2 lipca 2009
Oddzielenie komórek od określonych typów tkanek wymaga określonych parametrów do pobudzenia tkanek w celu uzyskania dużej ilości żywotnych, zdolnych do hodowli komórek. Dysocjator Miltenyi gentleMACS optymalizuje to zadanie za pomocą prostego, praktycznego protokołu. W niniejszej publikacji wyjaśniono zastosowanie tego aparatu na tkance płucnej.
W tym protokole wideo zobaczysz, jak zdysocjować tkankę płucną dorosłej myszy za pomocą delikatnego maksimum po dysocjacji tkanki płucnej. W obecności kolagenazy d i DNAS zawiesiny jednej komórki są filtrowane za pomocą wirówki z sitkiem o średnicy 70 mikronów i zawieszane do dalszych zastosowań. Cześć, nazywam się Melanie Mlu i pracuję w Mil Biotech w Niemczech.
Dzisiaj pokażę Ci powtarzalną i zautomatyzowaną procedurę przygotowania zawiesiny pojedynczej komórki z tkanki płucnej myszy za pomocą dysocjacji GenX. Stosujemy tę procedurę w naszym laboratorium do przygotowania zawiesin pojedynczych komórek do przygotowania leukocytów lub komórek śródbłonka. Dobra, zacznijmy.
Zanim przystąpimy do sporządzania protokołu, musimy przygotować i mieć w pogotowiu kilka standardowych rozwiązań. Po pierwsze, będziemy potrzebować bufora Hebes. Po drugie, roztwór kolagenazy D zawierający 100 miligramów na mililitr enzymu i bufor hebes.
Po trzecie, roztwór dase one zawierający 20 000 jednostek na mililitr dase jeden. Wreszcie, dwa popularne rozwiązania buforowe. Typowy bufor PBS o pH 7,2 i bufor PEB pochodzący z roztworu płuczącego AutoMax i roztworu podstawowego BSA.
Rozpoczynamy nasz protokół od wypreparowanego płuca pobranego od sześcio- lub siedmiotygodniowej samicy myszy poddanej biopsji. Upewnij się, że płuca są wolne od sąsiednich narządów, takich jak serce i grasica, odprowadzające i doprowadzające naczynia krwionośne, tchawica i tkanki łączne. Wypłucz tkankę na szalce Petriego zawierającej PBS w celu usunięcia erytrocytów.
Zazwyczaj płuco myszy w tym wieku waży od 110 do 150 miligramów. Jeśli planujesz kojarzyć płuca ze starszymi zwierzętami lub innymi szczepami myszy, zważ tkankę i buforuj. Maksymalnie 450 miligramów tkanki może być zdysocjowanych na jedną probówkę.
Przenieś tkankę płucną do delikatnej rurki max C wypełnionej 4,9 mililitra buforu heis. Dodaj 100 mikrolitrów roztworu kolagenazy D do końcowego stężenia dwóch miligramów na mililitr do tkanki płucnej i buforu. Teraz 10 mikrolitrów dase.
Jedno rozwiązanie dla ponad 150 miligramów tkanki. Dodaj 20 mikrolitrów dase jeden roztwór. Upewnij się, że rurka C jest szczelnie zamknięta i umieść ją do góry nogami na delikatnym max dis.
Upewnij się, że tkanka znajduje się między wirnikiem a stojanem. Wybierz program płuc i uruchom go, naciskając przycisk start po zakończeniu programu. Wyjąć probówkę C z przyrządu i inkubować próbkę przez 30 minut.
W inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza podczas inkubacji probówkę należy obracać za pomocą rotatora probówki max mix lub ręcznie obracać co pięć minut. Po inkubacji zwróć rurkę C do delikatnego asocjatora max i uruchom drugi program płucny Podczas działania programu przygotuj 50-mililitrową probówkę do zbierania przefiltrowanych komórek, zastępując nasadkę sitkiem do komórek o siatku 70 mikrometrów. Po zakończeniu programu dysocjacji, w zależności od rozkładu materiału próbki w probówce, można krótko odwirować probówkę w celu skoncentrowania materiału próbki.
Zdysocjowane komórki można usunąć z probówki przez pipetowanie przez uszczelnioną przegrodę nasadkę rurki C. Za pomocą odpowiedniej końcówki do pipet o pojemności 1000 mikrolitrów zawiesinę komórek nakłada się na sitko komórek w celu usunięcia większych cząstek lub agregatów. Po odsączeniu roztworu umyj sitko komórkowe, dodając dodatkowe pięć mililitrów temperatury pokojowej i bufor do osadzania przefiltrowanych komórek.
Odwirować 50-mililitrową probówkę o stężeniu 300 GS przez 10 minut. Teraz odessać supernatant i ponownie zawiesić osad komórkowy w żądanej objętości o temperaturze pokojowej. Bufor peb.
Nie dekantować supernatantu. Teraz możesz przejść do aplikacji podrzędnej. Dysocjacja tkanki płucnej myszy przy użyciu tej procedury pozwoli uzyskać wysoki odsetek żywotnych leukocytów i komórek śródbłonka.
Otrzymane zawiesiny pojedynczych komórek barwiono CD 45 PE jako CD 1 46 FITC lub CD 31 FITC i analizowano za pomocą cytometrii przepływowej. Ten wykres przedstawia wzbogacanie komórek dendrytycznych za pomocą mikrokulek CD 11 C, separatora minimax i dwóch kolumn MS. Porządku. Właśnie pokazałem, jak przygotować zawiesiny jednokomórkowe z tkanki płucnej myszy w ustandaryzowany sposób, używając delikatnej dysocjacji mieszanki i rurek C.
Metoda ta pozwala na sprawną i skuteczną dysocjację tkanek. Podczas wykonywania tej procedury ważne jest, aby prawidłowo wypreparować płuco i przetworzyć tkankę natychmiast po sekcji. Przygotowane zawiesiny pojedynczych komórek można następnie wykorzystać do dalszych eksperymentów.
Na przykład znakowanie magnetyczne komórek, a następnie oddzielenie leukocytów lub komórek śródbłonka. Dobra, to wszystko. Dziękuję za oglądanie i życzę powodzenia w eksperymentach.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy protokół wideo demonstruje dysocjację tkanki płuc dorosłej myszy przy użyciu dysocjatora gentleMACS. Procedura została opracowana w celu uzyskania dużej liczby żywotnych, zdolnych do hodowli komórek do dalszych zastosowań.
Standaryzowana dysocjacja tkanek jest krytycznym etapem wstępnym w badaniach nad immunologią i biologią naczyniową, umożliwiającym odtwarzalne przygotowanie zawiesin komórek pierwotnych do dalszych analiz. System gentleMACS Dissociator zapewnia zautomatyzowaną, łagodną i skalowalną metodę otrzymywania zawiesin pojedynczych komórek o wysokiej żywotności z tkanki płuc myszy, zapewniając spójny materiał wejściowy do cytometrii przepływowej, sortowania komórek i profilowania molekularnego. Możliwość ta zwiększa pewność prognostyczną w badaniach nad walidacją celów terapeutycznych poprzez redukcję zmienności w uzysku oraz żywotności komórek pomiędzy poszczególnymi eksperymentami.
Urządzenie gentleMACS Dissociator wpisuje się w proces badawczy jako ustandaryzowany etap przygotowania próbek pomiędzy pobraniem tkanki a analizą komórkową, umożliwiając niezawodne przejście od tkanki ex vivo do pojedynczych komórek gotowych do analizy.