Identyfikacja genów wspólnych, analiza wzbogacenia i konstrukcja sieci PPI
Z zestawu danych GSE54837 zidentyfikowano 3 371 DEG, w tym 1 675 DEG o zwiększonej ekspresji i 1 696 DEG o zmniejszonej ekspresji. 10 genów o najistotniejszej regulacji w górę i w dół przedstawiono na Rysunku 1A. Przeprowadzono hierarchiczną analizę skupień danych GSE54837 (Rysunek dodatkowy 1A), a w celu zapewnienia bezskalowej topologii sieci zastosowano miękki parametr progowy równy 10 (Rysunek 1B). Moduły koekspresji genów skonstruowano metodą dynamicznego cięcia drzewa (dynamic tree cut) przy minimalnej wielkości modułu wynoszącej 50 genów, a każdemu modułowi przypisano odrębny kolor (Rysunek dodatkowy 1B). Moduły o korelacji eigengenów > 0,75 zostały następnie połączone (Rysunek dodatkowy 1C, Rysunek 1C), co doprowadziło do uzyskania 14 odrębnych modułów. Na podstawie analizy korelacji Pearsona między eigengenami modułów a cechami klinicznymi, moduł MEsalmon (obejmujący 5 226 genów) wykazał najistotniejszą dodatnią korelację z COPD (r = 0,35, p = 7 x 10⁻8, Rysunek 1D). Analiza Venna wykazała 160 wspólnych genów spośród 3 371 DEG, 5 226 genów modułu MEsalmon i 2 118 ac4C-RG (Rysunek 1E). Analiza wzbogacenia funkcjonalnego tych 160 genów wykazała, że istotne terminy GO obejmowały wiązanie jednoniciowego RNA, regulację procesu metabolicznego mRNA oraz szlak sygnałowy RIG-I (Rysunek 1F). Ponadto analiza KEGG wykazała, że geny te były przede wszystkim wzbogacone w fagocytozę zależną od receptora Fc gamma R, szlak nadzoru mRNA oraz adhezję ogniskową (Rysunek 1G). Sieć PPI wspólnych genów zawierała 118 węzłów i 196 krawędzi (Rysunek 1H).
Identyfikacja sześciu kluczowych genów w POChP
Aby dalej zidentyfikować potencjalne kluczowe geny spośród 160 wspólnych kandydatów, zastosowano trzy algorytmy uczenia maszynowego. W pierwszej kolejności przeprowadzono regresję LASSO, wykorzystując walidację krzyżową do wyznaczenia optymalnego parametru kary (λ) ≈ 0,091 (Rysunek 2A). Wykres profilu współczynników wskazał, że przy optymalnej wartości λ zachowano 17 genów (Rysunek 2B). Analiza XGBoost pozwoliła zidentyfikować 30 genów z najwyższym wzmocnieniem (gain), wśród których PTRF, WBP11 i LDOC1L wykazały wysoką wartość prognostyczną (Rysunek 2C). Algorytm RF w podobny sposób uszeregował 30 najważniejszych genów według ich wskaźników istotności Gini, gdzie wśród najbardziej prognostycznych znalazły się PTRF, RFX5 i PRKCDBP (Rysunek 2D). Analiza części wspólnej genów wybranych trzema metodami pozwoliła zidentyfikować sześć kluczowych genów wspólnych: PTRF, PRKCDBP, UPP1, TOR3A, FAM168B i B4GALT2 (Rysunek 2E).
Konstrukcja modelu diagnostycznego i analiza ekspresji kluczowych genów
Wykorzystując 70% zbioru danych GSE54837 jako zestaw treningowy, opracowano model regresji logistycznej obejmujący sześć kluczowych genów. Analiza krzywej ROC wykazała umiarkowaną wydajność diagnostyczną, z wartościami AUC wynoszącymi odpowiednio 0,766 (95% CI: 0,691–0,8417), 0,759 (95% CI: 0,6368–0,8817) oraz 0,723 (95% CI: 0,6085–0,8596) dla zestawu treningowego, wewnętrznego zestawu testowego i zewnętrznego zestawu walidacyjnego (Rycina 3A–C). Analiza kalibracji potwierdziła wysoką niezawodność, a DCA wskazała na wyraźną netto korzyść kliniczną dla szerokiego zakresu prawdopodobieństw progowych zarówno w zestawach treningowych (Rycina 3D–E), jak i walidacyjnych (Rycina 3F–G). Skonstruowano nomogram w celu wizualizacji wkładu każdego genu i ułatwienia indywidualnej oceny ryzyka (Rycina 3H). Analiza ekspresji wykazała, że B4GALT2, PRKCDBP i UPP1 były znacząco upregulowane w próbkach z COPD, podczas gdy FAM168B, PTRF i TOR3A były downregulowane (Rycina 3I).
Sieć regulacyjna i analiza funkcjonalna kluczowych genów w POChS
Za pomocą analizy GeneMANIA skonstruowano funkcjonalną sieć interakcji obejmującą 20 genów najsilniej powiązanych z zidentyfikowanymi genami hub (Rycyna 4A). Większość połączeń stanowiły interakcje fizyczne, a następnie korelacje koekspresji oraz wspólne domeny białkowe. Adnotacja funkcjonalna wykazała istotne wzbogacenie w procesach takich jak kataboliczny proces małych cząsteczek zawierających nukleobazy, proces kataboliczny nukleozydów oraz tratwy błony plazmatycznej. Regulację potranskrypcyjną zbadano poprzez przecięcie predykcji miRNA z baz danych DIANA-microT oraz miRanda, co pozwoliło na zidentyfikowanie ośmiu nakładających się miRNA (Rycyna 4B). Następnie skonstruowano oś regulacyjną lncRNA-miRNA-mRNA. Zgodnie z diagramem Sankeya dwa zidentyfikowane miRNA, oba związane z regulacją FAM168B, miały być celem siedmiu lncRNA; w przypadku pozostałych pięciu genów hub nie zidentyfikowano takich interakcji regulacyjnych (Rycyna 4C). Regulację transkrypcyjną zgłębiono dalej przy użyciu platformy ChEA3, która przewidziała nadrzędne czynniki transkrypcyjne (TFs) dla B4GALT2, UPP1, FAM168B oraz TOR3A. Wybrano dziesięć najważniejszych TFs dla każdego genu w celu konstrukcji sieci regulacyjnej TF-cel (Rycyna 4D). Przeprowadzono analizę GSEA, aby zbadać funkcje biologiczne sześciu kluczowych genów. UPP1 był istotnie wzbogacony w procesach biologicznych, takich jak proces metaboliczny diacyloglicerolu i biosyntetyczny proces trifosforanów nukleozydów purynowych, a także w szlakach obejmujących proteasom i metabolizm ksenobiotyków przez cytochrom P450 (Rycyna 4E–F). Wyniki wzbogacenia dla pozostałych pięciu kluczowych genów przedstawiono w Rycynie uzupełniającej 2A–J.
Infiltracja immunologiczna UPP1 i przewidywanie celów terapeutycznych w POChP
Poziomy infiltracji 28 typów komórek odpornościowych w grupach kontrolnej i z POChP oceniono za pomocą algorytmu ssGSEA. U pacjentów z POChP komórki B pamięci, mieloidalne komórki supresorowe oraz aktywowane komórki dendrytyczne wykazały istotnie wyższe wyniki wzbogacenia. W przeciwieństwie do nich, komórki T pomocnicze typu 1, aktywowane komórki B oraz niedojrzałe komórki B wykazały istotnie niższe wyniki wzbogacenia (Rysunek 5A). Należy zauważyć, że ssGSEA dostarcza względnych szacunków wzbogacenia komórek odpornościowych na podstawie danych transkryptomicznych, a nie bezpośrednich pomiarów proporcji komórek odpornościowych. Analiza korelacji wykazała, że sześć kluczowych genów wykazywało zróżnicowane wzorce powiązań z podzbiorami komórek odpornościowych. Konkretnie, UPP1, PRKCDBP i B4GALT2 korelowały dodatnio z poziomami infiltracji komórek B pamięci, aktywowanych komórek dendrytycznych i mieloidalnych komórek supresorowych (Spearman ρ > 0,4, p < 0,05), podczas gdy PTRF, TOR3A i FAM168B wykazały korelacje ujemne z komórkami T pomocniczymi typu 1 i aktywowanymi komórkami B (Spearman ρ < −0,3, p < 0,05). Pełna macierz korelacji została przedstawiona na mapie ciepła (Rysunek 5B). Analiza predykcji leków zidentyfikowała UPP1 jako jedyny gen spośród sześciu kandydatów z przewidywanymi interakcjami z małymi cząsteczkami. W bazie danych zidentyfikowano trzy związki, w tym fluorouracyl, kapecytabinę i 5-benzyloacylo-urydynę, jako potencjalne związki oddziałujące z UPP1 (Rysunek 5C). Związki te są stosowane głównie w onkologii lub w warunkach eksperymentalnych, a ich znaczenie w POChP wymaga dalszych badań. Obliczenia wolnej energii wiązania wykazały, że 5-benzyloacylo-urydyna wykazywała najsilniejsze powinowactwo wiązania, co sugeruje stosunkowo wyższe przewidywane powinowactwo wiązania (Tabela 3). Wizualizacje dokowania molekularnego dla wszystkich trzech związków wskazały na korzystne przewidywane konformacje wiązania z UPP1, co jest zgodne z obliczeniowymi predykcjami dokowania, a nie z walidacją eksperymentalną (Rysunek 5D–F). Ponadto analiza CTD wykazała, że wszystkie sześć kluczowych genów było silnie powiązanych z różnymi fenotypami chorób, w tym z odroczonymi skutkami ekspozycji prenatalnej, utratą masy ciała, hepatomegalią i stanami zapalnymi (Rysunek 5G–L).
Walidacja RT-qPCR kluczowych genów diagnostycznych w próbkach klinicznych
W celu walidacji poziomów ekspresji kluczowych genów pobrano próbki krwi od ośmiu pacjentów z POChP oraz ośmiu osób z grupy kontrolnej; analiza ta została uznana za wstępną walidację ze względu na ograniczoną wielkość próby. Jak pokazano na Ryc. 6A–F, ekspresja genów PTRF, TOR3A i FAM168B była istotnie obniżona, natomiast ekspresja PRKCDBP i UPP1 była istotnie podwyższona w próbkach od pacjentów z POChP, co jest zgodne z trendami zaobserwowanymi w analizie bioinformatycznej. W przeciwieństwie do nich, w przypadku ekspresji B4GALT2 nie zaobserwowano istotnych różnic między obiema grupami. Rozbieżność ta może wynikać z ograniczonej liczby próbek lub różnic w typach próbek pomiędzy zbiorami danych a preparatami klinicznymi.
OŚWIADCZENIE DOTYCZĄCE DOSTĘPNOŚCI DANYCH:
Wszystkie dane z sekwencjonowania RNA pobrano z bazy danych Gene Expression Omnibus (GEO, https://www.ncbi.nlm.nih.gov), przy czym zestaw GSE54837 wybrano jako zbiór treningowy, a GSE112811 jako zbiór walidacyjny. Kod wykorzystany w tej analizie jest dostępny pod adresem https://doi.org/10.5281/zenodo.21771476.

Rysunek 1: Identyfikacja wspólnych genów, analiza wzbogacenia i konstrukcja sieci PPI. (A) Wykres wulkaniczny genów DEG w zbiorze danych GSE54837. (B) Przesiewanie miękkiego progu. (C) Dendrogram klastrowania modułów (po scaleniu). (D) Mapa ciepła korelacji między modułami a cechami. (E) Diagram Venna służący do identyfikacji wspólnych genów. (F) Diagram Mulberry analizy wzbogacenia GO, przedstawiający główne wyniki wzbogacenia genów wspólnych w kategoriach MF, CC i BP. (G) Diagram lollipop analizy wzbogacenia szlaków sygnalizacyjnych KEGG, gdzie rozmiar bąbelka reprezentuje liczbę wzbogaconych genów. (H) Sieć PPI genów wspólnych; węzły reprezentują białka, a krawędzie reprezentują oddziaływania białko-białko. Skróty: DEGs = geny o różnej ekspresji; PPI = oddziaływanie białko-białko; GO = Gene Ontology; MF = funkcja molekularna; CC = komponent komórkowy; BP = proces biologiczny; KEGG = Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes; ac4C-RGs = geny związane z N4-acetylcytydyną. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.

Rysunek 2: Identyfikacja sześciu kluczowych genów w COPD. (A) Krzywa walidacji krzyżowej LASSO. (B) Diagram ścieżki współczynników regresji LASSO. Wraz ze wzrostem λ współczynniki nieistotnych genów zbiegają do 0. (C) Ranking istotności cech XGBoost. Oś x reprezentuje wartość zysku (gain), oś y reprezentuje nazwę genu, a głębokość koloru reprezentuje istotność. (D) Ranking istotności cech RF. Oś x reprezentuje średni spadek współczynnika Giniego. (E) Diagram Venna nakładających się genów uzyskanych poprzez analizę krzyżową trzech algorytmów. Skróty: LASSO = least absolute shrinkage and selection operator; XGBoost = extreme gradient boosting; RF = random forest. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.

Rycina 3: Konstrukcja modelu diagnostycznego i analiza ekspresji kluczowych genów. (A) Krzywa ROC zestawu treningowego. (B) Krzywa ROC wewnętrznego zestawu testowego. (C) Krzywa ROC zewnętrznego zestawu walidacyjnego. (D) Krzywa kalibracyjna zestawu treningowego. (E) DCA zestawu treningowego. (F) Krzywa kalibracyjna zewnętrznego zestawu walidacyjnego. (G) DCA zewnętrznego zestawu walidacyjnego. (H) Nomogram sześciu kluczowych genów. W celu przewidzenia indywidualnego ryzyka COPD, każdemu genowi przypisana jest odpowiednia punktacja. (I) Analiza ekspresji sześciu kluczowych genów w próbkach z COPD i próbkach kontrolnych z zestawu danych GSE54837. Skróty: ROC = charakterystyka operacyjna odbiornika; AUC = pole pod krzywą; DCA = analiza krzywych decyzyjnych; COPD = przewlekła obturacyjna choroba płuc. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

Rysunek 4: Sieć regulacyjna i znaczenie funkcjonalne kluczowych genów w POChP. (A) Wyniki analizy GeneMANIA dla 6 kluczowych genów. Kolor linii wskazuje korelację między genami, a kolor węzłów oznacza różne kategorie funkcjonalne. (B) Diagram Venna z analizy krzyżowej baz danych DIANA-microT i miRanda. (C) Diagram Sankeya dla sieci regulacyjnej ceRNA. (D) Potencjalna sieć regulacyjna czynników transkrypcyjnych. Niebieskie węzły reprezentują czynniki transkrypcyjne, a pomarańczowe węzły reprezentują geny docelowe. (E) Analiza wzbogacenia GSEA pojedynczego genu UPP1, w tym GO. (F) Analiza wzbogacenia GSEA pojedynczego genu UPP1, w tym KEGG. Skróty: GO = Gene Ontology; KEGG = Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes. Kliknij tutaj, aby zobaczyć powiększoną wersję tego rysunku.

Rysunek 5: Infiltracja immunologiczna kluczowych genów i przewidywanie celów terapeutycznych w POChS. (A) Różnice w liczebności komórek odpornościowych pomiędzy grupami. (B) Mapa ciepła korelacji między komórkami odpornościowymi a kluczowymi genami. (C) Sieć interakcji między kluczowymi genami a przewidywanymi lekami. (D) Dokowanie molekularne 5-fluorouracylu z UPP1. (E) Dokowanie molekularne kapecytabiny z UPP1. (F) Dokowanie molekularne 5-benzylacylo-urydyny z UPP1. Dla każdego związku obraz po lewej stronie przedstawia ogólną konformację dokowania, a obraz po prawej stronie pokazuje lokalne interakcje wiązania. (G) Analiza CTD dla B4GALT2. (H) Analiza CTD dla FAM168B. (I) Analiza CTD dla PRKCDBP. (J) Analiza CTD dla PTRF. (K) Analiza CTD dla TOR3A. (L) Analiza CTD dla UPP1. Prosimy kliknąć tutaj, aby wyświetlić większą wersję tego rysunku.

Rycina 6: Walidacja RT-qPCR ekspresji kluczowych genów w próbkach z POChP i kontrolnych. (A) Względna ekspresja PTRF. (B) Względna ekspresja PRKCDBP. (C) Względna ekspresja UPP1. (D) Względna ekspresja TOR3A. (E) Względna ekspresja FAM168B. (F) Względna ekspresja B4GALT2. ns = brak istotności, p > 0.05; * p < 0.05; ** p < 0.01; *** p < 0.001; **** p < 0.0001. Skrót: RT-qPCR = ilościowa reakcja polimerazy w łańcuchu z odwrotną transkrypcją. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.
Rycina uzupełniająca 1: Próbki zbioru danych GSE54837 oraz klastrowanie modułów genowych. (A) Diagram klastrowania próbek ze zbioru danych GSE54837. (B) Dendrogram klastrowania modułów przed scaleniem. Geny zostały pogrupowane przy użyciu metody dynamic tree cut w celu zidentyfikowania odrębnych modułów. (C) Dendrogram klastrowania hierarchicznego eigengenów modułów. Moduły o podobnych wzorcach ekspresji zostały zgrupowane na podstawie podobieństwa ich eigengenów.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Rycina dodatkowa 2: Analiza wzbogacenia GSEA. (A) Analiza GO dla PRKCDBP. (B) Analiza KEGG dla PRKCDBP. (C) Analiza GO dla PTRF. (D) Analiza KEGG dla PTRF. (E) Analiza GO dla TOR3A. (F) Analiza KEGG dla TOR3A. (G) Analiza GO dla FAM168B. (H) Analiza KEGG dla FAM168B. (I) Analiza GO dla B4GALT2. (J) Analiza KEGG dla B4GALT2. Skróty: GO = Gene Ontology; KEGG = Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
| Zbiór danych | Kontrole | Pacjenci | Platforma sekwencjonowania |
| GSE54837 | 90 | 136 | GPL570 |
| GSE112811 | 44 | 20 | GPL570 |
Tabela 1: Zbiory danych ekspresji genów wykorzystane w badaniu. Charakterystyka zbiorów danych GSE54837 i GSE112811 wykorzystanych odpowiednio do opracowania modelu/testów wewnętrznych oraz walidacji zewnętrznej.
| Pacjent | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 |
| Płeć (K/M) | M | M | M | F | M | M | M | M |
| Wiek (lata) | 69 | 72 | 75 | 73 | 68 | 70 | 69 | 71 |
| Status palenia | Tak | Tak | Rzucenie palenia (2 lata) | Nie | Tak | Tak | Tak | Rzucenie palenia (5 lat) |
| Palenie w paczkopeach | 20 dziennie / 30 lat | 15 na dzień / 35 lat | 20 dziennie / 50 lat | | 20 dziennie / 40 lat | 30 dziennie / 40 lat | 15 na dzień / 40 lat | 20 dziennie / 30 lat |
| grupa z POChP | 2 | 3 | 3 | 2 | 2 | 3 | 2 | 3 |
Tabela 2: Charakterystyka wyjściowa uczestników badania.Demograficzna i kliniczna charakterystyka wyjściowa pacjentów z COPD oraz zdrowych osób kontrolnych włączonych do walidacji metodą RT-qPCR.
| Nazwa cząsteczkowa | Gen | Wynik (kcal/mol) |
| 5-benzylacylo-urydyna | UPP1 | -9.6 |
| Kapecytabina | UPP1 | -6.1 |
| Fluoruracyl | UPP1 | -5.5 |
Tabela 3: Wyniki dokowania molekularnego dla UPP1 i związków kandydackich.
Przewidywane wyniki dokowania molekularnego dla oddziaływań UPP1 z fluorouracylem, kapecytabiną i 5-benzyloacylo-urydyną, wraz z ich powinowactwami wiązania.