Badanie to zostało zatwierdzone przez Komisję Bioetyczną (Institutional Review Board) Szpitala Ludowego Prowincji Shaanxi (numer zatwierdzenia 2024-R055) i przeprowadzono je zgodnie z zasadami Deklaracji Helsińskiej. Przed pobraniem krwi od każdego uczestnika uzyskano pisemną świadomą zgodę. Wszystkie ludzkie próbki krwi i surowicy były pobierane, przetwarzane i przechowywane zgodnie z wytycznymi instytucjonalnymi Departamentu Medycyny Laboratoryjnej.
Wszystkie próbki krwi żylnej i surowicy traktowano jako potencjalnie zakaźny materiał biologiczny. Przetwarzanie próbek przeprowadzano w laboratorium poziomu bezpieczeństwa biologicznego 2 przez przeszkolony personel noszący odpowiednie środki ochrony indywidualnej. Jednorazowe wyroby plastikowe, końcówki do pipet oraz zużyte mikropłytki, które miały kontakt z materiałem biologicznym, poddawano autoklawowaniu lub gromadzono jako odpady biologiczne i utylizowano za pośrednictwem licencjonowanego strumienia odpadów medycznych instytucji, zgodnie z lokalnymi przepisami.
Przegląd projektu badania:
Przebieg niniejszego badania został podsumowany na schemacie projektu badania (Rysunek uzupełniający S1) i został podzielony na dwa komplementarne etapy. W etapie in silico przeanalizowano publiczne zbiory danych transkryptomicznych, jednokomórkowych, białkowych, modyfikacji potranslacyjnych, immunologicznych oraz wrażliwości na leki, aby scharakteryzować kontekst biologiczny hWAPL i sformułować hipotezy mechanistyczne. W etapie eksperymentalnym zmierzono poziom hWAPL i SCC-Ag w surowicy w niezależnej kohorcie jednocentrycznej, a ich wydajność diagnostyczną, osobno i w połączeniu, oceniono za pomocą analizy charakterystyki operacyjnej odbiornika (ROC) oraz regresji logistycznej. Oba etapy zintegrowano wyłącznie na poziomie interpretacji, przy czym etap analizy surowicy stanowił jedyną walidację eksperymentalną.
Profilowanie ekspresji genów w raku szyjki macicy z rozmaitnienia płaskiego oraz w różnych typach nowotworów
Dane z sekwencjonowania RNA pochodzące z bazy The Cancer Genome Atlas (TCGA) zostały pobrane za pomocą przeglądarki UCSC Xena Browser. Wszystkie publiczne bazy danych i narzędzia internetowe wykorzystane w niniejszym badaniu były dostępne między wrześniem a październikiem 2025 r., a konkretne wersje i daty dostępu są wymienione w Tabeli materiałów. Poziomy ekspresji WAPL, określone jako liczba fragmentów na kilobazę transkryptu na milion zmapowanych odczytów (FPKM), poddano transformacji log₂ z dodaniem pseudolicznika 1. Przekształcone wartości zostały następnie wykorzystane do przeprowadzenia analiz porównawczych między tkankami nowotworowymi a dopasowanymi próbkami normalnych tkanek sąsiednich w wielu typach nowotworów. W ramach ukierunkowanego badania nad nowotworami szyjki macicy wyizolowano dane dotyczące ekspresji WAPL specyficzne dla raka szyjki macicy z rozmaitnienia płaskiego oraz gruczolakoraka szyjki macicy (CESC). Profil ekspresji w tych próbkach guza został następnie zwizualizowany i porównany z poziomami ekspresji w normalnych kontrolnych tkankach nabłonkowych szyjki macicy.
Analiza izoform transkryptów WAPL
Profile ekspresji izoform transkryptów WAPL zbadano przy użyciu bazy danych GEPIA2. Konkretne izoformy określono za pomocą odpowiadających im identyfikatorów transkryptów Ensembl (ENST). Poziomy ekspresji obliczono jako logarytm o podstawie 2 z liczby transkryptów na milion plus jeden [log₂(TPM+1)] i przedstawiono graficznie w formie wykresów skrzypcowych.
Analiza sekwencjonowania RNA pojedynczych komórek
Zbiór danych scRNA-seq GSE168652 pobrano z repozytorium Gene Expression Omnibus (GEO). Przetwarzanie wstępne danych, ocena jakości, normalizacja i klasteryzacja zostały wykonane za pomocą platformy scCancerExplorer. Odfiltrowano komórki wykazujące ekspresję mniej niż 200 genów oraz geny wykryte w mniej niż trzech komórkach. Normalizację przeprowadzono metodą Log-Normalize ze współczynnikiem skalowania 10 000.
Za pomocą transformacji stabilizującej wariancję zidentyfikowano 2000 genów o największej zmienności, które następnie wykorzystano do analizy głównych składowych (PCA). W celu redukcji wymiarowości, w oparciu o pierwsze 30 głównych składowych, zastosowano algorytm UMAP (Uniform Manifold Approximation and Projection). Grupowanie oparte na grafach zrealizowano za pomocą algorytmu Louvain przy rozdzielczości 0,8. Klastry komórek adnotowano zgodnie z uznanymi genami markerowymi. Poziomy ekspresji WAPL zmierzono w różnych populacjach komórek, a stadia cyklu komórkowego określono metodą CellCycleScoring.
Analiza ekspresji białek i modyfikacji potranslacyjnych
Ekspresję i dystrybucję wewnątrzkomórkową WAPL w CSCC oceniono z wykorzystaniem bazy danych Human Protein Atlas. Miejsca modyfikacji potranslacyjnych (PTM) zidentyfikowano za pomocą PhosphoSitePlus. Ponadto, przy użyciu narzędzia Xiantao Academic, zbadano potencjalne powiązania między poziomami ekspresji WAPL a genami zaangażowanymi w procesy modyfikacji białek, a konkretnie AKT1, AKT2, KAT2B, EP300, USP7 i KAT5, w przebiegu CSCC13,14,15,16,17.
Analiza sieci koekspresji i wzbogacenia funkcjonalnego
Dane z sekwencjonowania RNA dla TCGA-CSCC, przetworzone przy użyciu algorytmu STAR i znormalizowane do liczby transkrypcji na milion (TPM), pobrano z portalu Genomic Data Commons (GDC). Aby zidentyfikować geny koekspresjonowane z WAPL, zastosowano próg przesiewowy oparty na bezwzględnej wartości współczynnika korelacji Pearsona większej niż 0,6 oraz poziomie istotności statystycznej P < 0,05.
Aby zbadać funkcje biologiczne związane z WAPL, w pierwszej kolejności przeprowadzono analizę różnicowej ekspresji po podzieleniu pacjentów na grupy o wysokiej i niskiej ekspresji WAPL, przyjmując medianę wartości ekspresji jako punkt odcięcia. Geny różnicowo eksprimowane zidentyfikowano za pomocą platformy Xiantao Academic, a następnie poddano je analizie wzbogacenia Gene Ontology, obejmującej kategorie procesów biologicznych, komponentów komórkowych i funkcji molekularnych, wraz z analizą ścieżek Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes. Niezależnie zbadano relacje oddziaływań białkowych z udziałem WAPL przy użyciu bazy STRING, a powstałą sieć oddziaływań zrekonstruowano i przeanalizowano w programie Cytoscape.
Analizę wzbogacenia zestawów genów (GSEA) przeprowadzono z wykorzystaniem baz danych Reactome, WikiPathways oraz KEGG, przyjmując kryteria przesiewowe w postaci bezwzględnego znormalizowanego wyniku wzbogacenia (|NES|) > 1 oraz wskaźnika fałszywych odkryć (FDR) < 0,25.
Analiza infiltracji immunologicznej
Do analizy danych transkrypomicznych z kohorty TCGA-CESC wykorzystano narzędzia obliczeniowe TIMER 2.0 oraz xCell, co umożliwiło ilościową ocenę stanu infiltracji dla 24 różnych populacji komórek odpornościowych.
Przewidywanie wrażliwości na leki
Przewidywania wrażliwości na leki zostały opracowane na podstawie bazy danych GDSC2 z wykorzystaniem pakietu R oncoPredict. Obliczono połowową maksymalną stężenie hamujące (IC50) dla panelu 86 związków chemioterapeutycznych.
Analiza przeżywalności i diagnostyczna
Krzywe przeżycia całkowitego (OS) oraz czasu wolnego od progresji (PFI) sporządzono przy użyciu platformy analitycznej Xiantao, dzieląc kohorty pacjentów na dwie grupy na podstawie mediany poziomu ekspresji WAPL. Znaczenie prognostyczne zmiennych oceniono za pomocą jednowymiarowych i wielowymiarowych modeli regresji proporcjonalnych hazardów Coxa. Aby ocenić zdolność diagnostyczną WAPL oraz SCC (SERPINB3) w różnicowaniu CSCC od przyległej tkanki prawidłowej, zastosowano analizę krzywej charakterystyki operacyjnej odbiornika (ROC) dla danych transkryptomicznych, wyrażonych jako liczba transkryptów na milion (TPM), pobranych z bazy The Cancer Genome Atlas.
Pobieranie próbek surowicy i analiza ELISA
Badanie to uzyskało zatwierdzenie Komisji Bioetycznej Szpitala Ludowego Prowincji Shaanxi (nr zatwierdzenia 2024-R055) i zostało przeprowadzone zgodnie z Deklaracją Helsińską. Pobrano łącznie 89 próbek surowicy od pacjentek z histopatologicznie potwierdzonym CSCC oraz 89 próbek od zdrowych kobiet z grupy kontrolnej, dopasowanych pod względem wieku. Mediana wieku wynosiła 54 lata (zakres 31–77 lat) w kohorcie CSCC oraz 41 lat (zakres 30–52 lat) w kohorcie kontrolnej. Wszystkie przypadki raka szyjki macicy były nowo zdiagnozowane i nieleczone w momencie pobierania krwi; próbki pobrano przed rozpoczęciem jakiejkolwiek operacji, chemioterapii lub radioterapii. Zauważamy, że mimo iż obie grupy pochodziły z porównywalnego środowiska klinicznego, mediany wieku różniły się o 13 lat. Różnica ta została bezpośrednio zbadana w sekcji Wyniki oraz w dedykowanej analizie wrażliwości skorygowanej o wiek, a w sekcji Dyskusja została uznana za ograniczenie badania.
Krew żylną pobierano do probówek bez przeciwkrzepliwych, pozostawiano do skrzepnięcia w temperaturze otoczenia przez 10–20 min, a następnie wirowano przy 2,000–3,000 × g przez 20 min. Surowicę oddzielano w ciągu 1 h od pobrania, natychmiast rozdzielano na alikwoty i przechowywano w temperaturze −20 °C; odstęp czasu między nakłuciem żyły a zamrożeniem nie przekraczał 2 h dla żadnej próbki. Alikwoty poddano jednemu cyklowi zamrażania i rozmrażania przed analizą, a wszystkie pomiary zakończono w ciągu trzech miesięcy od przechowywania. Otrzymaną surowicę podzielono na alikwoty i przechowywano w −20 °C. Próbki hemolizowane lub lipemiczne wykluczano z analizy.
Ilościowe oznaczenie poziomu białka hWAPL w surowicy przeprowadzono przy użyciu komercyjnie dostępnego zestawu testu immunoenzymatycznego (ELISA) opartego na zasadzie kanapki z dwoma przeciwciałami. W skrócie, zarówno standardy kalibracyjne, jak i próbki testowe naniesiono w duplikacie do dołków mikropłytek uprzednio pokrytych przeciwciałem wychwytującym specyficznym dla hWAPL, a następnie inkubowano przez 30 min w 37 °C. Po serii etapów płukania w celu usunięcia niezwiązanego materiału, wprowadzono przeciwciało detekcyjne skierowane przeciwko hWAPL, znakowane peroksydazą chrzanową (HRP), i inkubowano w tych samych warunkach.
Po kolejnym przemyciu, do dołków dodano po 50 µL roztworów substratów chromogennych A i B, a następnie inkubowano je w ciemności w temperaturze 37 °C przez 10 min. W celu przerwania reakcji enzymatycznej dodano roztwór stopujący (50 µL). Gęstość optyczną zmierzono przy długości fali podstawowej 450 nm oraz referencyjnej 630 nm w ciągu 15 min od zatrzymania reakcji. Krzywą wzorcową sporządzono przy użyciu kalibratorów rozcieńczonych seryjnie w zakresie stężeń 10–450 pg/mL. Stężenie hWAPL dla każdej nieznanej próbki wyznaczono poprzez interpolację z tej krzywej wzorcowej i skorygowano o wszelkie rozcieńczenia przedanalityczne. Analizę przeprowadzono ściśle według instrukcji producenta. Zgodnie ze specyfikacją producenta, roboczy zakres detekcji zestawu wynosi 10–450 pg/mL. Próbki analizowano w ostatecznym rozcieńczeniu 5-krotnym, a materiał, którego gęstość optyczna przekraczała wartość najwyższego kalibratora, poddano dalszemu rozcieńczeniu i ponownej analizie, stosując całkowity czynnik rozcieńczenia podczas obliczeń wstecznych. Parametry analityczne zweryfikowano w matrycy surowicy przed analizą próbek badawczych: seryjnie rozcieńczona pula surowicy o wysokim stężeniu wykazała akceptowalną liniowość w całym zakresie kalibracji, a odzysk po dodaniu kalibratora rekombinowanego w trzech pulach surowicy mieścił się w dopuszczalnym przedziale, co jest zgodne z konstrukcją zestawu opartą na metodzie kanapkowej z dwoma przeciwciałami. Dolna granica oznaczalności odpowiadała najniższemu kalibratorowi (10 pg/mL). Podkreślamy, że zestaw ten jest oznakowany przez producenta wyłącznie do celów badawczych i nie jest klinicznie zwalidowanym wyrobem do diagnostyki in vitro; zatem stężenia bezwzględne i wyznaczony punkt odcięcia należy interpretować jako specyficzne dla danej platformy i tymczasowe, co omówiono poniżej.
Równolegle poziom SCC-Ag w surowicy oznaczono przy użyciu platformy Abbott Alinity i za pomocą chemiluminescencyjnego mikrocząsteczkowego testu immunoenzymatycznego (CMIA), przy górnej granicy referencyjnej wynoszącej 1,5 ng/mL. Wszystkie procedury analityczne przeprowadzono w dubletach przez personel laboratoryjny, który nie znał stanu choroby ani żadnych zmiennych klinicznych, w tym stopnia zaawansowania klinicznego, stopnia histologicznego oraz statusu HPV. Współczynniki zmienności międzyseryjnej i wewnątrzseryjnej dla zastosowanych metodologii utrzymano poniżej 10%.
Analiza statystyczna
Ponieważ stężenia hWAPL w surowicy nie spełniały założenia o rozkładzie normalnym zgodnie z testem Shapiro–Wilka (wszystkie P < 0,05), kolejne analizy przeprowadzono z wykorzystaniem metod nieparametrycznych. Zmienne ciągłe przedstawiono zatem jako mediany z zakresami międzykwartylnymi (IQRs). Różnice między dwiema niezależnymi grupami oceniano za pomocą testu U Manna–Whitneya, natomiast porównania trzech lub więcej grup przeprowadzono testem H Kruskala–Wallisa. Korelacje między zmiennymi oceniano za pomocą analizy korelacji rang Spearmana dla danych ciągłych lub porządkowych oraz za pomocą współczynnika korelacji punktowo-dwuseryjnej dla zmiennych binarnych, takich jak status zakażenia HPV. Wyniki przeżycia porównywano za pomocą testu log-rank, a współczynniki hazardu z 95% przedziałami ufności oszacowano na podstawie regresyjnych modeli proporcjonalnych hazardów Coxa.
Wydajność diagnostyczną oceniono za pomocą analizy krzywej ROC, a optymalny punkt odcięcia dla każdego biomarkera wyznaczono poprzez maksymalizację indeksu Youdena. Różnice w polu pod krzywą (AUC) przetestowano z wykorzystaniem metody DeLonga. Aby zbadać łączną użyteczność diagnostyczną, zbudowano model binarnej regresji logistycznej, w którym zmienną zależną był stan choroby (CSCC = 1; kontrola = 0), a niezależnymi predyktorami były surowicze hWAPL oraz antygen SCC. Wynikowe prawdopodobieństwa predykcyjne zapisano jako wynik złożony do późniejszej analizy ROC.
Różnice w wrażliwości na leki między grupami z wysoką i niską ekspresją WAPL oceniono za pomocą pakietu limma, stosując progi skorygowanego P < 0,05 oraz |log₂ fold change| > 0,3. Istotność statystyczną zdefiniowano jako dwustronną wartość P < 0,05. Wszystkie analizy przeprowadzono z użyciem programów SPSS, R lub określonych narzędzi online. Wykorzystane pakiety R obejmowały survival, survminer, pROC, ggplot2, oncoPredict oraz limma. Dla wszystkich analiz wysokowymiarowych, w których jednocześnie testowano wiele hipotez, a mianowicie dla porównań pan-cancer, przesiewu koekspresji, analiz różnicowej ekspresji i wzbogacenia funkcjonalnego oraz analizy wrażliwości na leki, wartości P skorygowano pod kątem wielokrotnych porównań przy użyciu metody Benjamini–Hochberg (false discovery rate); w odpowiednich przypadkach podano skorygowane wartości P. Korelacje parzyste między hWAPL a poszczególnymi genami lub frakcjami komórek odpornościowych podano z nominalnymi wartościami P, a wyniki tych korelacji uznano za generujące hipotezy, a nie potwierdzające. Ze względu na to, że niewielka liczba pól kliniczno-patologicznych w kohorcie publicznej była niecałkowicie wypełniona, przypadki z brakującymi danymi wykluczono z odpowiadających im analiz w sposób parzysty zamiast stosować imputację, a liczbę przypadków możliwych do oceny podano dla każdej zmiennej w Table 1. Aby uwzględnić różnicę wieku między kohortami surowiczymi, przeprowadzono analizę wrażliwości z użyciem binarnej regresji logistycznej skorygowanej o wiek oraz obliczono korelację Spearmana między poziomem hWAPL w surowicy a wiekiem w każdej grupie.