$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
- Na początek rozcieńczyć izolowane krążące komórki nowotworowe lub CTC do wymaganego stężenia za pomocą roztworu zapobiegającego wiązaniu, który chroni komórki przed ścinaniem płynu i uszkodzeniem ciśnieniowym. Następnie zmontuj szkiełko mikroskopowe pokryte polilizyną i kartę filtrującą do cytowirówki w zespole lejka do cytowirówki. Przenieść zawiesinę komórek do portu lejkowego zespołu, a następnie przeprowadzić cytowirowanie.
Siła odśrodkowa koncentruje i osadza monowarstwę komórek na okrągłym obszarze na szkiełku. Odizoluj obszar zdeponowany komórkami za pomocą izolatora silikonowego. Po wyschnięciu utrwal komórki za pomocą paraformaldehydu. Następnie inkubuj komórki z odpowiednim roztworem blokującym zawierającym białka, które łatwo wiążą się z dowolnymi niespecyficznymi miejscami wiązania na powierzchni komórki.
Teraz oznacz komórki roztworem przeciwciał znakowanym fluorescencyjnie, który Cię interesuje. Przeciwciała znakowane fluoroforem rozpoznają i wiążą się ze specyficznymi cząsteczkami docelowymi na powierzchni komórki. Umyj próbkę w celu usunięcia wszelkich niezwiązanych przeciwciał. Dodaj roztwór montażowy, aby przygotować próbkę do obrazowania.
Użyj mikroskopu fluorescencyjnego, aby wykryć światło emitowane przez koniugaty przeciwciało-fluorofor związane z docelowymi antygenami na CTC. W tym protokole przeprowadzimy test immunofluorescencyjny CTC w próbkach pacjentów z niedrobnokomórkowym rakiem płuca.
- W przypadku barwienia immunofluorescencyjnego policz komórki w hemocytometrze i rozcieńcz wzbogaconą próbkę do 1 razy 10 do piątych komórek na 100 mikrolitrów o stężeniu 0,2% roztworu antywiążącego. Następnie za pomocą bawełnianego wacika nasączonego 50 mikrolitrami roztworu zapobiegającego wiązaniu należy zwilżyć kontur komory próbki i umieścić w niej szkiełko z polilizyny.
Zamknąć komorę i trzykrotnie pipetować w górę i w dół, aby pokryć końcówkę mikropipety roztworem wiążącym przed ponownym zawiesieniem próbki w ostatnich 100 mikrolitrach supernatantu. Przenieść roztwór komórek do komory na próbkę i cytowirować próbkę w dedykowanej wirówce z prędkością 400 obrotów na minutę przez 4 minuty przy małym przyspieszeniu.
Pod koniec wirowania umieścić izolator krzemu wokół obszaru osadzania i pozostawić szkiełko do wyschnięcia pod komorą bezpieczeństwa mikrobiologicznego przez dwie minuty. Następnie utrwal próbkę cytospunową za pomocą 100 mikrolitrów 4% paraformaldehydu przez 10 minut w temperaturze pokojowej, a następnie trzy 2-minutowe płukanie z 200 mikrolitrami PBS na pranie w temperaturze pokojowej.
Po ostatnim przemyciu zablokować wszelkie niespecyficzne wiązania za pomocą 30-minutowej inkubacji w odczynniku blokującym w temperaturze pokojowej, a następnie znakować 100 mikrolitrami roztworu przeciwciała, który jest przedmiotem zainteresowania. Umieść oznakowane szkiełko w szalce Petriego o wymiarach 100 na 15 mililitrów na kawałku chłonnego papieru zwilżonego 2 mililitrami sterylnej wody i umieść naczynie zamknięte w temperaturze 4 stopni Celsjusza na noc, chronione przed światłem.
Następnego ranka przemyć próbkę trzykrotnie PBS, jak pokazano, i umieścić próbkę w 10 mikrolitrach odpowiedniego roztworu montażowego i szklanym szkiełku nakrywkowym. Następnie uszczelnij szkiełko nakrywkowe bezbarwnym lakierem do paznokci.