Eskalacja dawki: metoda rozwoju oporności na leki w komórkach nowotworowych

0 wyświetleń4:17 min • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

- Inhibitory kinazy tyrozynowej (TKI) blokują wiązanie receptora kinazy z ATP, zapobiegając fosforylacji. Zacznij od posiewu komórek rakowych w pożywce wzrostowej. Pozwól im osiągnąć korzystną gęstość i przenieś komórki do wielu dołków. Po nocnym wzroście dozuj różne stężenia leku do wielu dołków i pozwól komórkom rosnąć przez pożądany czas. Dodaj MTT, barwnik rozpuszczalny w wodzie, aby zmierzyć żywotność komórek. Enzymy mitochondrialne przekształcają MTT w nierozpuszczalny fioletowy formazan w żywych komórkach.

Zatrzymać reakcję poprzez dodanie odpowiedniego środka solubilizującego i zmierzyć formazan spektrofotometrycznie. Ta metoda nazywa się testem MTT. Narysuj wykres żywych komórek wskazanych przez formazan w stosunku do stężeń leku. Oblicz stężenie hamujące, IC50, znajdując stężenie leku, które zabija 50% komórek za pomocą oprogramowania.

Następnie hoduj komórki rakowe w pożywce wzrostowej i rozprowadź je na trzech różnych płytkach. Po osiągnięciu przez komórki subkonfluencji dodać 1/10 rozcieńczenia o stężeniu IC50. Pozwól komórkom rosnąć i wykonaj test MTT. Powtórz ten proces ze zwiększaniem dawki leku. Komórki nowotworowe powoli rozwijają oporność na TKI z powodu mutacji w sekwencji białka.

Poniższy protokół pokazuje rozwój oporności na afatynib w komórkach PC9 poprzez zwiększanie dawki.

- Aby określić odpowiednie stężenie oporności na afatynib, należy wyhodować komórki PC9 w pożywce wzrostowej w 10-centymetrowym naczyniu poddanym działaniu hodowli komórkowej w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% dwutlenku węgla. Ponownie zawiesić komórki PC9 w stężeniu 4 razy 10 do 4 komórek na mililitr pożywki wzrostowej i zasiać komórki w 50 mikrolitrach zawiesiny komórek na studzienkę w 96-dołkowej mikropłytce. Po całonocnej inkubacji w inkubatorze do hodowli komórkowych należy poddać komórki działaniu 50 mikrolitrów roztworu afatynibu na studzienkę w sześciu powtórzeniach wskazanych stężeń. A po 96-godzinnej inkubacji w inkubatorze do hodowli komórkowych dodaj 15 mikrolitrów barwnika MTT do każdej studzienki.

Po czterech godzinach w inkubatorze do hodowli komórkowych dodaj 100 mikrolitrów roztworu zatrzymującego rozpuszczanie do każdej studzienki i włóż płytkę z powrotem do inkubatora na noc. Następnego ranka zmierz gęstość optyczną przy 570 nanometrach na czytniku mikropłytek. W przypadku ciągłej ekspozycji na afatynib należy hodować komórki PC9 w szalkach P100 zawierających 10 mililitrów pożywki wzrostowej, aż komórki osiągną subkonfluencję.

Przenieś subkonfluentne kultury do trzech nowych szalek P100 po 9 mililitrów pożywki wzrostowej na początkową szalkę hodowlaną i zwróć komórki do inkubatora do hodowli komórkowych. Następnego ranka dodać 0,1 nanomola lub 1/10 połowy maksymalnego stężenia hamującego afatynibu do każdego zestawu trzech szalek hodowlanych. Gdy komórki leczone afatynibem ulegną subkonfuzji, należy użyć pipety o pojemności 1 mililitra, aby dokładnie wymieszać kultury i przenieść 1 mililitr komórek z każdej pożywki do 9 mililitrów świeżej pożywki w nowych szalkach P100.

Dodać od 10% do 20% wyższe stężenia afatynibu do nowych kultur, zwiększając stężenie afatynibu poprzez stopniowe zwiększanie dawki za każdym razem, gdy kultury osiągną subkonfluencję w okresie od 10 do 12 miesięcy. Po osiągnięciu stężenia afatynibu wynoszącego 1 mikromol należy przeprowadzić test MTT, jak wykazano, w celu potwierdzenia, że komórki rozwinęły oporność na afatynib.

08:46

Implementacja testów oporności na leki in vitro: maksymalizacja potencjału w zakresie odkrywania klinicznie istotnych mechanizmów oporności

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

13:34

Połączony model tkankowy 3D guza płuca wykonany in vitro/in silico do przewidywania skuteczności leków w określonych tłach mutacyjnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:38

Ustalenie i charakterystyka trzech linii komórkowych PC-9 gruczolakoraka płuc opornych na afatynib opracowanych przy rosnących dawkach afatynibu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:33

Generowanie chemoopornych komórek raka prostaty: procedura uzyskiwania lekoopornych komórek rakowych in vitro

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:28

Charakterystyka funkcjonalnej chemooporności: metoda oceny lekooporności w komórkach nowotworowych za pomocą testu klonogennego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:19

Ocena skuteczności uczulenia na leki przeciwnowotworowe in vitro i in vivo

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:38

Ustalanie podwójnej oporności na EGFR-TKI i MET-TKI w komórkach gruczolakoraka płuc in vitro z 2-etapową procedurą eskalacji dawki

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:44

Generowanie modeli komórkowych raka gruczołu krokowego oporności na lek antymitotyczny docetaksel

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:59

Poszukiwanie ścieżek napędzających nabytą oporność na terapię celowaną: wytwarzanie subklonów opornych na leki i przywracanie wrażliwości przez knock-down genów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026