Name: Wiedza o tym, co się liczy: bezstronna stereologia w mózgu naczelnych innych niż człowiek (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-05-14T00:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 25 s
Description: Poznaj bezstronną stereologię do szacowania liczby neuronów w mózgu naczelnych. Ta metoda pozwala dokładnie określić populacje komórkowe w zdefiniowanych obszarach mózgu.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Autorzy pragną podziękować Ikielowi Ptito za nieustające wsparcie techniczne. Grant NSERC dla MP.

<ol><li>West, M., Slomianka, L., Gundersen, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unbiased+stereological+estimation+of+the+total+number+of+neurons+in+the+subdivisions+of+the+rat+hippocampus+using+the+optical+fractionator%5BTitle%5D)+AND+%22Aat+Rec%22%5BJournal%5D)">Unbiased stereological estimation of the total number of neurons in the subdivisions of the rat hippocampus using the optical fractionator.</a> Aat Rec. 231, 482-497 (1991).</li>
<li>Saper, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Any+way+you+cut+it%3A+a+new+journal+policy+for+the+use+of+unbiased+counting+methods%5BTitle%5D)+AND+%22J+Comp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Any way you cut it: a new journal policy for the use of unbiased counting methods.</a> J Comp Neurol. 364, 5-5 (1996).</li>
<li>Sterio, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+unbiased+estimation+of+number+and+sizes+of+arbitrary+particles+using+the+disector%5BTitle%5D)+AND+%22J+Microsc%22%5BJournal%5D)">The unbiased estimation of number and sizes of arbitrary particles using the disector.</a> J Microsc. 134, 127-136 (1984).</li>
<li>Mouton, P. R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMouton%2C+PR+%22Principles+and+Practices+of+Unbiased+Stereology%22">Principles and Practices of Unbiased Stereology</a>. , The Johns Hopkins University Press. Baltimore. (2002).</li>
<li>Burke, M. W., Zangenehpour, S., Boire, D., Ptito, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissecting+the+non-human+primate+brain+in+stereotaxic+space%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Dissecting the non-human primate brain in stereotaxic space.</a> J Vis Exp. 29, (2009).</li>
<li>Burke, M. W., Zangenehpour, S., Boire, D., Ptito, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Brain+banking%3A+Making+the+most+of+your+research%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Brain banking: Making the most of your research.</a> J Vis Exp. 29, (2009).</li>
<li>Manaye, K. F., Wang, P., O'Neil, J., Huafu, S., Tizabi, Y., Thompson, N., Ottinger, M. A., Ingram, D. K., Mouton, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuropathological+Quantification+Of+Dtg+APP%2FPS1%3A+Neuroimaging%2C+Stereology%2C+And+Biochemistry%5BTitle%5D)+AND+%22AGE%22%5BJournal%5D)">Neuropathological Quantification Of Dtg APP/PS1: Neuroimaging, Stereology, And Biochemistry.</a> AGE. 29, 87-96 (2009).</li>
<li>Burke, M. W., Palmour, R. M., Ervin, F. R., Ptito, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuronal+reduction+in+frontal+cortex+of+primates+after+prenatal+alcohol+exposure%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroreport%22%5BJournal%5D)">Neuronal reduction in frontal cortex of primates after prenatal alcohol exposure.</a> Neuroreport. 20, 13-17 (2009).</li>
<li>Zangenehpour, S., Burke, M. W., Chaudhuri, A., Ptito, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Batch+immunostaining+for+large-scale+protein+detection+in+the+whole+monkey+brain%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Batch immunostaining for large-scale protein detection in the whole monkey brain.</a> J Vis Exp. 29, (2009).</li>
</ol>

Obiektywna stereologia w mózgu naczelnych jest podobna do tej stosowanej w innych próbkach biologicznych. Jednakże, biorąc pod uwagę rozmiar mózgu naczelnych, zaleca się staranne zaplanowanie procesu, ponieważ pojedyncza półkula małpy werwetkowej daje ponad 1200 sekcji przy cięciu o grubości 50µm. W pierwszej kolejności zalecamy stereotaksyczne dzielenie mózgu na bloki o wymiarach 1cm, co zapewnia standardową płaszczyznę cięcia pomiędzy blokami i osobnikami, minimalizuje liczbę sekcji częściowych pomiędzy blokami oraz za...

<table><tbody><tr><td>Stereologer</td><td>Stereology Resource Center (Chester, MD)</td><td>www.disector.com</td><td></td></tr><tr><td>System Stereology Tool-Kit Stereologer</td><td>BioQuant Life Sciences (Nashville, TN)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>StereoInvestigator</td><td>MBF Bioscience</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

wiedza o tym, co liczy się w analizie: nieobciążona stereologia w mózgu naczelnych zwierząt niebędących ludźmi

Knowing What Counts: Unbiased Stereology in the Non-human Primate Brain

Nieludzkie naczelne stanowią ważny gatunek translacyjny dla zrozumienia prawidłowego funkcjonowania i procesów chorobowych ludzkiego mózgu. Bezośrodkowa stereologia, metoda uznana za najnowocześniejszą w zakresie kwantyfikacji obiektów biologicznych w przekrojach tkanek2generuje wiarygodne dane strukturalne dotyczące cech biologicznych w mózgu ssaków3Kluczowymi elementami tego podejścia są nieobciążone (systematyczno-losowe) próbkowanie struktur zdefiniowanych anatomicznie (przestrzeni referencyjnych), połączone z kwantyfikacją liczby i wielkości komórek, długości włókien i kapilar, powierzchni, objętości regionalnych oraz rozmieszczenia przestrzennego obiektów biologicznych w obrębie przestrzeni referencyjnej4Jedną z zalet tych podejść stereologicznych w porównaniu z poprzednimi metodami jest uniknięcie wszystkich znanych źródeł błędów systematycznych (nielosowych), wynikających z błędnych założeń i nieweryfikowalnych modeli. Niniejsze badanie dokumentuje biologiczne zastosowanie stereologii komputerowej do oszacowania całkowitej populacji neuronów w korze przedczołowej mózgu małpy wierzchołkowej (Chlorocebus aethiops sabeus), przy wsparciu dwóch dostępnych komercyjnie programów stereologicznych: BioQuant Life Sciences oraz Stereologer (Rysunek 1). Oprócz kontrastu i porównania wyników z obu programów BioQuant iStereologersystemy, niniejsze badanie dostarcza szczegółowego protokołu dlaStereologer system

Anatomiczna organizacja mózgu naczelnych może dostarczyć istotnych informacji na temat stanów prawidłowych i patologicznych u ludzi. Obiektywna stereologia jest metodą dokładnego i wydajnego szacowania całkowitej liczby neuronów (lub innego typu komórek) w danym obszarze referencyjnym1.

Wiedza o tym, co liczy się w analizie: nieobciążona stereologia w mózgu naczelnych zwierząt niebędących ludźmi

Nieludzkie naczelne są istotnym gatunkiem translacyjnym w badaniach nad prawidłowym funkcjonowaniem oraz procesami chorobowymi ludzkiego mózgu. Obiektywne...

Procedurę rozpoczyna się od zdefiniowania przestrzeni odniesienia. W wyznaczaniu granic obszaru zainteresowania pomocny może być atlas stereotaksyczny. Następnie należy uporządkować preparaty i określić częstotliwość pobierania przekrojów.Wprowadź pierwszy przekrój przeznaczony do pobierania próbek do mikroskopu i uzupełnij parametry próbkowania. W systemie stereologicznym nad obszarem referencyjnym zostanie umieszczona siatka, a w każdym punkcie przecięcia pobierana będzie próbka za pomocą dysektora optycznego. Po pobraniu wszystkich dysektorów optycznych z każdego przekroju, system stereologiczny dostarczy wyników badania.Dzień dobry, jestem dr Mark Burke z Laboratorium Neuronauk Wizualnych w Szkole Optometrii na Uniwersytecie w Montrealu. Dzień dobry, jestem dr Shaheen Zur, również z Laboratorium Neuronauk Wizualnych w Szkole Optometrii na Uniwersytecie w Montrealu. Witam, jestem dr Morris Petto, dyrektor Laboratorium Neuronauk Wizualnych w Szkole Optometrii na Uniwersytecie w Montrealu.Dzisiaj przedstawimy procedurę przeprowadzania bezstronnej stereotaksji u naczelnych niebędących ludźmi. Stosujemy tę procedurę w naszym laboratorium w celu oszacowania całkowitej liczby populacji neuronów w różnych obszarach mózgu. Zapraszam do rozpoczęcia.Rozpocznij ten protokół od mózgu, który został wcześniej poddany perfuzji. Właściwie, przy użyciu utrwalacza takiego jak paraformaldehyd, mózg powinien zostać zablokowany w przestrzeni stereotaktycznej, poddany krio ochronie i zamrożony. Aby zapoznać się z tymi protokołami szczegółowo, zapoznaj się z naszym ostatnim artykułem w JoVE dotyczącym sekcji mózgu naczelnych niebędących ludźmi.W przestrzeni stereotaktycznej mózg powinien zostać systematycznie pocięty na sekcje tak, aby objęły one cały obszar referencyjny. Aby szczegółowo zapoznać się z tym protokołem, zapraszamy do lektury naszego niedawnego artykułu w JoVE: „Bankowanie mózgów: maksymalne wykorzystanie preparatów badawczych”. W niniejszym eksperymencie wykorzystujemy płat czołowy mózgu małpy werwetowej.Seria składa się z jednej z 10 sekcji wykonanych w obrębie kory, przy grubości cięcia 50 micrometers. W celu obliczenia szacowanej liczby komórek N stosujemy następujące równanie, w którym SSF oznacza ułamek próbkowania sekcji. SF to ułamek próbkowania obszaru.TSF to ułamek próbkowania grubości, w którym zmierzoną grubość tkanki dzieli się przez wysokość dyssektora, a cube to całkowita liczba obiektów będących przedmiotem zainteresowania policzonych w obrębie dyssektora. Aby wyznaczyć ułamek próbkowania przekroju, cała przestrzeń referencyjna musi być dobrze zdefiniowana od przedniej do tylnej oraz od grzbietowej do brzusznej strony. W tym przypadku interesuje nas płat czołowy, który definiujemy jako obszar od czubka bieguna czołowego do zakrętu środkowego i bruzdy bocznej.Z wyłączeniem wyspy w płacie czołowym tego osobnika, systematycznie pobrano łącznie 760 przekrojów, z czego 76 wybarwiono fioletem grzebieniowym. Ponieważ celem było uzyskanie 10 przekrojów w całej przestrzeni referencyjnej, pobrano jeden na sześć przekrojów wybarwionych fioletem grzebieniowym. Skutkuje to frakcją próby przekrojów (SSF) na poziomie około jednego na 60.Zaczynamy od losowego wyboru jednego z pierwszych przekrojów barwionych fioletem krystalicznym, a następnie systematycznie pobieramy próbki z pozostałych sekcji w odstępach co sześć. W ten sposób dla wybranego obiektu pobieranych jest łącznie 13 przekrojów. Aby uniknąć błędów wynikających z pomyłek w rozpoznawaniu, konieczne jest stosowanie standardowej definicji dla danej cechy biologicznej będącej przedmiotem badania.W niniejszej pracy skupiliśmy się na zliczaniu neuronów, definiując neuron jako komórkę posiadającą widoczne, centralnie położone jądro oraz wyraźnie zarysowaną cytoplazmę. W badaniu wykorzystano system Stereo, który jest komputerowym systemem stereologii. System ten prowadzi użytkownika przez proces wprowadzania niezbędnych informacji w sposób krok po kroku.W sekcji informacji o badaniu ustalane są parametry badania. Należy wybrać parametr objętości, aby zdefiniować przestrzeń odniesienia dla badania. Można tutaj również wybrać objętość obiektu, aby oszacować objętość ważoną liczbą dla populacji interesujących obiektów.W tym przypadku wybrano wyłącznie objętość przestrzeni referencyjnej. Dla każdego obiektu należy wybrać liczbę i zdefiniować cechę, która w tym przypadku są to neurony. Aby określić informacje dotyczące próbkowania, należy wprowadzić interwał próbkowania warstw.Jeśli oddzielne bloki tkanki zostały pocięte w całości, a każdy przekrój ułożono w kolejności sekwencyjnej, należy tutaj wprowadzić liczbę 1. Następnie wprowadź całkowitą liczbę przekrojów wykonanych w materiale referencyjnym, a potem wprowadź interwał próbkowania przekrojów. System obliczy wówczas liczbę przekrojów do pobrania.Aby zdefiniować siatkę i wyciąć obszar o określonym rozmiarze, należy użyć niskiego powiększenia od 2.5 do 10 x. Aby zdefiniować odstępy siatki w menu edycji dla objętości, powiększenie obiektu powinno zostać wykonane przy 100 x. Obszar ramki stanowi rozmiar dysektora.W tym przypadku zastosowano 50%screen. Wysokość ramki odpowiada grubości dyssektora. W tym przykładzie została ona ustawiona na 10 micrometers i określi ona frakcję próbkowania tkanki.Odstępy między ramkami określają rozmiar siatki. W przypadku mniejszych obszarów dla tego obiektu należy zastosować mniejszy rozmiar siatki; w obrębie płata czołowego rozmiar siatki wynoszący 2 500 micrometers pozwala uzyskać średnio 254 dyssektory. Rozmiar dyssektora powinien być taki, aby liczba policzonych obiektów mieściła się w przedziale od zera do pięciu.W przypadku neuronów, do obliczenia ułamka próbkowania powierzchni wykorzystuje się zarówno rozmiar dyssektora, jak i rozmiar siatki. Po ustaleniu parametrów badania można rozpocząć próbkowanie tkanki przy niskim powiększeniu. Program poprosi użytkownika o obrysowanie przestrzeni referencyjnej na preparacie.System nałoży następnie na przekrój siatkę zgodnie z parametrami pro. Siatka ta służy do obliczenia objętości. Następnie użytkownik zweryfikuje, czy punkty znajdują się w obrębie przestrzeni referencyjnej.Jeśli punkt nie znajduje się w obrębie przestrzeni referencyjnej, wystarczy go kliknąć, aby nie został uwzględniony w obliczeniach objętości. Następnie system nałoży nową siatkę na przestrzeń referencyjną zgodnie z parametrami odstępów między klatkami. Przecięcia tej siatki wyznaczają miejsca rozmieszczenia poszczególnych dysektorów.Następnie należy zweryfikować, czy przecięcia znajdują się w obrębie przestrzeni referencyjnej. System poprosi użytkownika o zmianę obiektywu na taki o większym powiększeniu i przesunięcie stolika do pierwszego dyssektora. W tym momencie system poprosi użytkownika o zdefiniowanie górnej i dolnej krawędzi przekroju.Czynność tę wykonuje się w celu wyznaczenia TSF (ułamka próbkowania grubości), a następnie powtarza w każdym miejscu dyssektora. Aby określić zmierzoną grubość, należy przesuwać ostrzenie w płaszczyźnie Z, aż pierwsza komórka stanie się widoczna. Następnie należy nieco cofnąć ostrzenie do górnej krawędzi przekroju, aż pojawi się ostatni obiekt, znajdujący się tuż poza obszarem ostrości.Następnie, aby zlokalizować dno tkanki, należy przesuwać się wzdłuż płaszczyzny Z, aż komórki znajdą się niemal poza zakresem ostrości. Należy zwrócić uwagę, czy komórki są zabarwione na każdej głębokości. W przeciwnym razie może to świadczyć o niepełnej penetracji barwnika lub nierównomiernym odwodnieniu tkanki, w takim przypadku należy powtórzyć sekcjonowanie.Domyślna wysokość dyssektora w tym badaniu wynosi 10 micrometers. Różnica między wysokością dyssektora a zmierzoną grubością przekroju to wysokość strefy ochronnej (guard height), która określa objętość tkanki, w której nie zlicza się cech biologicznych. Następnie system ustawia przestrzeń próbkowania w osi Z.Następnie użytkownik klika na każdy obiekt znajdujący się wewnątrz dyssektora w płaszczyźnie Z. Obiekty stykające się z czerwonymi liniami lub dnem dyssektora nie są liczone. Po policzeniu wszystkich obiektów należy kliknąć Dalej.Służy to do obliczenia całkowitej liczby obiektów. Stół preparatowy przesunie się do kolejnego sekcji i powtórzy poprzednie kroki. Po przeliczeniu wszystkich sekcji w danym przekroju, system poprosi użytkownika o włożenie kolejnego sekwencyjnego przekroju do zbadania.Kroki te będą powtarzane aż do momentu pobrania próbek ze wszystkich sekcji sekwencyjnych. Po zakończeniu system przedstawi obliczenia dla próbkowania obszaru, próbkowania frakcji sekcji, próbkowania frakcji tkanki oraz całkowitej liczby obiektów. Na podstawie tych parametrów system wygeneruje szacowaną objętość referencyjną n oraz współczynnik błędów zarówno dla szacowanej liczby, jak i objętości.Zapewni ono również rekomendacje w celu zwiększenia efektywności lub zmniejszenia współczynnika błędów. Właśnie zaprezentowaliśmy, jak przeprowadzić nieobciążoną stereologię w preparacie biologicznym. Podczas wykonywania tej procedury ważne jest, aby systematycznie pobierać próbki z całej przestrzeni referencyjnej, starannie mierzyć grubość tkanki w każdym dyssektorze optycznym oraz mieć jasno zdefiniowany obiekt zainteresowania.To wszystko. Dziękujemy za obejrzenie i powodzenia w prowadzeniu eksperymentów.

knowing-what-counts-unbiased-stereology-in-the-non-human-primate-brain

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Znajomość tego, co liczy się: Niezaangażowana stereologia w mózgu naczelnych poza człowiekiem

Nieludzkie naczelne są istotnym gatunkiem translacyjnym dla naszego zrozumienia prawidłowych procesów zachodzących w mózgu. Organizacja anatomiczna mózgu naczelnych może dostarczyć ważnych informacji na temat stanów prawidłowych i patologicznych u ludzi.

Disekcja mózgu naczelnych zwierząt niebędących ludźmi w przestrzeni stereotaksycznej

Bankowanie mózgu i systematyczne pobieranie próbek materiału biologicznego stanowią podstawę do bezstronnej stereologii i pozwalają na maksymalne wykorzystanie danych uzyskanych z każdego preparatu.

Bankowanie mózgów: maksymalne wykorzystanie materiału badawczego

Źródło: Olesen, M. V., et al. Technika frakcjonowania optycznego do szacowania liczby komórek w szczurzym modelu terapii elektrowstrząsowej. J. Vis. exp. (2017).  Film demonstruje technikę ilościowego określania nowo wygenerowanych neuronów w tkance mózgowej. Wycinki tkanki hipokampa zawierające neurony znakowane bromodeoksyurydyną (BrdU) wybarwiono za pomocą immunohistochemii, a następnie określono ilościowo na całej grubości tkanki przy użyciu techniki frakcjonowania optycznego.

Kwantyfikacja nowo wygenerowanych neuronów w tkance mózgowej szczura przy użyciu techniki frakcjonowania optycznego

Zorganizowane procedury cięcia mózgu są konieczne, aby skorelować określone zjawiska neuropsychiatryczne z ostatecznymi diagnozami neuropatologicznymi. Cięcia mózgu są wykonywane w różny sposób w zależności od różnych kliniczno-akademickich okoliczności. Protokół ten opisuje symetryczną procedurę dwupółkulowego cięcia mózgu w celu zbadania różnic półkulowych w patologiach ludzkiego mózgu oraz maksymalizacji obecnych i przyszłych technik biomolekularnych/neuroobrazowania.

Symetryczne pośmiertne cięcie mózgu w bihemferze w celu zbadania zdrowych i patologicznych stanów mózgu u ludzi

Ten protokół opisuje zakrojone na szeroką skalę rekonstrukcje selektywnych populacji neuronów, oznaczonych po wstecznym zakażeniu zmodyfikowanym wirusem wścieklizny wyrażającym markery fluorescencyjne, oraz niezależne, bezstronne analizy klastrów, które umożliwiają kompleksową charakterystykę wskaźników morfologicznych wśród różnych podklas neuronów.

Rekonstrukcje na dużą skalę i niezależne, bezstronne grupowanie oparte na wskaźnikach morfologicznych w celu klasyfikacji neuronów w selektywnych populacjach

Tutaj prezentujemy metodę stereologiczną, frakcjonator optyczny, używany do ilościowego określenia powstawania nowych neuronów i ich przeżycia w hipokampie szczura po stymulacji elektrowstrząsowej. Przy prawidłowym wdrożeniu, czułość i wydajność metod stereologicznych zapewnia dokładne oszacowania ze stałą i z góry określoną precyzją.

Technika frakcjonowania optycznego do szacowania liczby komórek w szczurzym modelu terapii elektrowstrząsowej

Ta praca przedstawia krok po kroku protokół bezstronnego stereologicznego szacowania liczby komórek neuronalnych dopaminergicznych w istocie czarnej myszy przy użyciu standardowego sprzętu mikroskopowego (tj. mikroskopu świetlnego, zmotoryzowanej tabeli obiektów (płaszczyzna x, y, z) oraz oprogramowania do cyfrowej analizy obrazu.

Stereologiczne oszacowanie liczby neuronów dopaminergicznych w istocie czarnej myszy przy użyciu frakcjonatora optycznego i standardowego sprzętu mikroskopowego

Opisana poniżej metoda ma na celu dostarczenie kompleksowego protokołu do przygotowania neurochirurgii na naczelnych (NHP) przy użyciu nowatorskiego połączenia metod drukowania trójwymiarowego (3D) i ekstrakcji danych MRI.

Zestaw narzędzi oparty na rezonansie magnetycznym do planowania neurochirurgicznego u naczelnych

Ten protokół opisuje metody przeprowadzania rezonansu magnetycznego, oczyszczania i znakowania immunologicznego nienaruszonych mózgów myszy za pomocą iDISCO+, a następnie szczegółowy opis obrazowania za pomocą mikroskopii świetlnej i dalszych analiz za pomocą NuMorph.

Obrazowanie i analiza pojedynczych komórek całego mózgu nienaruszonych mózgów noworodków myszy za pomocą rezonansu magnetycznego, oczyszczania tkanek i mikroskopii świetlnej

Seryjna tomografia dwufotonowa (STPT) to technika obrazowania masy tkanki w jej trójwymiarowym kształcie poprzez połączenie obrazowania dwufotonowego z automatyczną kontrolą etapu i krojeniem mikrotomów. Tutaj opisujemy protokół jego implementacji dla mózgów marmozet, aby lepiej zrozumieć ich cechy strukturalne.

Seryjna tomografia dwufotonowa całego mózgu marmozety do analiz neuroanatomicznych

Współczesne neurobiologie muszą badać różnice między wieloma gatunkami, w tym gryzoniami laboratoryjnymi i ludźmi. Jednak trudności techniczne pojawiają się, gdy w grę wchodzą ssaki o dużym mózgu. Podejście to dotyczy zmienności międzygatunkowej populacji neuronalnych u bardzo różnych ssaków, co pozwala na porównywalne wyniki do mapowania w celu ujawnienia wzorców ewolucyjnych.

Podejście porównawcze do ilościowych badań liczenia komórek w bardzo różnych mózgach ssaków

Poznaj bezstronną stereologię do szacowania liczby neuronów w mózgu naczelnych. Ta metoda pozwala dokładnie określić populacje komórkowe w zdefiniowanych obszarach mózgu.

Wiedza o tym, co liczy się w analizie: nieobciążona stereologia w mózgu naczelnych zwierząt niebędących ludźmi

Przeglądaj więcej filmów