Name: Ekstrakcja składnika EPP z powierzchniowego EMG (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-12-16T16:05:00.000+00:00
Duration: 7 min 16 s
Description: Poznaj metodę ekstrakcji potencjału płytki końcowej z powierzchniowego EMG przy użyciu cyfrowych filtrów. Technika ta ujawnia oscylacje około 30 Hz, wspierając badania elektrofizjologiczne i diagnostykę neurologiczną.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Pragnę złożyć serdeczne podziękowania Davidowi Carlsonowi, profesorowi języka angielskiego na Matsumoto Dental University, za jego życzliwe wsparcie w pisaniu niniejszego raportu. Chciałbym również podziękować Tadafumie Adachiemu, doktorantowi w naszym laboratorium, za jego współpracę w charakterze uczestnika niniejszego badania.

1. Przygotowanie elektrod EMG
 <ol>
 <li>Zacznij od przygotowania dziewięciu elektrod. Osiem z nich służy do rejestracji sygnałów z obszarów nad mięśniem, a jedna pełni rolę elektrody referencyjnej.</li>
 <li>Po podłączeniu elektrod rejestrujących i referencyjnej do wzmacniacza, wypełnij dyski pastą przewodzącą. Każdy rodzaj będzie odpowiedni, jednak lepsza jest pasta o niskiej płynności.</li>
 <li>Przed przymocowaniem elektrod do skóry, upewnij się, że badany leży stabilnie, i określ przybliżoną lokalizację mięśnia żwacza na twarzy.</li>
 <li>Górne ścięgno mięśnia żwacza przyczepia się do łuku zygomatycznego, a jego dolne ścięgno do kąta żuchwy.</li>
	<li>Umieść osiem elektrod rejestrujących na długim pasku taśmy klejącej w równych odstępach między elektrodami, a następnie przymocuj cały układ do powierzchni skóry. Pierwszą elektrodę rejestrującą umieść na łuku zygomatycznym, a ostatnią na kącie żuchwy.</li>
 	<li>Na koniec przymocuj elektrodę referencyjną do czubka nosa.</li>
</ol>
2. Rejestracja EMG
<ol>
	<li>Aby rozpocząć pomiary, należy najpierw ustawić parametry wielokanałowego wzmacniacza analogowego (MEG6100). Wzmocnienie ustawiono na x 500, filtr dolnoprzepustowy na 0.5 Hz, a filtr górnoprzepustowy na 10 kHz.</li>
 	<li>Osiem wyjść wzmacniacza analogowego podłączono do przetwornika analogowo-cyfrowego (PCI-MIO-16E-4). Sygnał cyfrowy jest przetwarzany za pomocą oprogramowania LabView przy częstotliwości próbkowania 20kHz.</li>
 	<li>Po podłączeniu wszystkich elementów rejestruje się sygnały EMG podczas szybkiego zaciskania gumy do żucia po stronie ipsilateralnej.</li>
 	<li>Zapisy z ośmiu kanałów są wyświetlane na ekranie programu LabView natychmiast po zakończeniu procesu rejestracji.</li>
</ol>
3. Ekstrakcja EPP i obserwacja jego cech
<ol>
	<li>Aby wyodrębnić komponent EPP, należy najpierw usunąć komponent potencjału czynnościowego z surowych zapisów EMG, wykorzystując cyfrowy filtr górnoprzepustowy (filtr Butterwortha).</li>
 	<li>Zacznij stosować filtr z częstotliwością odcięcia 10 Hz. Powinna pojawić się wolna fala odchylająca się w kierunku dodatnim lub ujemnym. Fala ta odpowiada EPP, a różnica w polaryzacji odzwierciedla relację źródło-ujście (sink-source) prądu blaszki końcowej.</li>
 	<li>Podczas rejestracji sygnału z mięśnia żwacza oczekuje się, że najbardziej ujemne wychylenie fali wystąpi w zapisie z najbardziej dolnego miejsca rejestracji, a zmiana polaryzacji powinna nastąpić w odległości około 3 miejsc od tego punktu.</li>
 	<li>Wielkość komponentu EPP można zmierzyć jako wartość szczytową odchylenia lub jako pole powierzchni pod krzywą odchylenia.</li>
 	<li>Zmianę polaryzacji komponentu EPP można określić poprzez naniesienie przebiegu fali EPP z każdego kanału względem kanału referencyjnego, w którym odnotowano największe ugięcie ujemne.</li>
 	<li>Poprzez zwiększenie częstotliwości odcięcia fala wolna stanie się oscylacyjna. Amplituda oscylacji będzie rosnąć wraz ze wzrostem częstotliwości odcięcia i zazwyczaj stanie się wyraźna przy częstotliwości odcięcia wynoszącej 30 Hz.</li>
 	<li>Faza fali ulegnie odwróceniu w obrębie śladu, w którym odnotowano odwrócenie polaryzacji fali EPP przefiltrowanej w częstotliwości 10 Hz.</li>
 <li>Przesunięcie fazowe oscylacji można sprawdzić przy użyciu tych samych wykresów, które zastosowano w przypadku fali EPP przefiltrowanej do 10 Hz.</li>
 <li>Na podstawie odstępu między sąsiednimi szczytami dodatnimi i/lub ujemnymi oscylacji możemy uzyskać przybliżoną wartość częstotliwości tych oscylacji.</li>
</ol>
4. Wyniki rejestracji EMG
<img src="/files/ftp_upload/1653/1653Fig1a.jpg" alt="Schemat anatomii mięśni twarzy przedstawiający mięsień skroniowy i żwacz z oznakowanymi ścięgnami." data-altupdatedat="1761735611000" data-alt="Rysunek 1 a"> Rysunek 1a: Przedstawiono tutaj schemat ośmiu miejsc wzdłuż mięśnia żwacza, z których dokonywano pomiarów.
<img src="/files/ftp_upload/1653/1653Fig1b.jpg" alt="Wykres danych wielokanałowego EEG, napięcie względem czasu, analiza sygnału mózgowego, wstawka z detalem pokazująca wzorzec." data-altupdatedat="1761735611000" data-alt="Rysunek 1 b"> Rysunek 1b: Przedstawiono próbkę monopolarnych zapisów EMG, zarejestrowanych jednocześnie w punktach nad mięśniem żwacznym w odpowiedzi na szybkie zaciśnięcie szczęki po stronie ipsilateralnej. Komponent EPP został wyekstrahowany przy użyciu cyfrowego filtra górnoprzepustowego o częstotliwości odcięcia 10Hz, który jest naniesiony na każdy surowy zapis EMG. W tej próbie największe ujemne wychylenie zaobserwowano w śladach -5 i -6, a zmiana polaryzacji nastąpiła w obrębie śladu -3.
<img src="/files/ftp_upload/1653/1653Fig1c.jpg" alt="Wykres sygnału EEG przedstawiający wzorce aktywności fal mózgowych, z wstawką podkreślającą szczegóły przebiegu fali." data-altupdatedat="1761735611000" data-alt="Rycina 1c"> Rycina 1c: Gdy częstotliwość odcięcia cyfrowego filtra górnoprzepustowego została ustawiona na 30Hz, fala wolna wykazała oscylację. Jej faza uległa również przesunięciu w obrębie śladu 3, gdzie zmieniła się polaryzacja fali EPP przefiltrowanej do 10Hz. Zmierzono odstęp między sąsiednimi dodatnimi szczytami oscylacji. U tego osobnika średni odstęp między szczytami wynosił 31.7 ± 6.5 msec w 16 pomiarach.

<ol><li>Eccles, J. C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aEccles%2C+JC+%22The+physiology+of+synapses%22">The physiology of synapses</a>. , 1st ed, Springer-Verlag. Berlin. (1964).</li>
<li>Mitzdorf, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+source-density+method+and+application+in+cat+cerebral+cortex%3A+investigation+of+evoked+potentials+and+EEG+phenomena%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Rev%22%5BJournal%5D)">Current source-density method and application in cat cerebral cortex: investigation of evoked potentials and EEG phenomena.</a> Physiol. Rev. 65, 37-100 (1985).</li>
<li>Rall, W., Shepherd, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Theoretical+reconstruction+of+field+potentials+and+dendrodendritic+synaptic+interactions+in+olfactory+bulb%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Theoretical reconstruction of field potentials and dendrodendritic synaptic interactions in olfactory bulb.</a> J. Neurophysiol. 31, 884-915 (1968).</li>
<li>Richardson, T. L., Turner, R. W., Miller, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Action-potential+discharge+in+hippocampal+CA1+pyramidal+neurons%3A+current+source+density+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Action-potential discharge in hippocampal CA1 pyramidal neurons: current source density analysis.</a> J. Neurophysiol. 58, 981-996 (1987).</li>
<li>Kumai, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Location+of+the+neuromuscular+junction+of+the+human+masseter+muscle+estimated+from+the+low+frequency+component+of+the+surface+electromyogram%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Jpn.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Location of the neuromuscular junction of the human masseter muscle estimated from the low frequency component of the surface electromyogram.</a> J. Jpn. Physiol. 55, 61-68 (2005).</li>
<li>Mito, K., Sakamoto, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distribution+of+muscle+fiber+conduction+velocity+of+m.+masseter+during+voluntary+isometric+contraction%5BTitle%5D)+AND+%22Electroencephalogr.+Clin.+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Distribution of muscle fiber conduction velocity of m. masseter during voluntary isometric contraction.</a> Electroencephalogr. Clin. Neurophysiol. 40, 275-285 (2000).</li>
<li>Tokunaga, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-dimensional+configuration+of+the+myoneural+junctions+of+human+masticatory+muscle+detected+with+matrix+electrode%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Oral+Rehabili%22%5BJournal%5D)">Two-dimensional configuration of the myoneural junctions of human masticatory muscle detected with matrix electrode.</a> J. Oral Rehabili. 25, 329-334 (1998).</li>
<li>Rohen, J. H., Yokochi, C., Lűtjen-Drecoll, E. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRohen%2C+JH+%22Color+atlas+of+anatomy%22">Color atlas of anatomy</a>. , 6th ed, Lippincott Williams and Wilkins. Philadelphia. (2006).</li>
<li>Wichmann, T., DeLong, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oscillation+in+the+basal+ganglia%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Oscillation in the basal ganglia.</a> Nature. 400, 621-622 (1999).</li>
</ol>

<ol><li>Ponieważ przyjmuje się, że potencjał ujemny jest tworzony przez dopływ prądu płytki końcowej, a odchylenie dodatnie przez jego odpływ [1,2,3,4], zapis wykazujący najbardziej ujemne odchylenie musi odpowiadać miejscu lokalizacji złącza nerwowo-mięśniowego [5]. Rysunek 1b wskazuje złącze nerwowo-mięśniowe mięśnia żwacza zlokalizowane w jego dolnej części, blisko kąta żuchwy, co jest w zasadzie zgodne z wynikami uzyskanymi inną metodą wykorzystującą sposób przewodzenia potencjału czynnościowego jednostki motorycznej [6,7].</li>
<li>Mięsień...

<table><tbody><tr><td>Filtr analogowy</td><td>Nihon Kohden</td><td>MEG6100</td><td>przedwzmacniacz, wzmacniacz główny</td></tr><tr><td>Przetwornik A/C</td><td>National Instruments</td><td>PCI-MIO-16E-4</td><td>karta PCI do komputera</td></tr><tr><td>Interfejs połączeniowy</td><td>National Instruments</td><td>BNC-2090</td><td>adaptor BNC 8-kanałowy</td></tr><tr><td>Elektrody dyskowe</td><td>Nihon Kohden</td><td>NS-11</td><td>Ag/AgCl (&amp;#934;8mm)</td></tr><tr><td>Pasta elektrodowa</td><td>Sanshin</td><td>SA-5</td><td>półpłynna pasta węglowa</td></tr><tr><td>LabVIEW (Filtr cyfrowy)</td><td>National Instruments</td><td>V. 8.5</td><td>język programowania</td></tr><tr><td>Guma do żucia</td><td>Lotte</td><td>Green gum</td><td>żywność testowa do zaciskania</td></tr></tbody></table>

ekstrakcja komponentu epp z powierzchniowego emg

Extraction of the EPP Component from the Surface EMG

Oczekuje się, że powierzchniowy elektromiogram (EMG), zwłaszcza gdy jest rejestrowany w pobliżu złącza nerwowo-mięśniowego, będzie zawierał komponent potencjału płytki końcowej (EPP), który można wyekstrahować za pomocą odpowiedniego filtra sygnału. Istotne są dwa czynniki: EMG musi być rejestrowany w sposób monopolarny, a sama rejestracja musi być przeprowadzona w taki sposób, aby nie wyeliminować sygnału o niskiej częstotliwości odpowiadającego EPP. Niniejszy raport wyjaśnia, jak wyekstrahować komponent EPP z EMG mięśnia żwacza u człowieka. Powierzchniowy EMG jest rejestrowany w ośmiu punktach przy użyciu tradycyjnych elektrod dyskowych rozmieszczonych wzdłuż mięśnia, w równych odstępach międzyelektrodowych od łuku jarzmowego do kąta żuchwy, w odpowiedzi na szybkie zaciskanie dziąseł. Elektrodę referencyjną umieszcza się na czubku nosa. Komponent EPP jest ekstrahowany z surowych zapisów EMG poprzez zastosowanie cyfrowego filtra górnoprzepustowego (filtr Butterwortha drugiego rzędu) w zakresie 10–35 Hz. Gdy filtr zostanie ustawiony na 10 Hz, wyekstrahowana fala EPP odchyla się w kierunku ujemnym lub dodatnim, w zależności od miejsca rejestracji. Różnica w polaryzacji odzwierciedla relację między ujściem a źródłem (sink-source) prądu płytki końcowej, przy czym miejsce wykazujące najbardziej ujemne odchylenie odpowiada złączu nerwowo-mięśniowemu. W przypadku mięśnia żwacza szacuje się, że złącze nerwowo-mięśniowe znajduje się w jego dolnej części, blisko kąta żuchwy. Komponent EPP wykazuje interesującą oscylację, gdy częstotliwość odcięcia cyfrowego filtra górnoprzepustowego zostanie ustawiona na 30 Hz. Oscylacja EPP wskazuje, że skurcz mięśnia jest regulowany w sposób przerywany. Nieprawidłowe drżenia towarzyszące różnym rodzajom chorób mogą wynikać w znacznej mierze z tej oscylacji EPP, która staje się wolniejsza i trudna do zatrzymania.

Składową potencjału płytki końcowej (EPP) można wyodrębnić z powierzchniowego EMG za pomocą filtra cyfrowego. Wyodrębniony EPP wykazuje oscylacje o częstotliwości około 30 Hz.

Ekstrakcja komponentu EPP z powierzchniowego EMG

Oczekuje się, że powierzchniowy elektromiogram (EMG), zwłaszcza gdy jest rejestrowany w pobliżu złącza nerwowo-mięśniowego, będzie zawierał komponent potencjału płytki końcowej (EPP)...

W mechanizmie synapsy jonowej błona postsynaptyczna stanowi ujście dla prądu potencjału depolaryzującego. W środowisku zewnętrznym wokół blaszki końcowej powinno powstać ujemne pole potencjału, w odniesieniu do odległego punktu, co może być wykrywalne za pomocą monopolarnego EMG powierzchniowego. Jeśli potencjał odpowiadający potencjałowi blaszki końcowej lub EPP może zostać wykryty z powierzchni skóry, dostarczy on cennych informacji dla różnych dziedzin medycyny.Witajcie, jestem Kuma z Laboratorium Maksyloczodołowego w Katedrze Medycyny Jamy Ustnej na Uniwersytecie Mass. Dzisiaj zaprezentuję procedurę wyodrębniania komponentu EPP z powierzchniowego EMG. Stosujemy tę procedurę w naszym laboratorium do badania cech EPP.Zacznijmy zatem. W pierwszej kolejności przygotuj dziewięć elektrod. Podłącz je do wzmacniacza w odpowiednich pozycjach.Osiem z nich służy do rejestrowania sygnałów z obszarów nad mięśniem, a jedna jest elektrodą referencyjną. Po podłączeniu elektrod rejestrujących i referencyjnej do wzmacniacza, wypełnij krążki pastą przewodzącą; sprawdzi się każdy rodzaj pasty, jednak lepiej zastosować taką o niskiej lepkości.Przed przytwierdzeniem elektrod do skóry poproś badanego o mocne zaciśnięcie zębów i określ przybliżoną lokalizację mięśnia żwacza na twarzy. Górne ścięgno mięśnia żwacza przyczepia się do łuku jarzmowego, a dolne do kąta żuchwy; do ich wyznaczenia użyj długiego kawałka taśmy klejącej. Wyznacz osiem miejsc rejestracji w obrębie łuku jarzmowego oraz kąta żuchwy.Następnie umieść osiem elektrod rejestrujących na taśmie w równych odstępach między elektrodami i przytwierdź układ do powierzchni skóry. Pierwszą elektrodę rejestrującą umieszcza się na łuku jarzmowym, a ostatnią na kącie żuchwy. Na koniec przytwierdź elektrodę referencyjną do czubka nosa.Po umieszczeniu elektrod można rozpocząć rejestrację ELEKTROMIOGRAMU lub EMG. W pierwszej kolejności należy ustawić parametry wielokanałowego wzmacniacza analogowego. Ustaw wzmocnienie na X 500, filtr dolnoprzepustowy na 0,5 hertz oraz filtr górnoprzepustowy na 10 kilohertz.Podłącz wyjścia a wzmacniacza analogowego do przetwornika analogowo-cyfrowego. Po podłączeniu wszystkich elementów sygnał cyfrowy jest przetwarzany za pomocą oprogramowania LabVIEW z częstotliwością próbkowania 20 kilohertz. Nagraj sygnały EMG podczas szybkiego zaciskania żucia gumy po stronie ipsilateralnej.Ślady z ośmiu kanałów są wyświetlane na ekranie LabVIEW natychmiast po zakończeniu procesu rejestracji. Teraz zobaczmy, jak wyodrębnić z sygnału składową potencjału blaszki końcowej, aby uzyskać komponent EPP. Najpierw należy usunąć składową potencjału czynnościowego z surowych zapisów EMG.Używając cyfrowego filtra górnoprzepustowego, należy rozpocząć stosowanie filtra z częstotliwością odcięcia 10 hertz. Powinna pojawić się wolna fala odchylająca się w kierunku dodatnim lub ujemnym. Fala ta odpowiada EPP, a różnica w polaryzacji odzwierciedla relację źródła synchronizacji prądu płytki końcowej.Podczas rejestracji z mięśnia żwacza największe ujemne wychylenie fali spodziewane jest w zapisie z najniższego miejsca rejestracji, a zmiana polaryzacji powinna nastąpić w odległości około trzech punktów od tego miejsca. Amplitudę komponentu EPP można zmierzyć jako punkt szczytowy wychylenia lub pole powierzchni pod krzywą wychylenia. Poprzez naniesienie fali EPP z każdego kanału względem kanału referencyjnego, który wykazał największe ujemne wychylenie, można określić zmianę polaryzacji komponentu EPP.Poprzez zwiększenie częstotliwości odcięcia zastosowanego filtra, fala wolna stanie się oscylacyjna. Oscylacja będzie nasilać się wraz ze wzrostem częstotliwości odcięcia i stanie się zazwyczaj wyraźna przy częstotliwości odcięcia 30 hertz. Faza fali odwróci się w obrębie śladu, w którym polaryzacja fali EPP filtrowanej przy 10 hertz wykazała odwrócenie.Przesunięcie fazowe oscylacji można sprawdzić za pomocą tych samych wykresów, które zastosowano do przefiltrowanej falą EPP o częstotliwości 10 Hz, w przedziale między sąsiednimi szczytami dodatnimi i/lub ujemnymi oscylacji. Możemy uzyskać przybliżoną wartość częstotliwości oscylacji; przedstawiony tutaj schemat ukazuje osiem punktów wzdłuż mięśnia żwacza, z których dokonano pomiarów. Poniżej znajduje się przykład monopolarnych zapisów EMG zarejestrowanych jednocześnie z punktów położonych nad mięśniem żwaczem.W odpowiedzi na szybkie zaciśnięcie dziąsła po stronie ipsilateralnej, komponent EPP został wyodrębniony przy użyciu cyfrowego filtra górnoprzepustowego z częstotliwością odcięcia 10 hertz, który został nałożony na każdy surowy zapis EMG. W tej próbie najbardziej ujemne wychylenie zaobserwowano w śladach minus pięć i minus sześć, a polaryzacja uległa zmianie w śladzie minus trzy, gdy częstotliwość odcięcia cyfrowego filtra górnoprzepustowego została ustawiona na 30 hertz. Fala wolna wykazywała oscylację.Jej faza uległa również przesunięciu w obrębie śladu trzeciego, gdzie zmieniła się polaryzacja fali EPP filtrowanej przy 10 Hz. U tego osobnika zmierzono odstęp między sąsiednimi szczytami dodatnimi oscylacji. Średni odstęp między szczytami wynosił 31,7 milisekund w 16 pomiarach.Właśnie pokazaliśmy, jak wyodrębnić komponent EPP z powierzchniowego zapisu EMG. Podczas wykonywania tej procedury ważne jest, aby pamiętać o ustawieniu parametrów zapisu odpowiednich dla sygnału EPP oraz o rejestrowaniu EMG w sposób monopolarny. To wszystko.Dziękujemy za oglądanie i życzymy powodzenia w przeprowadzaniu eksperymentów.

extraction-of-the-epp-component-from-the-surface-emg

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Ekstrakcja składnika EPP z powierzchniowego EMG

Ta nowa metoda umożliwia jednoczesną rejestrację wewnątrzkomórkową pojedynczego motoneuronu dorosłej myszy oraz pomiar siły generowanej przez jego włókna mięśniowe. Połączone badanie właściwości elektrycznych i mechanicznych jednostek motorycznych u zwierząt zdrowych i modyfikowanych genetycznie stanowi przełom w badaniach nad układem nerwowo-mięśniowym.

Symultaniczne rejestrowanie wewnątrzkomórkowe lędźwiowego motoneuronu oraz siły generowanej przez jego jednostkę motoryczną u dorosłej myszy in vivo

Źródło:Hila Man1, Paul F. Funk2, Ieva Vebraite-Adereth3, Christoph Anders4, Orlando Guntinas-Lichius2, Yael Hanein1,3,51Sagol School of Neuroscience, Uniwersytet w Tel Awiwie, 2Oddział Otorynolaryngologii, Szpital Uniwersytecki w Jenie, Uniwersytet Friedricha Schillera w Jenie, 3Szkoła Inżynierii Elektrycznej, Uniwersytet w Tel Awiwie, 4Zakład Badań Motorycznych, Patofizjologii i Biomechaniki, Wydział Chirurgii Urazowej, Chirurgii Ręki i Rekonstrukcyjnej, Szpital Uniwersytecki w Jenie,...

Bezprzewodowa elektromiografia powierzchniowa rejestrująca aktywność mięśni twarzy podczas mimiki

Opracowanie skutecznego systemu interfejsu mózg-maszyna-(BMI) do przywracania i rehabilitacji dwunożnej lokomocji wymaga dokładnego dekodowania intencji użytkownika.  W tym miejscu przedstawiamy nowatorski protokół eksperymentalny i technikę zbierania danych do jednoczesnego nieinwazyjnego nabywania aktywności neuronalnej, aktywności mięśni i kinematyki całego ciała podczas różnych zadań i warunków lokomocyjnych.

Jednoczesna elektroencefalografia skóry głowy (EEG), elektromiografia (EMG) i segmentalny zapis inercyjny całego ciała do multimodalnego dekodowania neuronalnego

Opisujemy protokół oceny aktywności mięśni twarzy w odpowiedzi na doświadczoną i zaobserwowaną stymulację dotykową za pomocą elektromiografii twarzy.

Wykorzystanie elektromiografii twarzy do oceny reakcji mięśni twarzy na doświadczany i obserwowany dotyk afektywny u ludzi

Prezentowany tutaj jest protokół produkcji wszczepialnego systemu do chronologicznego zapisu in vivo wywołanych i spontanicznych potencjałów elektromiograficznych. System jest stosowany do badania unerwienia mięśni krtani po uszkodzeniu nerwów.

Wszczepialny system do przewlekłej elektromiografii in vivo

Dwie najnowsze technologie - tatuaż i tekstylia - wykazały obiecujące wyniki w zakresie czucia skóry. W tym miejscu przedstawiamy metody wytwarzania i oceny elektrod do tatuażu i elektrod tekstylnych do elektrofizjologicznego wykrywania skóry. Te interfejsy elektroniczne wykonane z przewodzących polimerów przewyższają istniejące standardy pod względem komfortu i czułości.

Dopasowane elektrody do noszenia: od produkcji do oceny elektrofizjologicznej

Ten artykuł szczegółowo opisuje, jak przeprowadzić in vivo (przy użyciu matryc elektrod powierzchniowych i igłowych) oraz ex vivo (przy użyciu ogniwa dielektrycznego) mięsień brzuchaty łydki gryzonia. Zademonstruje technikę zarówno na myszach, jak i szczurach oraz szczegółowo omówi dostępne modyfikacje (np. otyłe zwierzęta, młode).

Wykonywanie miografii impedancji elektrycznej in vivo i ex vivo u gryzoni

System Warunkowania Instrumentalnego Potencjału Wywołanego pomaga w badaniach naukowych nad funkcjami sensomotorycznymi i może prowadzić ukierunkowany trening neurobehawioralny, który może wpływać na rehabilitację sensomotoryczną w zaburzeniach nerwowo-mięśniowych. W artykule opisano jego możliwości i zilustrowano jego zastosowanie w modyfikacji prostego odruchu rdzeniowego w celu osiągnięcia trwałej poprawy funkcji motorycznych.

Wywołany potencjalny system warunkowania instrumentalnego (EPOCS): narzędzie badawcze i nowa terapia przewlekłych zaburzeń nerwowo-mięśniowych

Naszym celem było dostarczenie zaktualizowanego, łatwego do zrozumienia przewodnika na temat produkcji i testowania elektrod do elektromiografii epimysalnej. W tym celu udostępniamy instrukcje dotyczące pozyskiwania materiałów oraz szczegółowy przewodnik po procesie produkcji i testowania.

Opracowanie taniej elektrody do elektromiografii epimysjalnej: uproszczony przepływ pracy przy produkcji i testowaniu

Tutaj opisujemy protokół do rejestrowania i analizowania sygnałów elektromiografii oddechowej (EMG). Zawiera anatomiczne odniesienia do umieszczania elektrod EMG na kilku mięśniach oddechowych, usuwania szumu elektrokardiograficznego z sygnałów EMG oraz uzyskiwania średniej kwadratowej EMG (RMS) i czasu rozpoczęcia aktywności.

Akwizycja i półautomatyczna analiza elektromiografii powierzchni mięśni oddechowych

Poznaj metodę ekstrakcji potencjału płytki końcowej z powierzchniowego EMG przy użyciu cyfrowych filtrów. Technika ta ujawnia oscylacje około 30 Hz, wspierając badania elektrofizjologiczne i diagnostykę neurologiczną.

Ekstrakcja komponentu EPP z powierzchniowego EMG

Przeglądaj więcej filmów