Name: Badanie trajektorii toczenia się komórek na asymetrycznych wzorcach receptorów (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-02-13T16:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 24 s
Description: Poznaj metodę analizy trajektorii toczenia się komórek HL-60 na asymetrycznych wzorcach receptorów P-selectin. Technika mikrokontaktowego drukowania umożliwia inżynierię podłoży do bezetykietowej separacji komórek.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Projekt ten był wspierany przez Deshpande Center for Technological Innovation w MIT (R.K. i J.M.K.) oraz grant NSF CAREER 0952493 przyznany R.K. w ramach programu Chemical and Biological Separations. Dziękujemy Institute for Soldier Nanotechnologies (ISN) oraz Microsystems Technology Laboratory (MTL) w MIT za udostępnienie zaplecza badawczego.

1. Toczenie komórek HL60
1.1. Wytwarzanie strukturyzowanych podłoży.
<ol>
	<li>Zastosowanie druku mikrokontaktowego (μCP)4-7 w celu utworzenia naprzemiennych samoorganizujących się monowarstw (SAMs) cząsteczek PEG na szklanych płytkach powlekanych złotem: Wykonanie stempli z polidimetylosiloksanu (PDMS) do druku mikrokontaktowego, definiujących wzory receptorów pod kątem nachylenia α = 10°, za pomocą procesu formowania w SU-8. Oczyszczenie powierzchni złota roztworem Piranha (mieszanina kwasu siarkowego i 30% nadtlenku wodoru w stosunku 3:1) przez 20 minut, a następnie obfite przemycie powierzchni wodąy dejonizowaną (DI) w temperaturze 24,5 °C przed użyciem. Naniesienie na stempel PDMS 5mM roztworu PEG w etanolu. Suszenie stempla na powietrzu przez 20 minut. Delikatne przyłożenie stempla do powierzchni złota na 40 s oraz upewnienie się, że pomiędzy powierzchnią złota a stemplem występuje dobry kontakt. Nie jest wymagany nadmierny nacisk. Przemycie powierzchni etanolem i osuszenie jej strumieniem N2.</li>
	<li>Inkubacja podłoża w roztworze P-selectyny (15 μg/mL w DPBS) przy użyciu komory perfuzyjnej (Electron Microscopy Sciences) przez 3 godziny w temperaturze 24,5°C w celu wzorowania pozostałych obszarów P-selectyną. Przemycie powierzchni obfitym DPBS.</li>
	<li>Wypełnienie pozostałych wolnych miejsc na powierzchni za pomocą BSA (1 mg/mL w DPBS) przez 1 h w celu zablokowania oddziaływań niespecyficznych. Przemycie powierzchni obfitym DPBS.</li>
</ol>
1.2. Eksperymenty z toczeniem się komórek w komorze przepływowej.
<ol>
	<li>Przeprowadź przepływ zawiesiny komórek HL60 (~105 komórek/mL) nad obszarami wzorcowymi w prostokątnej komorze przepływowej (Glycotech, Inc; szerokość w = 1,0 cm; długość = 6 cm; wysokość h = 0,0127 cm) w temperaturze 24,5°C. Użyj pompy strzykawkowej (World Precision Instruments, SP230IW) w celu uzyskania natężenia przepływu 75 μL/min, przy odpowiadającym temu naprężeniu ścinającym około 0,5 dyn/cm2 (~0,05 Pa). Oblicz naprężenie ścinające τ, korzystając z równania przepływu Poiseuille'a dla szczeliny τ = 6μQ/wh2, gdzie μ to lepkość kinematyczna (0,0102 Pa s), Q to objętościowe natężenie przepływu, w to szerokość komory przepływowej, a h to wysokość komory przepływowej.</li>
	<li>Użyj mikroskopu odwróconego (Nikon TE20-U) z zamontowaną kamerą (Andor iXon 85), aby zarejestrować oddziaływania toczących się komórek HL60 z adhezyjnymi podłożami P-selectyny, używając obiektywu 4×, zazwyczaj z częstotliwością 1 klatki na sekundę przez czas 300 s. Przeprowadź trzy niezależne eksperymenty dla każdej wartości naprężenia ścinającego oraz kąta nachylenia wzoru. Przedstaw dane jako średnią i odchylenie standardowe wartości średnich uzyskanych z każdego eksperymentu.</li>
	<li>Analiza danych. 
	Przeanalizuj sekwencje obrazów za pomocą dostosowanego programu Matlab (Mathworks, Inc.), który wykorzystał darmowe oprogramowanie do śledzenia cząstek8 w celu wygenerowania trajektorii wzdłuż krawędzi linii wzorca. Wyselekcjonuj trajektorie rozciągające się do końca pasma P-selectyny i dopasuj do nich dwa proste odcinki – jeden zgodny z kierunkiem przepływu, a drugi zgodny z krawędzią wzorca. Te dwa odcinki służą następnie do obliczenia długości śledzenia krawędzi, prędkości toczenia się na krawędzi oraz prędkości toczenia się w obszarze gładkim.</li>
</ol>
2. Reprezentatywne wyniki:
<img src="/files/ftp_upload/2640/2640fig1.jpg" alt="Analiza migracji komórek; schematy: (A) Toczenie się komórek po powierzchniach, (B) Kierunek przepływu, (C) Histogram danych." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rysunek 1"> 
Rysunek (A) przedstawia jeden z obrazów mikroskopowych przekonwertowanych z filmu obrazującego toczące się interakcje komórek HL60 z adhesive substratami P-selektyny przy użyciu obiektywu 4×. Obszary jasne i ciemne odpowiadają odpowiednio regionom receptora P-selektyny oraz regionom PEG. Rysunek (B) przedstawia ścieżki uzyskane przy użyciu dostosowanego programu Matlab. Kąt nachylenia krawędzi wynosił 10° a naprężenie ścinające wynosiło 0,5 dyn/cm²2długość śledzenia krawędzi, Leprzemieszczenie, d oraz prędkości toczenia na krawędzi i wewnątrz obręczy, Ve i Vpodpowiednio, zostały opisane w Rycina (C-1). Rysunek (C-2) przedstawia rozkład (liczbę zarejestrowanych komórek) długości śledzenia krawędzi. Wstawki pokazują średnią wartość le a prędkość toczenia na krawędzi (Ve) oraz wewnątrz prążków (Vp) przy kącie nachylenia α =10° or wartość naprężenia ścinającego płynu około 0,5 dyn/cm²2Słupki błędów przedstawiają jedno odchylenie standardowe, gdzie n = 3 powtórzone eksperymenty (3 powtórne powierzchnie) dla każdego stanu.

<ol><li>Karnik, R., Hong, S., Zhang, H., Mei, Y., Anderson, D. G., Karp, J. M., Langer, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanomechanical+control+of+cell+rolling+in+two+dimensions+through+surface+Patterning+of+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Lett%22%5BJournal%5D)">Nanomechanical control of cell rolling in two dimensions through surface Patterning of receptors.</a> Nano Lett. 8 (4), 1153-1158 (2008).</li>
<li>Lee, C. H., Bose, S., Van Vliet, K. J., Karp, J. M., Karnik, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Examining+Lateral+Displacement+of+HL60+Cells+Rolling+on+Asymmetric+P-selectin+Patterns%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Examining Lateral Displacement of HL60 Cells Rolling on Asymmetric P-selectin Patterns.</a> Langmuir. 27 (1), 240-249 (2011).</li>
<li>Norman, K. E., Moore, K. L., McEver, R. P., Ley, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Leukocyte+rolling+in-vivo+is+mediated+by+p-selectin+glycoprotein+ligand-1%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Leukocyte rolling in-vivo is mediated by p-selectin glycoprotein ligand-1.</a> Blood. 86 (12), 4417-4421 (1995).</li>
<li>Bernard, A., Delamarche, E., Schmid, H., Michel, B., Bosshard, H. R., Biebuyck, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Printing+patterns+of+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Printing patterns of proteins.</a> Langmuir. 14 (9), 2225-2229 (1998).</li>
<li>James, C. D., Davis, R. C., Kam, L., Craighead, H. G., Isaacson, M., Turner, J. N., Shain, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patterned+protein+layers+on+solid+substrates+by+thin+stamp+microcontact+printing%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Patterned protein layers on solid substrates by thin stamp microcontact printing.</a> Langmuir. 14 (4), 741-744 (1998).</li>
<li>Mrksich, M., Whitesides, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+self-assembled+monolayers+to+understand+the+interactions+of+man-made+surfaces+with+proteins+and+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Biophysics+and+Biomolecular+Structure%22%5BJournal%5D)">Using self-assembled monolayers to understand the interactions of man-made surfaces with proteins and cells.</a> Annual Review of Biophysics and Biomolecular Structure. 25, 55-78 (1996).</li>
<li>Tan, J. L., Tien, J., Chen, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microcontact+printing+of+proteins+on+mixed+self-assembled+monolayers%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Microcontact printing of proteins on mixed self-assembled monolayers.</a> Langmuir. 18 (2), 519-523 (2002).</li>
<li>Matlab Particle Tracking. , Avaliable from: 
	
 <a target="_blank" href="http://physics.georgetown.edu/matlab/">http://physics.georgetown.edu/matlab/</a> Forthcoming.</li>
<li>Lee, D., King, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microcontact+Printing+of+P-Selectin+Increases+the+Rate+of+Neutrophil+Recruitment+Under+Shear+Flow%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnology+Progress%22%5BJournal%5D)">Microcontact Printing of P-Selectin Increases the Rate of Neutrophil Recruitment Under Shear Flow.</a> Biotechnology Progress. 24 (5), 1052-1059 Forthcoming.</li>
<li>Greenberg, A. W., Hammer, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+separation+mediated+by+differential+rolling+adhesion%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol.+Bioeng%22%5BJournal%5D)">Cell separation mediated by differential rolling adhesion.</a> Biotechnol. Bioeng. 73 (2), 111-124 (2001).</li>
<li>Higuchi, A., Tsukamoto, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+separation+of+hepatocytes+and+fibroblasts+through+surface-modified+polyurethane+membranes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Mater.+Res.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Cell separation of hepatocytes and fibroblasts through surface-modified polyurethane membranes.</a> J. Biomed. Mater. Res. Part A. 71A (3), 470-479 (2004).</li>
<li>Alexeev, A., Verberg, R., Balazs, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patterned+surfaces+segregate+compliant+microcapsules%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Patterned surfaces segregate compliant microcapsules.</a> Langmuir. 23 (3), 983-987 (2007).</li>
</ol>

Nie zgłoszono żadnych konfliktów interesów.

Opisaliśmy protokół badania trajektorii toczenia się komórek na asymetrycznych powierzchniach z wzorem receptorów, wytworzonych za pomocą mikrodruku kontaktowego2. Obrazy z mikroskopu optycznego powierzchni z naniesionym wzorem, wykazujące wyraźny kontrast między obszarami PEG a P-selektyny, mogą służyć do potwierdzenia poprawności procesu stemplowania. W przypadku prawidłowego stemplowania obserwuje się ostre, proste krawędzie. Zbyt mocne dociskanie stempla może prowadzić do jego deformacji, co ogranicza prec...

<table><tbody><tr><td>Ludzkie komórki białaczki promielocytowej</td><td>ATCC</td><td>CCL-240</td><td>komórki HL60</td></tr><tr><td>Szkiełka szklane powlekane złotem</td><td>EMF</td><td>TA134</td><td>szkiełka złote</td></tr><tr><td>(1-merkaptoundec-11-yl)tetra(glikol etylenowy)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>674508</td><td>PEG</td></tr><tr><td>Rekombinowana ludzka P-selektyna</td><td>R&amp;amp;D Systems</td><td>ADP3-050</td><td>P-selektyna</td></tr><tr><td>Seryczna albumina bydlęca</td><td>Rockland Immunochemicals</td><td>BSA-50</td><td>BSA</td></tr><tr><td>Fosforanowy bufor solny Dulbecco&amp;rsquo;s</td><td>Mediatech, Inc.</td><td>21-030</td><td>DPBS</td></tr><tr><td>Kwas siarkowy</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>339741</td><td></td></tr><tr><td>Nadtlenek wodoru</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>316989</td><td></td></tr></tbody></table>

badanie trajektorii toczenia się komórek na asymetrycznych wzorach receptorów

Studying Cell Rolling Trajectories on Asymmetric Receptor Patterns

Przesunięcie boczne komórek prostopadle do strumienia przepływu poprzez toczenie się po asymetrycznych wzorach receptorowych stwarza możliwość opracowania nowych urządzeń do bezznacznikowej separacji i analizy komórek1. Takie urządzenia mogą wykorzystywać przesunięcie boczne do separacji w przepływie ciągłym lub wzory receptorowe modulujące adhezję w celu rozróżnienia różnych fenotypów komórek lub poziomów ekspresji receptorów. Zrozumienie natury trajektorii toczenia się komórek na podłożach z wzorami receptorowymi jest niezbędne do inżynierii takich podłoży oraz projektowania tego typu urządzeń.
W niniejszej pracy przedstawiamy protokół badania trajektorii toczenia się komórek na asymetrycznych wzorach receptorów, które umożliwiają adhezję podczas toczenia2. Dobrze zdefiniowane wzory receptorów P-selectiny w skali μm zostały wytworzone za pomocą mikrodruku kontaktowego na powlekanych złotem szkiełkach, które następnie włączono do komory przepływowej. Komórki HL60 wykazujące ekspresję liganda PSGL-1 3 przepływały przez obszar z wzorowanymi liniami i były wizualizowane za pomocą odwróconego mikroskopu w polu jasnym. Komórki toczyły się i przemieszczały wzdłuż nachylonych krawędzi wzorów, co prowadziło do odchylenia bocznego1. Każda komórka zazwyczaj toczyła się na określonym dystansie wzdłuż krawędzi wzoru (zdefiniowanym jako długość śledzenia krawędzi), odrywała się od niej i ponownie przytwierdzała do wzoru znajdującego się poniżej nurtu. Choć odrywanie się to utrudnia śledzenie całej trajektorii komórki od momentu wejścia do komory przepływowej aż do wyjścia z niej, do analizy i wyznaczenia trajektorii toczenia się komórek w czasie ich przemieszczania się po pojedynczej linii z wzorem receptorów wykorzystano oprogramowanie do śledzenia cząstek. Następnie przeanalizowano trajektorie w celu uzyskania rozkładów prędkości toczenia się komórek oraz długości śledzenia krawędzi dla każdej komórki w przypadku różnych wzorów.
Niniejszy protokół jest przydatny do ilościowego określania trajektorii toczenia się komórek na wzorach receptorowych oraz odnoszenia ich do parametrów inżynieryjnych, takich jak kąt wzoru i naprężenie ścinające. Takie dane będą użyteczne przy projektowaniu urządzeń mikroprzepływowych do bezetykietowej separacji i analizy komórek.

Opisujemy protokół obserwacji i analizy trajektorii toczenia się komórek na podłożach z asymetrycznym wzorem receptorów. Uzyskane dane są przydatne przy projektowaniu podłoży z wzorem receptorów do bezznakowej separacji i analizy komórek.

Badanie trajektorii toczenia się komórek na asymetrycznych wzorach receptorów

Boczne przemieszczenie komórek prostopadle do strumienia przepływu poprzez toczenie się po asymetrycznych wzorach receptorowych stwarza możliwość opracowania nowych...

Niniejszy protokół opisuje obserwację i analizę trajektorii toczenia się komórek na asymetrycznych wzorach receptorów, co ma na celu ułatwienie projektowania podłoży z wzorami receptorów do bezznacznikowej separacji i analizy komórek. Procedurę rozpoczyna się od mikrokontaktowego drukowania cząsteczek PEG na złotym podłożu w celu stworzenia naprzemiennych wzorów samozgromadzone monowarstw, a następnie wypełnienia pozostałych przestrzeni podłoża receptorami P-selectyny. Następnie podłoże montuje się w komorze przepływowej. Do komory wprowadza się komórki HL 60 w przepływie.Należy zarejestrować sekwencję obrazów reprezentującą interakcję toczącą się komórek HL 60 na wzorach P-selektyny, a następnie przeanalizować obrazy przekonwertowane z wideo. Trajektorie toczących się komórek, długość śledzenia krawędzi oraz prędkości toczenia się na płaszczyźnie, w obszarze i na krawędzi mogą zostać uzyskane za pomocą programu MATLAB. Metoda ta pozwala zrozumieć, w jaki sposób komórki HL 60 poruszają się na asymetrycznych wzorach receptorów w przepływie ścinającym.Metodę tę można zastosować do kwantyfikacji innych oddziaływań powierzchniowych komórek, bezpośredniej analizy komórek poprzez obserwację ich trajektorii na wzorach receptorów oraz do projektowania urządzeń mikroskalowych do separacji komórek. Drukowanie mikrokontaktowe jest wykorzystywane do tworzenia naprzemiennych wzorów samoorganizujących się monowarstw cząsteczek peg na podłożu złota.Najpierw nanieś na stempel PDMS roztwór PEG o stężeniu 5 mM w etanolu. Susz powierzchnię przez 20 minut. Delikatnie przyłóż stempel do powierzchni złota na 40 sekund, upewniając się, że zachodzi dobry kontakt między powierzchnią złota a stemplem.Nadciśnienie nie jest wymagane. Przepłucz powierzchnię etanolem i osusz strumieniem azotu. Następnie, używając komory perfuzyjnej, inkubuj podłoża w roztworze P-selektyny o stężeniu 15 µg/mL przez trzy godziny w temperaturze pokojowej, aby pokryć pozostałe obszary P-selektyną; przepłucz komorę, a następnie wypełnij pozostałe wolne miejsca BSA o stężeniu 1 mg/mL przez jedną godzinę, aby zablokować niespecyficzne oddziaływania.Przed przeprowadzeniem eksperymentu z toczeniem się komórek należy przepłukać powierzchnię buforem DPBS. Złożyć komorę przepływową, a następnie przepuścić zawiesinę komórek HL 60 o stężeniu 10⁵ komórek/ml nad powierzchniami z wzorem w prostokątnej komorze przepływowej z kątem nachylenia wzoru receptorów wynoszącym 10 stopni.W temperaturze pokojowej 24,5 °C. Ustaw pompę strzykawkową tak, aby uzyskać szybkość przepływu 75 µL/min z odpowiadającym jej laminarnym naprężeniem ścinającym 0,5 dyn/cm². Następnie, korzystając z mikroskopu odwróconego i zamontowanej kamery, zarejestruj toczenie komórek HL 60.Interakcje z adhezywną P-selektyną i podłożami. Przy użyciu obiektywu 4x przy szybkości jednej klatki na sekundę przez czas 300 sekund. Przeprowadzić trzy niezależne eksperymenty.Dane należy przedstawić jako średnią i odchylenie standardowe wartości średnich uzyskanych z każdego eksperymentu. Zdjęcia mikroskopowe przekonwertowane z nagrania wideo HL 60.Rolling. Interakcje z adhezyjnym p-selektyną i podłożami wykazują jasne i ciemne obszary odpowiadające odpowiednio receptorom p-selektyny oraz obszarom PEG.Ślady są wyznaczane przy użyciu dostosowanego programu MATLAB. Kąt nachylenia krawędzi wynosił 10 stopni, a naprężenie ścinające 0,5 dines na centymetr kwadratowy. Dalsze analizy oparto na rozkładzie długości śledzenia krawędzi, średniej wartości długości śledzenia krawędzi, a także VE i VP, czyli prędkościach toczenia się na krawędziach i wewnątrz pasm.Po obejrzeniu tego filmu powinni Państwo dobrze rozumieć, w jaki sposób badać trajektorie komórek w asymetrycznych wzorcach receptorów.

studying-cell-rolling-trajectories-on-asymmetric-receptor-patterns

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bioinżynieria

Niniejszy raport przedstawia wizualizację analizy w komorze przepływowej z równoległymi płytkami, służącej do badania oddziaływań leukocytów z śródbłonkiem w warunkach fizjologicznego naprężenia ścinającego. Metoda ta jest szczególnie użyteczna w badaniu roli selektyny E (E-selectin) oraz ligandów selektyny E na leukocytach, które inicjują toczenie się leukocytów po powierzchniach komórek śródbłonka.

Analiza fizjologicznego toczkowania leukocytów zapśredniczonego przez E-selektynę na śródbłonku mikrokrążenia

Niniejszy protokół opisuje opracowanie urządzenia mikroprzepływowego do badania chemotaksji bakteryjnej w stabilnych gradientach stężeń chemoefektorów.

Urządzenie mikroprzepływowe do ilościowego oznaczania chemotaksji bakteryjnej w stabilnych gradientach stężeń

To badanie wykorzystało wielodołkowy system mikroprzepływowy, znacznie zwiększając przepustowość badań toczenia komórek pod fizjologicznie istotnym przepływem ścinającym. Biorąc pod uwagę znaczenie zwijania komórek w wieloetapowej kaskadzie naprowadzania komórek oraz znaczenie naprowadzania komórek po ogólnoustrojowym dostarczeniu egzogennych populacji komórek u pacjentów, system ten oferuje potencjał jako platforma przesiewowa w celu ulepszenia terapii opartej na komórkach.

Systematyczna analiza walcowania komórek in vitro przy użyciu systemu mikroprzepływowego z wielodołkową płytką

Ten protokół opisuje, jak używać mikroskopii fluorescencyjnej całkowitego wewnętrznego odbicia do wizualizacji i śledzenia pojedynczych receptorów na powierzchni żywych komórek, a tym samym do analizy bocznej ruchliwości receptora, wielkości kompleksów receptorowych, a także do wizualizacji przejściowych interakcji receptor-receptor. Protokół ten można rozszerzyć na inne białka błonowe.

Wysokorozdzielcza czasoprzestrzenna analiza dynamiki receptorów za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej pojedynczych cząsteczek

Wizualne testy chemotaksji są niezbędne do lepszego zrozumienia, w jaki sposób komórki eukariotyczne kontrolują kierunkową migrację komórek za pośrednictwem chemoatraktantu. W tym miejscu opisujemy szczegółowe metody dla: 1) monitorowania w czasie rzeczywistym w wysokiej rozdzielczości wielu testów chemotaksji oraz 2) jednoczesnej wizualizacji gradientu chemoatraktantu i czasoprzestrzennej dynamiki zdarzeń sygnalizacyjnych w neutrofilopodobnych komórkach HL60.

Obrazowanie chemotaksji sprzężonej z białkiem G i jej zdarzeń sygnalizacyjnych w neutrofilowych komórkach HL60

Tutaj prezentujemy protokół do analizy obrazu śledzenia pojedynczych cząstek, który umożliwia ilościową ocenę współczynników dyfuzji, typów ruchu i rozmiarów klastrów pojedynczych cząstek wykrywanych przez mikroskopię fluorescencyjną.

Protokół przetwarzania obrazu do analizy wielkości dyfuzji i klastra receptorów błonowych za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej

Celem tego protokołu jest pokazanie, jak używać mikroskopii świetlnej do czterowymiarowej wizualizacji dynamiki receptorów powierzchniowych w żywych komórkach. Tutaj pokazano receptory limfocytów T na pierwotnych limfocytach T CD4 +.

Czterowymiarowa wizualizacja dynamiki powierzchniowego receptora limfocytów T przy użyciu mikroskopii świetlnej kratowej

Siły mechaniczne są ważne dla kontrolowania migracji komórek. Protokół ten demonstruje użycie elastycznych hydrożeli, które można odkształcić za pomocą szklanej mikropipety i mikromanipulatora w celu stymulacji komórek za pomocą lokalnego gradientu sztywności w celu wywołania zmian w strukturze komórki i migracji.

Test durotaksji pojedynczej komórki do oceny mechanicznej kontroli ruchu komórkowego i powiązanych zdarzeń sygnalizacyjnych

W tym protokole prezentujemy eksperymentalne procedury testu rozprzestrzeniania się komórek, który opiera się na mikroskopii żywych komórek. Dostarczamy narzędzie obliczeniowe typu open source do bezstronnej segmentacji komórek znakowanych fluorescencyjnie i ilościowej analizy dynamiki lamellipodiów podczas rozprzestrzeniania się komórek.

Analiza ilościowa dynamiki krawędzi komórek podczas rozprzestrzeniania się komórek

Ten protokół przedstawia eksperymentalne procedury przeprowadzania testu śladu adhezyjnego w celu zobrazowania zdarzeń adhezji podczas szybkiej adhezji toczenia komórek.

Obrazowanie adhezji molekularnej w walcowaniu komórek za pomocą testu śladu adhezyjnego

Ten protokół ma na celu zmierzenie parametrów dynamicznych (wypukłości, retrakcje, falbany) wypukłości na krawędzi komórek rozsiewających.

Pomiar dynamiki wypukłości krawędzi komórki podczas rozprzestrzeniania się za pomocą mikroskopii żywych komórek

Poznaj metodę analizy trajektorii toczenia się komórek HL-60 na asymetrycznych wzorcach receptorów P-selectin. Technika mikrokontaktowego drukowania umożliwia inżynierię podłoży do bezetykietowej separacji komórek.

Badanie trajektorii toczenia się komórek na asymetrycznych wzorach receptorów

Przeglądaj więcej filmów