Test immunofluorescencji CTC: technika charakteryzowania krążących komórek nowotworowych

0 wyświetleń4:05 min • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

- Na początek rozcieńczyć izolowane krążące komórki nowotworowe lub CTC do wymaganego stężenia za pomocą roztworu zapobiegającego wiązaniu, który chroni komórki przed ścinaniem płynu i uszkodzeniem ciśnieniowym. Następnie zmontuj szkiełko mikroskopowe pokryte polilizyną i kartę filtrującą do cytowirówki w zespole lejka do cytowirówki. Przenieść zawiesinę komórek do portu lejkowego zespołu, a następnie przeprowadzić cytowirowanie.

Siła odśrodkowa koncentruje i osadza monowarstwę komórek na okrągłym obszarze na szkiełku. Odizoluj obszar zdeponowany komórkami za pomocą izolatora silikonowego. Po wyschnięciu utrwal komórki za pomocą paraformaldehydu. Następnie inkubuj komórki z odpowiednim roztworem blokującym zawierającym białka, które łatwo wiążą się z dowolnymi niespecyficznymi miejscami wiązania na powierzchni komórki.

Teraz oznacz komórki roztworem przeciwciał znakowanym fluorescencyjnie, który Cię interesuje. Przeciwciała znakowane fluoroforem rozpoznają i wiążą się ze specyficznymi cząsteczkami docelowymi na powierzchni komórki. Umyj próbkę w celu usunięcia wszelkich niezwiązanych przeciwciał. Dodaj roztwór montażowy, aby przygotować próbkę do obrazowania.

Użyj mikroskopu fluorescencyjnego, aby wykryć światło emitowane przez koniugaty przeciwciało-fluorofor związane z docelowymi antygenami na CTC. W tym protokole przeprowadzimy test immunofluorescencyjny CTC w próbkach pacjentów z niedrobnokomórkowym rakiem płuca.

- W przypadku barwienia immunofluorescencyjnego policz komórki w hemocytometrze i rozcieńcz wzbogaconą próbkę do 1 razy 10 do piątych komórek na 100 mikrolitrów o stężeniu 0,2% roztworu antywiążącego. Następnie za pomocą bawełnianego wacika nasączonego 50 mikrolitrami roztworu zapobiegającego wiązaniu należy zwilżyć kontur komory próbki i umieścić w niej szkiełko z polilizyny.

Zamknąć komorę i trzykrotnie pipetować w górę i w dół, aby pokryć końcówkę mikropipety roztworem wiążącym przed ponownym zawiesieniem próbki w ostatnich 100 mikrolitrach supernatantu. Przenieść roztwór komórek do komory na próbkę i cytowirować próbkę w dedykowanej wirówce z prędkością 400 obrotów na minutę przez 4 minuty przy małym przyspieszeniu.

Pod koniec wirowania umieścić izolator krzemu wokół obszaru osadzania i pozostawić szkiełko do wyschnięcia pod komorą bezpieczeństwa mikrobiologicznego przez dwie minuty. Następnie utrwal próbkę cytospunową za pomocą 100 mikrolitrów 4% paraformaldehydu przez 10 minut w temperaturze pokojowej, a następnie trzy 2-minutowe płukanie z 200 mikrolitrami PBS na pranie w temperaturze pokojowej.

Po ostatnim przemyciu zablokować wszelkie niespecyficzne wiązania za pomocą 30-minutowej inkubacji w odczynniku blokującym w temperaturze pokojowej, a następnie znakować 100 mikrolitrami roztworu przeciwciała, który jest przedmiotem zainteresowania. Umieść oznakowane szkiełko w szalce Petriego o wymiarach 100 na 15 mililitrów na kawałku chłonnego papieru zwilżonego 2 mililitrami sterylnej wody i umieść naczynie zamknięte w temperaturze 4 stopni Celsjusza na noc, chronione przed światłem.

Następnego ranka przemyć próbkę trzykrotnie PBS, jak pokazano, i umieścić próbkę w 10 mikrolitrach odpowiedniego roztworu montażowego i szklanym szkiełku nakrywkowym. Następnie uszczelnij szkiełko nakrywkowe bezbarwnym lakierem do paznokci.

11:31

Wykorzystanie mikrotomografii komputerowej do oceny rozwoju guza i obserwacji odpowiedzi na leczenie w mysim modelu raka płuc

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:49

Zautomatyzowany multipleksowy panel immunofluorescencyjny do badań immunoonkologicznych na próbkach tkanek raka utrwalonego formaliną

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:29

Półautomatyczna charakterystyka i liczenie krążących komórek nowotworowych PD-L1 od pacjentów z niedrobnokomórkowym rakiem płuca za pomocą immunofluorescencji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:32

Szybka izolacja żywotnych krążących komórek nowotworowych z próbek krwi pacjenta

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:32

Test immunofluorescencyjny: metoda identyfikacji komórek nowotworowych wychwyconych na przewodzie medycznym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

14:14

Adaptacja półautomatycznych testów na krążące komórki nowotworowe (CTC) do zastosowań klinicznych i przedklinicznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:10

Wychwytywanie i uwalnianie żywotnych krążących komórek nowotworowych z krwi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:32

Multipleksowa analiza immunofluorescencyjna i kwantyfikacja wewnątrznowotworowych limfocytów T PD-1 + Tim-3 + CD8 +

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:56

Charakterystyka komórek nowotworowych za pomocą przewodu medycznego do wychwytywania krążących komórek nowotworowych: podejście 3D oparte na immunofluorescencji i DNA FISH

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:47

Krążące linie komórek nowotworowych: innowacyjne narzędzie do badań podstawowych i translacyjnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026