Name: Oznaczanie stężenia kwasów nukleinowych i białek za pomocą mikroobjętościowego spektrofotometru Bio-spec Nano (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-02-17T18:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 15 s
Description: Poznaj dokładne oznaczanie stężenia kwasów nukleinowych i białek za pomocą mikroobjętościowego spektrofotometru BioSpec-nano. Ta metoda zapewnia szybkie, precyzyjne i wysoko powtarzalne wyniki pomiarów.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

1. Procedura oznaczania ilości DNA
<ol>
 <li>Włącz urządzenie.</li>
 <li>Uruchom oprogramowanie BioSpec-nano z pulpitu komputera PC.</li>
 <li>Kliknij zakładkę Simple Nucleic Acid -dsDNA (Rysunek 1).</li>
 <li>Oprogramowanie nawiąże komunikację z urządzeniem i uruchomi sekwencję inicjalizacyjną. Pozwala to zweryfikować, czy urządzenie działa zgodnie ze specyfikacją.</li>
 <li>Na suwaku długości drogi optycznej wybierz 0,7 lub 0,2 mm. Wybór ten określa długość drogi optycznej, na której opierane są wszystkie obliczenia.</li>
 <li>Następnie w oprogramowaniu BioSpec-nano kliknij Setup-Autowiping setup. Wybierz opcję 1 lub 2.</li>
 <li>Nanieś pipetą 2 μL (dla 0,7 mm) H2O lub buforu na postument.</li>
 <li>Kliknij blank lub F6, aby wykonać pomiar próbki ślepej. Przy każdym wyborze nowej długości drogi optycznej konieczne jest zarejestrowanie próbki ślepej.</li>
 <li>Nanieś pipetą 2 μL próbki na postument.</li>
 <li>Kliknij Start w oprogramowaniu lub naciśnij przycisk start na urządzeniu. Górne okno przesuwa się, aby nawiązać kontakt z kroplą próbki. Można zaobserwować błyski lampy ksenonowej.</li>
 <li>Powtórz pomiar tej samej próbki 3 razy, aby określić powtarzalność.</li>
 <li>Wszystkie zarejestrowane dane są zapisywane jako plik .bud.</li>
 <li>Aby zapisać dane jako plik .pdf lub .csv, kliknij save pdf/csv lub F9. Wyniki można również zapisać jako plik .csv, korzystając z odpowiedniego wyboru w zakładce zapisu.</li>
</ol>
2. Protokół oznaczania ilości białka
<ol>
 <li>Wybierz zakładkę Protein Quantitation (Rysunek 2).</li>
 <li>Wprowadź współczynnik ekstynkcji e280, jeśli jest znany.</li>
 <li>Jeśli e280 nie jest znany, oblicz go za pomocą funkcji e280Calc.</li>
 <li>Wybierz 0,7 lub 0,2 mm na suwaku długości drogi optycznej.</li>
 <li>Kliknij Setup-Autowiping setup. Wybierz wartość 2 lub wyższą.</li>
 <li>Nanieś pipetą 3 μL (dla 0,2 mm) H2O lub buforu na piedestał.</li>
 <li>Kliknij blank lub F6, aby przeprowadzić pomiar tła.</li>
 <li>Nanieś pipetą 3 μL próbki białka na piedestał.</li>
 <li>Kliknij Start w oprogramowaniu lub naciśnij przycisk start na urządzeniu.</li>
 <li>Powtórz pomiar tej samej próbki 3 razy, aby określić powtarzalność.</li>
 <li>Wszystkie zarejestrowane dane są zapisywane jako plik .bud.</li>
 <li>Aby zapisać dane jako plik .pdf lub .csv, kliknij save pdf/csv lub F9.</li>
</ol>
3. Reprezentatywne wyniki:
1. Wyniki oznaczania ilości DNA
Rysunek 3 przedstawia dane z pomiarów typowej próbki dwuniciowego DNA. Przedstawiono również obliczone stężenie oraz stosunek OD 260/280. Rysunek 4 zawiera wyniki testów powtarzalności oznaczania ilości DNA. Dane na rysunkach 3 i 4 wykazują, że wyniki są wysoce powtarzalne, co potwierdza niskie względne odchylenie standardowe wynoszące 0,26%.
Uwaga 1: 
Błędy w ilościowym oznaczaniu DNA mogą wynikać z obecności składników buforu, które mogą absorbować promieniowanie w obszarze UV. Konieczne jest również stosowanie jednorodnego roztworu próbki. Ponieważ pipetowana objętość próbki wynosi zaledwie 1-2 μL, wymagane jest precyzyjne pipetowanie dokładnych objętości, bez wprowadzania pęcherzyków powietrza.
2. Wyniki oznaczania ilości białka
Rysunek 5 przedstawia analizę stężenia białka dla BSA. Stężenie białka w μg/ mL oparto na wartości e280. Rysunek 6 przedstawia analizę powtarzalności. Względne odchylenie standardowe wynoszące 0,51% wskazuje, że BioSpec-nano precyzyjnie mierzy stężenie – nie tylko w przypadku DNA, ale również białek.
Uwaga 2: Czynniki wpływające na stężenie białka
Dokładne oznaczenie stężenia białka jest możliwe, gdy wpływ niestabilności wywołanej przez pH, bufory, temperaturę lub dodatki jest minimalny. Większość oczyszczonych białek przechodzi przez różne etapy przetwarzania; w związku z tym możliwe jest, że białko zawiera detergenty lub inne dodatki, które mogą zakłócać formowanie się kropli. W przypadku takich próbek wysoce zaleca się stosowanie kuwety kwarcowej o drodze optycznej 5 mm.
<img src="/files/ftp_upload/2699/2699fig1.jpg" alt="interfejs BioSpec-nano; oznaczanie ilości kwasów nukleinowych; opcje analizy DNA; metoda spektroskopowa." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rysunek 1"> 
Rycina 1. Okno wyboru analitycznie mierzonego związku do oznaczania ilościowego dwuniciowego DNA
<img src="/files/ftp_upload/2699/2699fig2.jpg" alt="Konfiguracja oznaczania ilości białka z wykorzystaniem oprogramowania BioSpec-nano w celu obliczenia OD280 i wprowadzenia masy cząsteczkowej." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 2"> 
Rycina 2. Okno wyboru analitycznego dla ilościowego oznaczania nieznakowanych białek
<img src="/files/ftp_upload/2699/2699fig3.jpg" alt="Wykres ilościowego oznaczania kwasów nukleinowych, dane ze spektrofotometru, analiza OD260/280, konfiguracja urządzenia Shimadzu." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rysunek 3"> 
Rysunek 3. Reprezentatywne dane dla oznaczania ilości DNA
<img src="/files/ftp_upload/2699/2699fig4.jpg" alt="Tabela danych Pathlength, przedstawiająca wyniki testów, średnią (201,2183 ng/μL) oraz odchylenie standardowe (0,5143)." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 4"> 
Rycina 4. Dane dotyczące powtarzalności oznaczania ilości DNA
<img src="/files/ftp_upload/2699/2699fig5.jpg" alt="Analiza stężenia białka z wykorzystaniem spektrofotometrii; przedstawiono wykres zależności absorbancji od długości fali." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 5"> 
Rycina 5. Reprezentatywne dane dla oznaczania ilości białka
<img src="/files/ftp_upload/2699/2699fig6.jpg" alt="Tabela wyników chromatografii; dane dotyczące długości ścieżki w stosunku do stężenia testowego; wyświetlona analiza statystyczna." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 6"> 
Rysunek 6. Dane dotyczące powtarzalności oznaczania ilości białka

<ol><li>Aisubel, F. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aAisubel%2C+F+%22Short+Protocols+in+Molecular+Biology%22">Short Protocols in Molecular Biology</a>. , 4th edition, WILEY. (1999).</li>
<li>Pace, C. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+to+measure+and+predict+molar+absorption+coefficient+of+a+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Protein+Science%22%5BJournal%5D)">How to measure and predict molar absorption coefficient of a protein.</a> Protein Science. 4, 2411-2423 Forthcoming.</li>
</ol>

Dr Suja Sukumaran jest pracownikiem firmy Shimadzu, która produkuje instrument przedstawiony w niniejszym artykule.

Urządzenie BioSpec-nano zostało zaprojektowane w celu rozwiązania aktualnych problemów właściwych dla metod oznaczania ilości DNA, takich jak niespójne wyniki i uciążliwa praca manualna. Każdy pomiar trwa zaledwie 3 sekundy, co pozwala doświadczonemu biologowi molekularnemu na analizę około 3-6 próbek w ciągu minuty. Unikalna funkcja wycieraczki nie tylko zwiększa przepustowość pomiarów, ale także eliminuje konieczność ręcznego czyszczenia podstawek, co skutkuje pomijalną kontaminacją krzyżową między pomiarami. Ponadto testy z wykorzystaniem zaledwie 2 przetarć dla próbek DNA zawierających 1000 ng/μL wykazały przeniesienie materiału na poziomie poniżej 2 ng/μL.
Dostępność kuwety o długości drogi optycznej 5 mm umożliwia analizę rozcieńczonych próbek kwasów nukleinowych i białek oraz rozszerza zastosowanie tego instrumentu o inne aplikacje.

<table><tbody><tr><td>BioSpec-nano</td><td>Shimadzu Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DNA z tymusu cielęcego</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Swojowa albumina surowicza</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

oznaczanie stężenia kwasów nukleinowych i białek przy użyciu mikroobjętościowego spektrofotometru bio-spec nano

Concentration Determination of Nucleic Acids and Proteins Using the Micro-volume Bio-spec Nano Spectrophotometer

Procedury oznaczania ilości kwasów nukleinowych poczyniły znaczne postępy w ciągu ostatnich trzech dekad. Biolodzy molekularni coraz częściej wymagają spójnej analizy próbek kwasów nukleinowych w małych objętościach na potrzeby swoich eksperymentów. Urządzenie BioSpec-nano stanowi potencjalne rozwiązanie problemów związanych z niedokładnymi i niepowtarzalnymi wynikami, które są nieodłączne w obecnych metodach oznaczania ilości DNA, dzięki zastosowaniu specjalistycznej optyki i czułego detektora PDA. BioSpec-nano posiada również zautomatyzowane funkcje, dzięki którym montaż, pomiar i czyszczenie są wykonywane przez instrument, co eliminuje żmudne, powtarzalne i niespójne rozmieszczanie elementu światłowodowego oraz ręczne czyszczenie.
W niniejszym badaniu przedstawiono dane dotyczące kwantyfikacji DNA i białek, a także powtarzalności i dokładności pomiarów. Zautomatyzowany kontakt z próbką oraz szybkie skanowanie umożliwiają wykonanie pomiaru w ciągu trzech sekund, co zapewnia doskonałą przepustowość. Analiza danych jest przeprowadzana przy użyciu wbudowanych funkcji oprogramowania. Formuła wykorzystywana do obliczania stężenia DNA to:
Stężenie próbki = DF · (OD260-OD320)· NACF (1)
Gdzie DF = współczynnik rozcieńczenia próbki, a NACF = współczynnik stężenia kwasów nukleinowych.
Współczynnik koncentracji kwasów nukleinowych jest ustawiany zgodnie z wybranym analitytem1.
Wyniki stężenia białka mogą być wyrażone w μg/mL lub w molach/L poprzez odpowiednie wprowadzenie wartości e280 oraz masy cząsteczkowej. Po wprowadzeniu liczby reszt Tyr, Trp oraz cysteiny (wiązanie S-S) w zakładce e280Calc, wartości współczynnika ekstynkcji są obliczane według wzoru e280 = 5500 x (reszty Trp) + 1490 x (reszty Tyr) + 125 x (wiązania S-S cysteiny). Wartość e280 jest wykorzystywana przez oprogramowanie do obliczenia stężenia.
Oprócz oznaczania stężenia kwasów nukleinowych i białek, BioSpec-nano może być wykorzystywany jako spektrofotometr ultramikroobjętościowy dla wielu innych analitów lub jako standardowy spektrofotometr przy użyciu kuwet o drodze optycznej 5 mm.

Niniejszy komunikat przedstawia dane dotyczące dokładności i powtarzalności spektrofotometru UV-VIS BioSpec-nano w oznaczaniu ilościowym dsDNA oraz białek. Nawet przy ultra małych objętościach (1 do 2 µL) powtarzalność jest doskonała, natomiast zautomatyzowana funkcja przecierania zwiększa wydajność i minimalizuje zjawisko przeniesienia próbki, co pozwala na uzyskanie bardziej precyzyjnych wyników.

Oznaczanie stężenia kwasów nukleinowych i białek przy użyciu mikroobjętościowego spektrofotometru Bio-spec Nano

Procedury oznaczania ilości kwasów nukleinowych znacząco rozwinęły się w ciągu ostatnich trzech dekad. Biologowie molekularni coraz częściej wymagają spójnych ...

Ogólnym celem niniejszej procedury jest dokładne i powtarzalne oznaczenie stężeń kwasów nukleinowych oraz białek przy użyciu mikroobjętościowego spektrofotometru. Jest to realizowane poprzez wybór odpowiedniej długości drogi optycznej dla mierzonej próbki. Drugim krokiem procedury jest pomiar próbki ślepej.Następnie dokonuje się pomiaru próbki DNA lub białka. Ostatnim krokiem procedury jest zapisanie danych w formacie PDF lub CSV. W efekcie uzyskuje się wysoce powtarzalne wyniki dla DNA i białka.Ilościowe oznaczenie można przeprowadzić szybko i dokładnie za pomocą tej metody. Główną zaletą tej techniki jest jej szybkość, precyzja i powtarzalność. Aby rozpocząć procedurę oznaczania ilości DNA, włącz spektrofotometr BIOS spec nano.Otwórz oprogramowanie BIOS spec nano z pulpitu komputera. Kliknij kartę simple nucleic acid D-S-D-N-A. Oprogramowanie nawiąże komunikację z urządzeniem i uruchomi sekwencję inicjalizacji.Potwierdza to, że instrument działa zgodnie ze specyfikacją. Następnie należy wybrać długość drogi optycznej za pomocą suwaka długości drogi optycznej.Dostępne są trzy opcje dla próbek o objętości mikrolitrowej. Można zastosować kuwetę o drodze optycznej 0,2 mm lub 0,7 mm. W przypadku próbek rozcieńczonych istnieje możliwość użycia kuwety o drodze optycznej 5 mm.W tym pokazie do pomiaru próbki o objętości 2 µL wybrano wartość 0,7 mm. Wszystkie obliczenia opierają się na wybranej długości drogi optycznej. Następnie w oprogramowaniu należy kliknąć kartę konfiguracji i wybrać ustawienia automatycznego wycierania.Wybierz jedną sztukę do jednego przetarcia. Przed pomiarem próbki lub za każdym razem po wybraniu nowej długości drogi optycznej wymagane jest wykonanie pomiaru tła. Dla długości drogi optycznej 0,7 mm nanieś pipetą 2 µL wody lub buforu na postument. Kliknij blank, aby wykonać pomiar tła.Górne okienko przesunie się, aby nawiązać kontakt z kroplą próbki, a następnie widoczne będą błyski ksenonowe. Po zakończeniu pomiaru wycieraczka automatycznie usunie próbkę. Teraz można przeprowadzić pomiar próbki.Ważne jest użycie homogenicznego roztworu próbki, ponieważ obecność nierozpuszczonych cząstek w próbce spowoduje uzyskanie nieodtwarzalnych danych. Aby uniknąć wprowadzenia pęcherzyków powietrza, należy ostrożnie aspirować 2 µL próbki, a następnie równomiernie nanieść ją z końcówki pipety na postument.Naciśnij przycisk start w urządzeniu. Podobnie jak wcześniej, górne okno przesunie się, aby nawiązać kontakt z kropelką próbki, a następnie można zaobserwować błyski ksenonu. Aby określić powtarzalność, należy powtórzyć pomiar tej samej próbki trzy razy; wszystkie zarejestrowane dane są automatycznie zapisywane jako plik A BUD. Aby zapisać dane jako plik PDF lub CCSV, kliknij save P-D-F-C-S-V.Wyniki można również zapisać w formacie pliku CSV, korzystając z odpowiedniego wyboru w zakładce zapisu. Oznaczenie ilości białka można przeprowadzić metodą absorbancji przy dwóch długościach fali. Aby przeprowadzić oznaczanie ilości białka, należy wybrać zakładkę oznaczania ilości białka.Wprowadź współczynnik ekstynkcji epsilon 280, jeśli jest znany; jeśli epsilon 280 nie jest znany, oblicz go za pomocą funkcji Epsilon 280 calc. Na suwaku długości drogi optycznej wybierz 0,2 mm, aby zmierzyć próbkę o objętości 3 µL. Następnie w oprogramowaniu kliknij kartę setup i wybierz auto wiping setup. Wybierz wartość 2 dla dwóch cykli przecierania, aby zapobiec przenoszeniu próbek i zapewnić dokładny odczyt.Aby przeprowadzić pomiar tła, nanieś trzy µL wody lub buforu na podstawkę, a następnie kliknij „blank”, aby zmierzyć tło. Następnie ostrożnie nanieś trzy µL próbki białka na podstawkę. Kliknij „start” w oprogramowaniu lub naciśnij przycisk start na urządzeniu, aby rozpocząć pomiar próbki, dbając o to, by nie wprowadzić pęcherzyków powietrza.Powtórz pomiar tej samej próbki trzy razy, aby określić wykazaną powtarzalność. Poniżej znajdują się dane z pomiarów typowej próbki dwuniciowego DNA. Wzór stosowany do obliczania stężenia DNA to: stężenie próbki równa się DF pomnożone przez wartość OD 260 minus OD 320 pomnożone przez NACF, gdzie DF oznacza czynnik rozcieńczenia próbki, a NACF oznacza czynnik stężenia kwasów nukleinowych.Współczynnik stężenia kwasów nukleinowych jest ustawiany zgodnie z wybranym analitym. Wyświetlane są obliczone stężenie kwasów nukleinowych oraz stosunek OD 260/280. Tabela ta zawiera wyniki testów powtarzalności dla oznaczania ilości DNA.Zestawione dane wykazują wyniki o wysokiej powtarzalności, co potwierdza niska względna odchyłka standardowa wynosząca 0.26%. Przedstawiono tutaj reprezentatywne wyniki analizy stężenia białka dla BSA. Stężenie białka w µg/mL oparto na wartości Epsilon 280. Na koniec, tabela ta przedstawia analizę powtarzalności oznaczania ilości białka.Względna odchyłka standardowa wynosząca 0,51% wskazuje, że BIOS spec nano dokonuje dokładnych pomiarów nie tylko w przypadku DNA, ale również białek. Po opanowaniu tej metody można analizować wiele próbek w ciągu jednej minuty.

concentration-determination-nucleic-acids-proteins-using-micro-volume

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Oznaczanie stężenia kwasów nukleinowych i białek za pomocą mikrowolumenowego spektrofotometru Bio-spec Nano

Próbki o mikroobjętości są kwantyfikowane za pomocą systemu spektrofotometrycznego, który wykorzystuje naturalne napięcie powierzchniowe do utrzymania próbek bez użycia kuwet lub kapilar. Zakres dynamiczny stężeń białek oraz szybkość ich pomiaru są znacznie zwiększone dzięki zastosowaniu tej metody.

Oznaczanie stężenia białek w mikroobjętościach z wykorzystaniem spektrofotometru NanoDrop 2000c

Spektrometria mas okazała się cennym narzędziem do analizy dużych kompleksów białkowych. Metoda ta umożliwia uzyskanie wglądu w skład, stechiometrię i ogólną architekturę wielopodjednostkowych kompleksów. W niniejszej pracy opisujemy krok po kroku, jak przeprowadzić strukturalną analizę spektrometryczną oraz scharakteryzować struktury makromolekularne.

Analiza dużych kompleksów białkowych za pomocą strukturalnej spektrometrii mas

Zastosowanie systemów mikroobjętościowych NanoDrop jako praktycznych i wydajnych alternatyw dla tradycyjnej metodologii oznaczania ilości kwasów nukleinowych opisano poprzez prezentację dwóch protokołów mikroobjętościowego oznaczania ilości kwasów nukleinowych.

Mikroobjętościowe oznaczanie ilościowe kwasów nukleinowych za pomocą NanoDrop

Opisano protokół analizy śledzenia nanocząstek (NTA) i wysokoprzepustowej cytometrii przepływowej do oceny nanocząstek dostarczających geny polimerowe. NTA wykorzystuje się do scharakteryzowania rozkładu wielkości cząstek nanocząstek i rozkładu plazmidu na cząstkę. Wysokoprzepustowa cytometria przepływowa umożliwia ilościową ocenę skuteczności transfekcji dla biblioteki biomateriałów dostarczających geny.

Ocena nanocząstek dostarczających geny polimerowe za pomocą analizy śledzenia nanocząstek i wysokoprzepustowej cytometrii przepływowej

Sondy optyczne oparte na nanocząstkach zostały zaprojektowane jako nośnik do wykrywania antygenów za pomocą spektroskopii Ramana i UV-Vis. W tym miejscu opisujemy protokół przygotowania takich sond do testu immunologicznego spektroskopii UV-Vis/Ramana w taki sposób, aby uwzględnić przyszłe możliwości multipleksowania.

Wytwarzanie platformy testów immunologicznych UV-VIS i spektroskopii Ramana

Opisujemy zastosowanie nanospektroskopii w podczerwieni i mikroskopii sił atomowych o wysokiej rozdzielczości do wizualizacji procesu samoorganizacji białek w agregaty oligomeryczne i fibryle amyloidowe, co jest ściśle związane z powstawaniem i rozwojem szerokiego zakresu ludzkich zaburzeń neurodegeneracyjnych.

Charakterystyka poszczególnych agregatów białkowych za pomocą nanospektroskopii w podczerwieni i mikroskopii sił atomowych

Pokazujemy, jak używać nowatorskiego instrumentu do analizy śledzenia nanocząstek, aby oszacować rozkład wielkości i całkowite stężenie cząstek pęcherzyków zewnątrzkomórkowych wyizolowanych z mysiej tkanki tłuszczowej okołokomórkowej i ludzkiego osocza.

Analiza śledzenia nanocząstek w celu ilościowego określenia i określenia wielkości pęcherzyków zewnątrzkomórkowych

Tutaj opisujemy produkcję i charakterystykę czynników bioaktywnych zawierających nanodyski. Nanodyski amfoterycyny B są traktowane jako przykład, aby opisać protokół w sposób krokowy.

Formulacja i charakterystyka czynnika bioaktywnego zawierającego nanodyski

Tutaj ustalamy metodę analizy ilościowej dla czterech składników systemu dostarczania RNA nanocząsteczek lipidowych (LNP) za pomocą wysokosprawnej chromatografii cieczowej połączonej z detektorem rozpraszania światła wyparnego (ELSD). Metoda charakteryzuje się dobrą separacją, wysoką czułością i wysoką wydajnością.

Oznaczanie czterech składników w systemie dostarczania nanocząstek lipidowych RNA za pomocą chromatografii cieczowej połączonej z detektorem rozpraszania światła wyparnego

W niniejszym opracowaniu opisano procedurę stosowaną w Grupie Biologii Strukturalnej i Funkcjonalnej Białek Błonowych Caffreya w celu ręcznego przygotowania prób krystalizacji białek błonowych w mezofazach lipidowych.

Krystalizacja białek błonowych do wyznaczania struktury z wykorzystaniem mezofaz lipidowych

Poznaj dokładne oznaczanie stężenia kwasów nukleinowych i białek za pomocą mikroobjętościowego spektrofotometru BioSpec-nano. Ta metoda zapewnia szybkie, precyzyjne i wysoko powtarzalne wyniki pomiarów.

Oznaczanie stężenia kwasów nukleinowych i białek przy użyciu mikroobjętościowego spektrofotometru Bio-spec Nano

Przeglądaj więcej filmów