Cycler 480Roche/Switzerlandhttps://lifescience.roche.com/global/en/article-listing/article/lightcycler-480-system-technology.htmlInstrument do badań PCR w czasie rzeczywistym
Lipofectamine 3000Invitrogen/USAL3000015Reagent do transfekcji komórek
Microplate readerThermo Fisher Scientific/USAVA000010C
MicroscopyNikon/Japanhttps://www.nikon.com.cn/sc_CN/
Mimic-NCGenePharma (custom synthesis) /Chinahttps://www.genepharma.com/
MiR-215-5p inhibitorGenePharma (custom synthesis) /Chinahttps://www.genepharma.com/
MiR-215-5p mimicGenePharma (custom synthesis) /Chinahttps://www.genepharma.com/
Opti-MEMGibco/USA31985070
pGL3 vectorPromega/USAE1751
PrimeScript Reverse TranscriptaseTakara/Japan2680Zestaw do odwrotnej transkrypcji
Si-EREGGenePharma (custom synthesis) /Chinahttps://www.genepharma.com/
Si-NCGenePharma (custom synthesis) /Chinahttps://www.genepharma.com/
SPSS 24.0IBM Corp/USAhttps://spssau.com/index.html
SYBR Green SupermixBio-Rad/USA1725121
TNF-α  ELISA kitNanjing Jiancheng/ChinaH052-1-2
Transwell chamberCorning/USA3422
TRIzol reagentThermo Fisher Scientific/USA15596026Reagent do izolacj RNA

Bibliografia

  1. Jiang Y. Osteoarthritis year in review 2021: biology. Osteoarthritis Cartilage. 2022;30(2):207–215.
  2. Choi WS, et al. The CH25H-CYP7B1-RORalpha axis of cholesterol metabolism regulates osteoarthritis. Nature. 2019;566(7743):254–258.
  3. Lankhorst NE, et al. Incidence, prevalence, natural course, and prognosis of patellofemoral osteoarthritis: the Cohort Hip and Cohort Knee study. Osteoarthritis Cartilage. 2017;25(5):647–653.
  4. Nelson AE. Osteoarthritis year in review 2017: clinical. Osteoarthritis Cartilage. 2018;26(3):319–325.
  5. Herrero-Beaumont G, et al. Systemic osteoarthritis: the difficulty of categorically naming a continuous condition. Aging Clin Exp Res. 2024;36(1):45.
  6. Abramoff B, Caldera FE. Osteoarthritis: Pathology, Diagnosis, and Treatment Options. Med Clin North Am. 2020;104(2):293–311.
  7. Han D, et al. The emerging role of fibroblast-like synoviocytes-mediated synovitis in osteoarthritis: An update. J Cell Mol Med. 2020;24(17):9518–9532.
  8. Maroun G, Fissoun C, Villaverde M, Brondello JM, Pers YM. Senescence-regulatory factors as novel circulating biomarkers and therapeutic targets in regenerative medicine for osteoarthritis. Joint Bone Spine. 2024;91(2):105640.
  9. Zhang Y, Zhao P, Li S, Mu X, Wang H. CircSCAPER knockdown attenuates IL-1beta-induced chondrocyte injury by miR-127-5p/TLR4 axis in osteoarthritis. Autoimmunity. 2022;55(8):577–586.
  10. Song AF, Kang L, Wang YF, Wang M. MiR-34a-5p inhibits fibroblast‑like synoviocytes proliferation via XBP1. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2020;24(22):11675–11682.
  11. Lu X, Lin J, Jin J, Qian W, Weng X. Hsa-miR-15a exerts protective effects against osteoarthritis by targeting aggrecanase-2 (ADAMTS5) in human chondrocytes. Int J Mol Med. 2016;37(2):509–16.
  12. Yin CM, et al. Dysregulation of both miR-140-3p and miR-140-5p in synovial fluid correlates with osteoarthritis severity. Bone Joint Res. 2017;6(11):612–618.
  13. Yang X, Meng T. miR-215-5p decreases migration and invasion of trophoblast cells through regulating CDC6 in preeclampsia. Cell Biochem Funct. 2020;38(4):472–479.
  14. Yao Y, et al. MiR-215-5p inhibits the inflammation injury in septic H9c2 by regulating ILF3 and LRRFIP1. Int Immunopharmacol. 2020;78:106000.
  15. Yin Z, et al. miR-215-5p regulates osteoporosis development and osteogenic differentiation by targeting XIAP. BMC Musculoskelet Disord. 2022;23(1):789.
  16. Zhou Y, et al. Identification of differentially expressed miRNAs and mRNAs in synovial of osteoarthritis via RNA-sequencing. BMC Med Genet. 2020;21(1):46.
  17. Zhao YC, et al. Epiregulin enhances periodontal tissue regeneration by promoting bone marrow mesenchymal stem cell functions under inflammatory niches. World J Stem Cells. 2026;18(2):114032.
  18. Li PL, et al. Multiomic identification of senescent stem cell populations critical for osteoarthritis progression and therapy in subchondral bones. Sci Adv. 2025;11(29):eadu2294.
  19. Chen YJ, et al. Systematic Analysis of Transcriptomic Profile of Chondrocytes in Osteoarthritic Knee Using Next-Generation Sequencing and Bioinformatics. J Clin Med. 2018;7(12):535.
  20. Altman R, et al. Development of criteria for the classification and reporting of osteoarthritis. Classification of osteoarthritis of the knee. Diagnostic and Therapeutic Criteria Committee of the American Rheumatism Association. Arthritis Rheum. 1986;29(8):1039–49.
  21. Gan K, et al. Positive feedback loop of lncRNA FAM201A/miR‑146a‑5p/POU2F1 regulates IL‑1beta‑induced chondrocyte injury in vitro. Mol Med Rep. 2022;25(1):20.
  22. GBD 2016 Disease and Injury Incidence and Prevalence Collaborators. Global, regional, and national incidence, prevalence, and years lived with disability for 328 diseases and injuries for 195 countries, 1990-2016: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2016. Lancet. 2017;390(10100):1211–1259.
  23. Mandl LA. Osteoarthritis year in review 2018: clinical. Osteoarthritis Cartilage. 2019;27(3):359–364.
  24. Mobasheri A, et al. The role of metabolism in the pathogenesis of osteoarthritis. Nat Rev Rheumatol. 2017;13(5):302–311.
  25. Xiong X, et al. MicroRNA miR-215-5p Regulates Doxorubicin-induced Cardiomyocyte Injury by Targeting ZEB2. J Cardiovasc Pharmacol. 2021;78(4):622-629.
  26. Cai C, Zhang R, Xu X, Li G, Gou H. Diagnostic values of NLR and miR-141 in patients with osteoarthritis and their association with severity of knee osteoarthritis. Exp Ther Med. 2021;21(1):74.
  27. Lai Z, Cao Y. Plasma miR-200c-3p, miR-100-5p, and miR-1826 serve as potential diagnostic biomarkers for knee osteoarthritis: Randomized controlled trials. Medicine (Baltimore). 2019;98(51):e18110.
  28. Qi K, et al. Long Non-Coding RNA (LncRNA) CAIF is Downregulated in Osteoarthritis and Inhibits LPS-Induced Interleukin 6 (IL-6) Upregulation by Downregulation of MiR-1246. Med Sci Monit. 2019;25:8019–8024.
  29. Platzer H, et al. The Impact of 45S5-Bioactive Glass on Synovial Cells in Knee Osteoarthritis-An In Vitro Study. Materials (Basel). 2023;16(24):7594.
  30. Ren T, et al. MiR-140-3p Ameliorates the Progression of Osteoarthritis via Targeting CXCR4. Biol Pharm Bull. 2020;43(5):810–816.
  31. Ying P, et al. Analysis of the regulatory role of miR-34a-5p/PLCD3 in the progression of osteoarthritis. Funct Integr Genomics. 2023;23(2):131.
  32. Fields JK, Gunther S, Sundberg EJ. Structural Basis of IL-1 Family Cytokine Signaling. Front Immunol. 2019;10:1412.
  33. Pratama DGK, Suyasa IK, Astawa P, Lestari AAW. High IL-6 level as a marker of lumbar osteoarthritis in patients older than 55 years with low back pain. Orthop Res Rev. 2019;11:17–21.
  34. Molnar V, et al. Cytokines and Chemokines Involved in Osteoarthritis Pathogenesis. Int J Mol Sci. 2021;22(17):9208.
  35. Ji W, Sun B, Su C. Targeting MicroRNAs in Cancer Gene Therapy. Genes (Basel). 2017;8(1):21.
  36. Chen X, et al. Cell membrane-camouflaged nanomedicines for enhanced thrombolysis and blood-brain barrier penetration in ischemic stroke therapy. Int J Pharm X. 2025;10:100404.
  37. Gupta T, et al. Enhancing Bioavailability and Stability of Curcumin Using Solid Lipid Nanoparticles (CLEN): A Covenant for Its Effectiveness. Front Bioeng Biotechnol. 2020;8:879.
  38. Liang Q, Cheng Z, Qin L. Advanced nanoparticles in osteoarthritis treatment. Biomater Transl. 2024;5(2):95–113.
  39. Shi Z, et al. Micro-nano integrated platforms for osteoarthritis therapy: From spatial manipulation to cellular reprogramming. Mater Today Bio. 2026;37:102963.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Immunologia i InfekcjeWydanie 233Wydanie 233Wartość pustaWydanieDiagnostyka