$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Czterdziestu dorosłych samców szczurów Sprague–Dawley (SD) bez specyficznych patogenów (SPF), o wadze 240–280 g, zakupiono od Beijing Vital River Laboratory Animal Technology [Numer licencji: SCXK (Jing) 2021-0011]. Wszystkie szczury były przetrzymywane w Laboratorium Zwierząt Doświadczalnych Uniwersytetu Medycyny Chińskiej w Pekinie w kontrolowanych warunkach, z temperaturą pokojową 23°C ± 1°C, wilgotnością względną 50% ± 5%, oraz cyklem 12 h światła/12 h ciemności, z wolnym dostępem do żywności i wody. Szczury były przyzwyczajone przez 5 dni, podczas których jednocześnie wykonywano przyzwyczajenie do bieżni. Zwierzęta wykonywały przyzwyczajenie do bieżni raz dziennie z prędkością 10 m/min przez 15 min na sesję bez stymulacji elektrycznej, aby zmniejszyć stres związany z obsługą.
Na podstawie naszego poprzedniego badania, wskaźnik sukcesu indukcji PSS metodą okluzji tętnicy środkowej mózgu (MCAO) wynosi około 60%15. Używając losowej tabeli liczb, 9 szczurów zostało losowo wybranych z wyprzedzeniem jako grupa szamoperacyjna; pozostałe 31 szczurów zostało użytych do ustanowienia modelu. Po udanym modelowaniu te szczury zostały losowo podzielone na grupę modelu i grupę MSSA. Ostatecznie, dziewięć szczurów zostało włączonych do każdej grupy. To eksperyment został przeprowadzony zgodnie z zasadami 3R dotyczącymi opieki nad zwierzętami laboratoryjnymi i został zatwierdzony przez Komitet Etykę dla Zwierząt Doświadczalnych Uniwersytetu Medycyny Chińskiej w Pekinie (BUCM 20250915-008).
Ustanowienie modelu
Model MCAO został ustanowiony u szczurów za pomocą zmodyfikowanej techniki wlaniaczowej z wykorzystaniem włókna. Szczury były znieczulone za pomocą 3% izofluranu w celu indukcji, a znieczulenie było utrzymywane za pomocą 1,5% izofluranu dostarczanego w tlenie z ciągłą prędkością przepływu 1 L/min przez cały czas trwania zabiegu chirurgicznego. Wykonano pośrodkowe cięcie szyi, po którym nastąpiło stępienie w celu ekspozycji prawej wspólnej tętnicy szyjnej (CCA), zewnętrznej tętnicy szyjnej (ECA) oraz wewnętrznej tętnicy szyjnej (ICA). Włókno nylonowe (średnica 0,36 ± 0,02 mm) zostało wprowadzone do ICA przez ECA i zaawansowane około 18–20 mm do miejsca pochodzenia tętnicy środkowej mózgu (MCA) w celu uzyskania okluzji tętniczej. Naczynia zostały związane, a rana została zamknięta. Szczury zostały następnie umieszczone na podgrzewanej poduszce aż do wybudzenia się z znieczulenia. Szczury z grupy szamoperacyjnej przeszły identyczne chirurgiczne ekspozycje CCA, ICA i ECA bez wstawienia włókna wlaniaczowego.
Po zabiegu, wszystkie szczury z MCAO otrzymały standaryzowaną opiekę pooperacyjną. Zwierzęta były utrzymywane na podgrzewanej poduszce o temperaturze 37°C przez pierwsze 12 godzin, aby zapobiec hipotermii. Rany chirurgiczne były czyszczone codziennie przez trzy kolejne dni, penicylina (100 mg/kg) była podawany dożylnie w celu zapobiegania infekcjom, a zmiękczona żywność była dostarczana w celu utrzymania odpowiedniej żywienia. Ogólna aktywność, spożycie pokarmu, stan rany i funkcja motoryczna kończyn były monitorowane codziennie od 1 do 10 dnia pooperacyjnego.
Deficyty neurologiczne były oceniane przez badaczy, którzy nie wiedzieli o przydziale do grup, za pomocą wskaźnika Zea Longa deficytów neurologicznych, a napięcie mięśniowe było oceniane za pomocą Modyfikowanej Skali Ashwortha (MAS). Oceny były wykonywane 1 dzień przed zabiegiem (dzień -1), w dniu zabiegu przed MCAO (dzień 0) oraz w dniach 1, 3, 5, 7 i 10 po operacji. Szczury z wynikami Zea Longa i MAS ≥1 w 3. dniu po operacji były uważane za szczury z ustanowionym sukcesywnym modelem PSS.
Leczenie MSSA
Interwencje rozpoczęły się w 3. dniu pooperacyjnym. Miejscem stymulacji igłowej skóry głowy była linii MS 6 po stronie zmian (przednia skośna linia parieto-temporalna). Zgodnie z Krajowym Standardem Znormalizowanych Manipulacji Igłowymi na Skórze Głowy (GB/T 21709.2-2021), linia MS 6 rozciąga się od GV 21 (Qianding) do GB 6 (Xuanli).
Sterylne igły akupunkturowe jednorazowego użytku (0,25 x 13 mm) były wstawiane pod galea aponeurotica w punkcie GV 21 pod kątem około 15° względem powierzchni skóry głowy i zaawansowane w kierunku GB 6 wzdłuż przedniej skośnej linii parieto-temporalnej do głębokości około 10 mm. Szybka manipulacja wirująca (200 obrotów/min) była stosowana ciągle przez 1 min. Po 15 min zatrzymania igieł, ta sama manipulacja wirująca była powtarzana raz jeszcze, co dawało łączny czas zatrzy