5 kwietnia 2010
Celem prezentacji jest zademonstrowanie wysoce powtarzalnej metody generowania implantów komórek macierzystych związanych z macierzą w ubytkach chrząstki, które można wizualizować za pomocą obrazowania MR. Komórki macierzyste są znakowane zatwierdzonymi przez FDA ferumoksydami, mieszane z agarozą, implantowane w ubytkach chrząstki i obrazowane za pomocą skanera MR 7T.
Celem prezentacji jest zademonstrowanie prostej i powtarzalnej metody produkcji MASI z wykorzystaniem HME znakowanych para-tlenkami do monitorowania terapii opartych na komórkach macierzystych. W procesie znakowania obrazowaniem MR, przygotowane medium dodaje się do kolby T 75 i inkubuje przez cztery godziny. Następnie komórki poddaje się trypsynizacji i przemywaniu.
Po trzykrotnym przemyciu komórki są resuspensowane, a do probówki dodaje się żel agros. Teraz komórki są gotowe do implantacji w ubytki chrząstki. Cześć, jestem Alex.
Nazywam się Irene Peel i pochodzę z laboratorium High Delta Blink, Laboratorium Środków Kontrastowych w Katedrze Radiologii na Uniwersytecie Kalifornijskim w San Francisco. Jestem Lydia Men, również z Laboratorium Środków Kontrastowych.
Dzisiaj zaprezentujemy procedurę znakowania mezenchymalnych komórek macierzystych nanocząsteczkami tlenku żelaza, tworzenia konstruktów komórkowych w hydrożelu oraz implantowania tych konstruktów w ubytek chrząstki. W naszym laboratorium stosujemy tę procedurę do nieinwazyjnego śledzenia mezenchymalnych komórek macierzystych za pomocą obrazowania rezonansem magnetycznym. Zapraszamy do oglądania.
W pierwszej kolejności komórki hoduje się do uzyskania 80% konfluencji na co najmniej 18 godzin przed znakowaniem. W tym czasie należy przygotować pożywkę do znakowania, aby była gotowa do użycia w momencie osiągnięcia konfluencji przez komórki. W tym celu do próbki dodaje się end durum w dawce 100 µg żelaza na 1 mL pożywki bezsurowiczej.
Po doprowadzeniu komórek do konfluencji odessać pożywkę hodowlaną i przemyć komórki PBS lub pożywką bezsurowiczą. Następnie odessać roztwór płuczący i dodać przygotowaną pożywkę do znakowania. Inkubować komórki w temperaturze 37 °C w atmosferze 5% carbon dioxide przez cztery godziny.
Po czterogodzinnej inkubacji odessać medium do znakowania. Przepłukać komórki PBS, a następnie dodać trypsynę. Po odklejeniu komórek przemyć je trzykrotnie PBS i odwirować przy 400 RCF przez pięć minut.
Po tym etapie płukania resuspenduj komórki, policz je, oceń ich żywotność, a następnie wykorzystaj je zgodnie z potrzebami do eksperymentów. Teraz zobaczmy, jak przygotować implanty komórek macierzystych związane z macierzą. Rozpocznij od przygotowania świeżego roztworu agarozy.
Po schłodzeniu agarosy do 42 °C należy policzyć komórki i odwirować je w probówce typu Eppendorf o pojemności 1,5 ml. Po wirowaniu należy odrzucić nadsącz i wymieszać komórki z modyfikowaną pożywką Eagle'a (DMEM), aby uzyskać stężenie 30 × 10⁶ komórek/ml. Przed wymieszaniem komórek z ciepłą agarosą należy podgrzać końcówkę pipety, zasysając i wypuszczając gorący, sterylny PBS. Zapobiegnie to krzepnięciu agarosy wewnątrz końcówki.
Następnie pobierz taką samą objętość agarosy, jaka została użyta do medium, i dokładnie wymieszaj ją z zawiesiną komórek w medium, dbając o to, aby nie powstały pęcherzyki powietrza. Podczas mieszania trzymaj probówkę Eppendorf w podgrzewanej łaźni wodnej, aby agarosa nie ochłodziła się na tyle, by uległa zestaleniu, aż do uzyskania homogenicznej zawiesiny. Komórki są implantowane w ubytek i są teraz gotowe do obrazowania MR.
Teraz przedstawimy reprezentatywne wyniki, najpierw dotyczące naszej techniki znakowania, a następnie techniki implantacji. Po znakowaniu komórki w kolbach nadal wyglądają tak samo jak komórki nieznakowane. Zgodnie z oczekiwaniami, żywotność znakowanych komórek pozostaje bez zmian, co zostało wykazane w teście na obecność kaspazy 3.
Połączenie znakowanych komórek z hydrożelami prowadzi do utraty sygnału w implantach, co widoczne jest na obrazach MR ważonych w czasie T2; komórki nieznakowane nie wykazują żadnego sygnału. Przekroje konstrukcji z komórek i hydrożeli barwi się błękitem pruskim. Potwierdza to wewnątrzkomórkową akumulację żelaza.
Właśnie pokazaliśmy Państwu, jak znakować mezenchymalne komórki macierzyste za pomocą nanocząsteczek tlenku żelaza, jak tworzyć konstrukty hydrożelowe z zaznakowanymi komórkami oraz jak implantować je w defekty chrząstki. Podczas wykonywania tej procedury ważne jest, aby pamiętać o uprzednim ogrzaniu końcówki pipety przed dodaniem ciepłego hydrożelu do zawiesiny komórek w medium.
Kluczowe jest również, aby podczas obrazowania unikać powstawania pęcherzyków powietrza. To wszystko. Dziękujemy za oglądanie i życzymy powodzenia w przeprowadzaniu eksperymentów.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsza prezentacja demonstruje powtarzalną metodę wytwarzania implantów komórek macierzystych związanych z macierzą do leczenia ubytków chrząstki. Metoda ta wykorzystuje zatwierdzone przez FDA ferumoksydy do znakowania komórek macierzystych, które następnie są wizualizowane przy użyciu skanera MR 7T.
Niezawodne śledzenie i monitorowanie retencji mezenchymalnych komórek macierzystych (MSCs) w modelach naprawy chrząstki stanowi krytyczne wyzwanie dla translacyjnych procesów inżynierii tkankowej i medycyny regeneracyjnej. Zastosowanie znakowania nanocząsteczkami tlenku żelaza oraz obrazowania MR umożliwia nieinwazyjne, ilościowe monitorowanie implantów komórkowych, co zwiększa pewność prognostyczną we wczesnych etapach rozwoju terapii. Podejście to wzmacnia analizę ryzyka mechanistycznego i dostarcza informacji niezbędnych do podejmowania decyzji o kontynuacji lub przerwaniu prac nad portfelami terapii komórkowych ukierunkowanych na schorzenia stawów i chrząstki.
Metoda ta integruje proces od odkrycia do etapu przedklinicznego w zakresie regeneracji chrząstki w oparciu o komórki, łącząc walidację in vitro z monitorowaniem terapeutycznych MSC in vivo.