Identyfikacja i adnotacja funkcjonalna genów współwyrażanych w procesach kuproptozy i ferroptozy
Zintegrowano cztery zestawy danych treningowych obejmujące 421 próbek UC oraz 97 zdrowych kontroli. Zidentyfikowano łącznie 551 genów o zróżnicowanej ekspresji, w tym 362 genów o zwiększonej i 189 genów o zmniejszonej ekspresji. Analiza korelacji wykazała 444 genów skorelowanych z ferroptozą i kuproptozą, a ich część wspólna z genami o zróżnicowanej ekspresji pozwoliła wyłonić 32 współwyrażonych genów o zróżnicowanej ekspresji związanych z kuproptozą i ferroptozą (CF-DEGs).
32 CF-DEG były wzbogacone w odpowiedzi na zranienie, jony miedzi, transport kwasów tłuszczowych, lipopolisacharyd, nieswoiste zapalenie jelit, sygnalizację NF-κB, sygnalizację TNF oraz ferroptozę (Tabela uzupełniająca 4).
Priorytetyzacja kluczowych biomarkerów poprzez zintegrowane uczenie maszynowe i WGCNA
Analiza ważonej sieci koekspresji genów (WGCNA) wykazała, że moduły MEpurple, MEbrown i MEblack są najsilniej powiązane z UC. Wybrane moduły zawierały łącznie 1 426 genów (Tabela uzupełniająca 5).
Metody least absolute shrinkage and selection operator (LASSO), support vector machine–recursive feature elimination (SVM-RFE) oraz random forest wyłoniły odpowiednio 21, 32 i 19 cech. Trzynaście genów było wspólnych dla wszystkich trzech modeli. Integracja konsensusu uczenia maszynowego, rdzenia oddziaływań białko-białko uszeregowanego przez CytoHubba oraz wybranych modułów WGCNA pozwoliła wyłonić pięć potencjalnych biomarkerów związanych z UC: LCN2, IDO1, CXCL2, NOS2 oraz CD274.
Ocena diagnostyczna i wzbogacenie szlaków sygnatury biomarkerów
Wszystkie pięć kandydackich biomarkerów wykazało dodatnią korelację i podwyższony poziom w przypadku UC w kohorcie treningowej (Rysunek 2A, B). Każdy marker osiągnął pole pod krzywą charakterystyki ROC > 0,80 w kohorcie treningowej oraz > 0,75 w niezależnej kohorcie walidacyjnej GSE47908 (Rysunek 2C–E).
Nomogram oparty na pięciu genach wykazał korzystną kalibrację, z wartością P testu Hosmera–Lemeshow > 0,05 oraz średnim błędem absolutnym < 0,1, a także dobrą dyskryminację w analizowanej kohorcie, z polem pod krzywą i indeksem zgodności wynoszącymi 0,945 oraz 95% przedziałem ufności dla indeksu zgodności wynoszącym 0,922–0,968 (Rysunek 3).
Analiza wzbogacenia zestawów genów powiązała pięć kandydatów ze szlakami sygnalizacyjnymi JAK–STAT, interferon–RIPK1/3 oraz Toll-like receptor–NF-κB (Rysunek 4).

Rycina 2: Ekspresja potencjalnych biomarkerów i ich skuteczność diagnostyczna. (A) Mapa ciepła korelacji. (B, C) Ekspresja biomarkerów i krzywe charakterystyki operacyjnej odbiornika (ROC) w kohorcie treningowej. (D, E) Ekspresja biomarkerów i krzywe charakterystyki operacyjnej odbiornika (ROC) w kohorcie walidacyjnej GSE47908. ROC: charakterystyka operacyjna odbiornika; AUC: powierzchnia pod krzywą; UC: wrzodziejące zapalenie jelita grubego. Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tej ryciny.

Rycina 3: Opracowanie i ocena nomogramu UC. (A) Nomogram pięciu genów. (B) Wykres kalibracyjny. (C) Krzywa charakterystyki operacyjnej odbiornika. ROC: receiver operating characteristic; UC: ulcerative colitis; AUC: area under the curve; C-index: concordance index. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

Rycina 4: Analiza wzbogacenia zestawów genów dla pięciu potencjalnych biomarkerów. (A–E) Wyniki analizy wzbogacenia zestawów genów odpowiednio dla LCN2, IDO1, CXCL2, NOS2 i CD274. GSEA: analiza wzbogacenia zestawów genów (gene set enrichment analysis). Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.
Analiza krajobrazu mikrośrodowiska immunologicznego i sieci regulacyjnych
W próbkach UC odnotowano zwiększony odsetek neutrofili, aktywowanych komórek T pamięci CD4⁺, makrofagów M1 oraz aktywowanych komórek tucznych, przy jednoczesnym spadku liczby makrofagów M2, spoczynkowych komórek tucznych oraz spoczynkowych komórek dendrytycznych. Wzorce te zostały powtórzone w kohorcie walidacyjnej (Rycina 5A–E).
Pięć kandydatów korelowało dodatnio z neutrofilami, aktywowanymi komórkami T pamięci CD4⁺ oraz makrofagami M1, a odwrotnie z spoczynkowymi komórkami tucznymi i makrofagami M2 (Rysunek 5F–J). Sieć gen-miRNA zawierała 98 węzłów i 146 krawędzi. hsa-miR-34a-5p oraz hsa-miR-16-5p wykazywały najwyższą łączność biomarkerów, natomiast AR i RELA były najlepiej połączonymi czynnikami transkrypcyjnymi (Rysunek 6).

Rycina 5: Analiza infiltracji immunologicznej. (A) Skład komórek odpornościowych. (B) Różnice w proporcjach komórek odpornościowych między grupami. (C) Mapa ciepła korelacji komórek odpornościowych. (D, E) Infiltracja komórek odpornościowych w kohortach treningowej i walidacyjnej. (F–J) Korelacje między potencjalnymi biomarkerami a populacjami komórek odpornościowych. UC: wrzodziejące zapalenie jelita grubego. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

Rycina 6: Przewidywane sieci miRNA i czynników transkrypcyjnych. (A) Sieć gen–miRNA. Koła oznaczają potencjalne biomarkery, a kwadraty oznaczają miRNA. (B) Sieć czynnik transkrypcyjny–gen. Rąby oznaczają potencjalne biomarkery, a odwrócone trójkąty oznaczają czynniki transkrypcyjne. miRNA: mikroRNA; TF: czynnik transkrypcyjny. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.
Dynamika ekspresji czasowo-przestrzennej w rozdzielczości pojedynczych komórek
Po kontroli jakości 31 712 komórek utworzyło 22 klastry, które zinterpretowano jako dziewięć głównych populacji komórek (Rysunek 7A–C). Proporcje komórek nabłonkowych i plazmocytów były wyższe w przypadku UC. LCN2 i NOS2 były wzbogacone w komórkach nabłonkowych, natomiast IDO1, CXCL2 i CD274 były wzbogacone w komórkach mieloidalnych (Rysunek 7D–G).
Subklastrowanie komórek nabłonkowych zidentyfikowało 11 podzbiorów, z ekspansją zapalnych kolonocytów oraz wzbogaceniem o LCN2 i NOS2 w tym podzbiorze (Rysunek 8). Subklastrowanie komórek mieloidalnych zidentyfikowało siedem podzbiorów, z zwiększoną liczbą monocytów, zmniejszoną liczbą makrofagów oraz wzbogaceniem o IDO1, CXCL2 i CD274 w monocytach (Rysunek 9).
Zapalnie zmienione kolonocyty gromadziły się w późnej fazie trajektorii nabłonkowej, wykazując zwiększoną ekspresję LCN2 i NOS2 (Rycina 10). Monocyty wykazały odrębną trajektorię związaną z UC, z dynamiczną ekspresją IDO1, CXCL2 i CD274 (Rycina 11).
Kolonocyty zapalne wykazały najsilniejszą sygnalizację wychodzącą i wyraźną komunikację z monocytami. APP–CD74 była główną parą ligand-receptor pomiędzy tymi podgrupami (Rysunek 12).

Rysunek 7: Ekspresja potencjalnych biomarkerów w populacjach komórek. (A) Klastry komórkowe. (B) Markery adnotacyjne. (C) Dziewięć adnotowanych populacji komórek. (D, E) Rozkłady i proporcje komórek w próbkach zdrowych i z UC. (F, G) Ekspresja potencjalnych biomarkerów zwizualizowana za pomocą UMAP i wykresu pęcherzykowego. UC: colitis ulcerative (wrzodziejące zapalenie jelita grubego); UMAP: uniform manifold approximation and projection. Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tego rysunku.

Rysunek 8: Subklastrowanie komórek nabłonkowych i ekspresja kandydacka. (A) Początkowe klastry komórek nabłonkowych. (B) Markery adnotacji. (C) Adnotowane podzbiory komórek nabłonkowych. (D) Proporcje podzbiorów w próbkach zdrowych i z UC. (E) Ekspresja LCN2 i NOS2 w podzbiorach komórek nabłonkowych. t-SNE: t-distributed stochastic neighbor embedding; UC: ulcerative colitis. Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tego rysunku.

Rysunek 9: Subklasteryzacja komórek mieloidalnych i ekspresja kandydatów. (A) Początkowe klastry komórek mieloidalnych. (B) Markery adnotacji. (C) Adnotowane podgrupy komórek mieloidalnych. (D) Proporcje podgrup w próbkach zdrowych i z UC. (E) Ekspresja IDO1, CXCL2 i CD274 w podgrupach komórek mieloidalnych. t-SNE: t-distributed stochastic neighbor embedding; UC: wrzodziejące zapalenie jelita grubego. Aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku, kliknij tutaj.

Rycina 10: Analiza pseudoczasu komórek nabłonkowych. (A) Trajektoria pseudoczasu i przypisania stanów. (B) Rozkład zdrowych komórek nabłonkowych i komórek nabłonkowych z UC wzdłuż trajektorii. (C) Dynamika ekspresji LCN2 i NOS2 wzdłuż pseudoczasu. UC: wrzodziejące zapalenie jelita grubego. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

Rysunek 11: Analiza pseudoczasu komórek mieloidalnych. (A) Trajektoria pseudoczasu i przypisanie stanów. (B) Rozkład zdrowych komórek mieloidalnych oraz komórek mieloidalnych z UC wzdłuż trajektorii. (C) Dynamika ekspresji IDO1, CXCL2 i CD274 wzdłuż pseudoczasu. UC: wrzodziejące zapalenie jelita grubego. Kliknij tutaj, aby zobaczyć powiększoną wersję tego rysunku.

Rycina 12: Komunikacja nabłonkowa–mieloidalna. (A) Liczba i siła oddziaływań. (B) Siła sygnałów wychodzących i przychodzących. (C) Oddziaływania z udziałem zapalnych kolonocytów. (D) Mapa ciepła siły komunikacji. (E) Pary ligand–receptor z udziałem zapalnych kolonocytów. Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tej ryciny.
In vitro walidacja eksperymentalna interwencji w procesy ferroptozy i kuproptozy
Ekspozycja na lipopolisacharyd (LPS) zmniejszyła żywotność komórek Caco-2 i zwiększyła ekspresję IL-6 oraz IL-1β w porównaniu do kontroli nośnika (Rysunek 13A–C oraz Rysunek uzupełniający 5).
LPS zwiększył poziom Fe2⁺, malondialdehydu oraz obfitość mRNA LCN2, IDO1, CXCL2 i NOS2, natomiast ferrostatin-1 odwrócił każdą ze zmian powiązanych z LPS (Rysunek 13D–I). W porównaniach LPS versus LPS + ferrostatin-1, dokładne dwustronne wartości P mieściły się w zakresie od 9,45 × 10⁻5 do 0,0027 po uśrednieniu powtórzeń technicznych w obrębie każdego powtórzenia biologicznego.
LPS zmniejszył żywotność oraz zwiększył poziom IL-6, IL-1β, FDX1/DLAT, CD274 i fluorescencję wrażliwą na miedź, podczas gdy tetratiomolibdan odwrócił te zmiany (Rysunek 14 A–E). W przypadku porównań LPS versus LPS + tetratiomolibdan, dokładne dwustronne wartości P mieściły się w zakresie od < 1 × 10⁻15 do 0,0008.
Przeprowadzone analizy pozwoliły na zidentyfikowanie pięciu potencjalnych markerów diagnostycznych związanych z UC, zlokalizowano ich ekspresję w populacjach nabłonkowych i mieloidalnych oraz wykazano, że LCN2, IDO1, CXCL2 i NOS2 reagowały na hamowanie ferroptozy, podczas gdy CD274 reagował na chelację miedzi w komórkach Caco-2.

Rycina 13: Ferrostatin-1 łagodzi związane z LPS zmiany zapalne i związane z ferroptozą w komórkach Caco-2. (A) Żywotność komórek. (B, C) Ekspresja matrycowego RNA IL-6 i IL-1β. (D, E) Wewnątrzkomórkowe poziomy malondialdehydu i Fe2⁺. (F–I) Ekspresja matrycowego RNA LCN2, IDO1, CXCL2 i NOS2. Średnie z powtórzeń technicznych wyliczono dla każdego niezależnego powtórzenia biologicznego; słupki błędów oznaczają odchylenie standardowe. Dostępna liczba powtórzeń biologicznych wynosiła Control n = 4 w panelach A i C, Control n = 2 w panelu F oraz n = 6 dla wszystkich pozostałych kombinacji paneli/grup. Dokładne dwustronne wartości P oraz weryfikacja założeń zostały przedstawione w Tabeli uzupełniającej 5. Fer-1: ferrostatin-1; LPS: lipopolisacharyd; MDA: malondialdehyd. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

Rysunek 14: Tetratiomolibdat łagodzi zmiany zapalne związane z LPS oraz zmiany związane z kuproptozą w komórkach Caco-2. (A) Przeżywalność komórek. (B, C) Ekspresja matrycowego RNA dla IL-6 i IL-1β. (D) Ekspresja matrycowego RNA dla FDX1 i DLAT. (E) Ekspresja matrycowego RNA dla CD274. (F) Wewnątrzkomórkowa fluorescencja Cu2⁺; pasek skali = 50 µm. Średnie z triplikatów technicznych wyznaczono dla każdego z sześciu niezależnych powtórzeń biologicznych w grupie; słupki błędów wskazują odchylenie standardowe. Dokładne dwustronne wartości P oraz weryfikacja założeń są przedstawione w Tabeli uzupełniającej 5. TTM: tetratiomolibdat; LPS: lipopolisacharyd. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.
Surowe i przetworzone dane, skrypty analiz oraz arkusze źródłowe eksperymentów komórkowych są publicznie dostępne pod adresem https://doi.org/10.5281/zenodo.21202720.
Rysunek uzupełniający 1: Wstępne przetwarzanie danych i diagnostyka ekspresji różnicowej. (A–F) Rozkłady próbek przed (A–C) i po (D–F) korekcie efektu serii. (G) Wykres wulkaniczny genów o różnej ekspresji. (H) Mapa ciepła znormalizowanych wzorców ekspresji. DEGs: geny o różnej ekspresji; GEO: Gene Expression Omnibus.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Rysunek uzupełniający 2: Analiza wzbogacenia CF-DEGs. (A) Wzbogacenie Gene Ontology. (B) Wzbogacenie Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes. CF-DEGs: geny różnicowo wyrażone współwyrażane w procesach kuproptozy i ferroptozy; GO: Gene Ontology; KEGG: Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Rycina uzupełniająca 3: Diagnostyka przesiewowa WGCNA. (A) Wybór miękkiego progu (soft-threshold). (B) Klasteryzacja eigen-genów modułów. (C) Dendrogram gen-moduł. (D) Powiązania moduł–cecha. (E–G) Relacje znaczenia genu/przynależności do modułu dla modułów fioletowego, brązowego i czarnego. WGCNA: weighted gene co-expression network analysis; UC: ulcerative colitis.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Rysunek uzupełniający 4: Wieloetapowe przesiewanie biomarkerów. (A, B) Wybór cech metodą LASSO. (C, D) Wybór cech metodą SVM-RFE. (E, F) Ranking cech metodą Random-forest. (G) Konsensus pomiędzy trzema modelami. (H, I) Sieć PPI i węzły kluczowe CytoHubba. (J) Integracja wyników uczenia maszynowego, WGCNA i PPI. (K) Lokalizacja chromosomalna pięciu kandydatów. LASSO: least absolute shrinkage and selection operator; SVM-RFE: support vector machine–recursive feature elimination; RF: random forest; PPI: protein–protein interaction; WGCNA: weighted gene co-expression network analysis.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Rycina uzupełniająca 5: Walidacja modelu LPS w komórkach Caco-2. (A) Żywotność komórek. (B, C) Ekspresja matrycowego RNA dla IL-6 i IL-1β. Średnie z powtórzeń technicznych obliczono dla sześciu niezależnych powtórzeń biologicznych w każdej grupie; słupki błędu oznaczają odchylenie standardowe. LPS: lipopolisacharyd.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Tabela uzupełniająca 1: Zbiory danych GEO wykorzystane do odkrycia i walidacji. Numery dostępowe do zbiorów danych, platformy, skład próbek i przypisania do kohort dla zbiorów danych GEO uwzględnionych w analizach odkrycia i walidacji. GEO: Gene Expression Omnibus.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Tabela uzupełniająca 2: Sekwencje starterów do ilościowej reakcji PCR z odwrotną transkrypcją. Sekwencje starterów użytych do analizy ilościowej reakcji PCR z odwrotną transkrypcją genów ocenianych w niniejszym badaniu.Prosimy kliknąć tutaj, aby pobrać ten plik.
Tabela uzupełniająca 3: Szczegóły statystyczne dla Rysunków 13, 14 oraz Rysunku uzupełniającego 1. Liczba powtórzeń biologicznych, weryfikacja założeń, metody analizy statystycznej i dokładne wartości P dla wskazanych porównań eksperymentalnych.Proszę kliknąć tutaj, aby pobrać ten plik.
Tabela uzupełniająca 4: Geny różnicowo eksprymowane współwyrażane w procesach kuproptozy i ferroptozy. Lista CF-DEGów zidentyfikowana poprzez wyznaczenie części wspólnej genów skorelowanych z ferroptozą i kuproptozą oraz genów różnicowo eksprymowanych.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Tabela uzupełniająca 5: Geny w modułach WGCNA wybrane do przesiewowego badania biomarkerów. Lista genów zawartych w modułach WGCNA wybranych do późniejszego przesiewowego badania biomarkerów. WGCNA: ważona analiza sieci współekspresji genów.Proszę kliknąć tutaj, aby pobrać ten plik.