Name: Cewnikowanie wspomagane drutem prowadzącym i iniekcja kolorowego barwnika do mapowania naczyniowego bliźniaczych łożysk jednokosmówkowych (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-09-05T12:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 4 s
Description: Poznaj technikę cewnikowania wspomaganego drutem prowadzącym i iniekcji barwnika do mapowania naczyń łożysk bliźniaczych jednokosmówkowych. Ta metoda umożliwia wizualizację połączeń naczyniowych i ocenę skuteczności terapii laserowej.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

1. Przygotowanie łożyska
<ol>
<li>Łożysko należy pobrać z sali porodowej jak najszybciej po porodzie, aby zminimalizować tworzenie się skrzepów, wysychanie i ogólną degradację tkanki.</li>
<li>Należy dopilnować, aby łożysko nie miało kontaktu z formaliną ani innymi utrwalaczami.</li>
<li>Należy przestrzegać standardowych środków ostrożności BSL2 dla tkanek ludzkich, a personel powinien nosić maseczkę, fartuch, rękawiczki i ochraniacze na obuwie.</li>
<li>Umieścić łożysko w dużej plastikowej lub metalowej misce z wcześniejszymi nacięciami otworów, umożliwiającymi odpływ płynu. Miskę tę należy umieścić w większej misce ze stali nierdzewnej, aby zapobiec rozlaniu płynów.</li>
<li>Przemyć łożysko ciepłą solą fizjologiczną.</li>
<li>W celu lepszej wizualizacji łożyska, użyć nożyczek Metzenbauma do wycięcia błon owodniowych między bliźniętami, dbając o to, aby nie uszkodzić samego łożyska. Pozostawić mankiet błony między bliźniętami o szerokości ½ cm (Rycina 1A).</li>
</ol>
2.	Kaniulacja naczyń łożyska
<ol>
<li>Zidentyfikuj pępowiny odpowiednich bliźniąt. Położnicy zazwyczaj identyfikują każde z bliźniąt na podstawie liczby zacisków umieszczonych na każdej pępowinie. Należy upewnić się, która pępowina należała do bliźnięcia prezentującego (bliźnięcie A).</li>
<li>Przecinaj kolejno każdą pępowinę tuż poniżej zacisków (Rysunek 1B), pamiętając, która pępowina jest którą. Delikatnie wyciśnij skrzep z naczyń (Rysunek 1C). Na krawędzi cięcia pępowiny znajduje się jedna żyła i co najmniej jedna, zazwyczaj dwie, tętnice. Tętnice rozpoznaje się po relatywnie mniejszej średnicy (w porównaniu do żyły) oraz otaczającej je mankiet mięśniowy (Rysunek 1D).</li>
<li>Użyj standardowego drutu prowadzącego do kaniulacji tętnicy promieniowej o średnicy 0,46 mm i długości 80 cm (Arrow, Reading PA, USA) z miękkim końcem, aby uzyskać dostęp do otworu tętnicy na krawędzi cięcia pępowiny bliźnięcia A (Rysunek 1E).</li>
<li>Drut prowadzący należy wprowadzić na co najmniej 3 cm do naczynia. Delikatne naprężenie nienaczyniowej części krawędzi cięcia pępowiny za pomocą zacisku Kelly'ego znacznie ułatwia posuwanie drutu. Lekkie obracanie pępowiny w celu wyprostowania krętych naczyń może pomóc w przesuwaniu drutu. Należy zachować ostrożność, aby uniknąć powstania fałszywych kanałów.</li>
<li>Stosując technikę Seldingera, wprowadź przez drut do tętnicy cewnik polietylenowy o długości 20 cm i średnicy wewnętrznej 0,6-1,19 mm (Intramedic, Batavia IL, USA) z tępym, ściętym końcem dystalnym (Rysunek 1F). Należy uważać, aby nie wysunąć drutu podczas wprowadzania cewnika. Usuń drut po osadzeniu cewnika na głębokość co najmniej 3 cm w naczyniu.</li>
<li>Alternatywnie, niektóre grupy odnosiły sukcesy bez użycia drutu prowadzącego, stosując bezpośrednią kaniulację naczyń pępowinowych za pomocą cewników tętnicy pępowinowej. Chociaż technika ta sprawdza się w naszej praktyce, użycie drutu prowadzącego skróciło czas wykonywania przez nas procedury.</li>
<li>Do proksymalnego końca drenu przymocuj igłę o rozmiarze 18 G z tępym końcem (BD Biosciences, Franlik Lakes, NJ, USA). Potwierdź prawidłowe umieszczenie cewnika, wstrzykując niewielką ilość soli fizjologicznej do naczynia i obserwując udrożnienie tętnic dystalnych. Delikatne masowanie naczyń palcem podczas wstrzykiwania soli fizjologicznej może pomóc w usunięciu ewentualnych pozostałych skrzepów.</li>
<li>Uważnie powtórz kroki 2.3 do 2.6 dla żyły bliźnięcia A, dbając o to, aby nie wysunąć cewnika tętniczego.</li>
<li>Zawiąż kawałek taśmy pępowinowej wokół pępowiny i cewników 1 cm dystalnie od krawędzi cięcia. Zapewnij szczelne zamknięcie, aby uniknąć cofania się płynu.</li>
<li>Powtórz kroki 2.3 do 2.9 dla pępowiny bliźnięcia B (bliźnięcia nieprezentującego) w taki sposób, aby w tętnicy i żyle pępowinowej każdego z bliźniąt znajdowały się cewniki zabezpieczone taśmą pępowinową, a oba układy krążenia zostały przepłukane solą fizjologiczną (Rysunek 2).</li>
</ol>
3.	Wstrzykiwanie barwnika do naczyń łożyska
<ol>
<li>Do wizualizacji naczyń łożyska można użyć barwników patomorfologicznych, zawiesin baru, żelatyny lub innych lepkich barwników kolorowych. Należy wybrać cztery kontrastujące kolory do wstrzyknięcia do tętnic i żył bliźniąt A i B. Kolory tętnicy i żyły dla każdego z bliźniąt powinny być łatwo rozróżnialne. Powierzchowne anastomozy powinny być wykrywalne poprzez mieszanie się barwników i powstanie innego (mieszanego), łatwo zauważalnego koloru.</li>
<li>Używając strzykawki 3 ml, należy ręcznie wstrzyknąć barwnik do tętnicy bliźnięcia A pod niskim ciśnieniem. Delikatnie przesuwać jednym lub dwoma palcami wzdłuż naczyń w kierunku przepływu barwnika, aby zapewnić wypełnienie całego drzewa naczyniowego. W przypadku zidentyfikowania powierzchownej anastomozy naczyniowej można zastosować ręczną okluzję naczynia doprowadzającego, aby umożliwić wypełnienie pozostałej części łożyska naczyniowego o wyższym oporze (Rycina 3A).</li>
<li>Używając oddzielnej strzykawki 3 ml, należy ręcznie wstrzyknąć barwnik do tętnicy bliźnięcia B (Rycina 3B).</li>
<li>Powtórzyć kroki 3.2 i 3.3 w przypadku wstrzyknięć do żył.</li>
<li>Jeśli barwnik wycieka z uszkodzonego naczynia, należy przeprowadzić naprawę za pomocą cienkiej nici chirurgicznej i igłotrzymacza. Należy uważać, aby nie podwiązać całego naczynia.</li>
<li>Za pomocą cyfrowego aparatu o wysokiej rozdzielczości należy wykonać zdjęcie po każdym wstrzyknięciu. Po zakończeniu wszystkich wstrzyknięć należy wyjąć preparat z miseczek, umieścić go na neutralnym kolorystycznie tle i ponownie sfotografować (Rycina 4). Należy udokumentować liczbę i rodzaj połączeń widocznych między układami krążenia bliźniąt.</li>
</ol>
4. Reprezentatywne wyniki:
Wykazano, że anastomozy tętniczo-tętnicze (AA) działają „ochronnie”, ponieważ wiążą się ze znacznym zmniejszeniem ryzyka wystąpienia TTTS oraz z lepszymi wynikami dla obu bliźniąt5. Rycina 4 przedstawia łożysko monochorialne (MC) po wstrzyknięciu barwnika. AA zidentyfikowano prospektywnie za pomocą dopplerowskiego badania USG in utero. Znalezisko to potwierdzono poprzez zmieszanie się barwnika tętniczego bliźnięcia A (żółty) i bliźnięcia B (niebieski) w komunikującej się strukturze tętniczej (zielony, strzałka). Przedstawiono również anastomozę tętniczo-żylną (AV) z tętnicą bliźnięcia A (żółta) i żyłą bliźnięcia B (pomarańczowa) (grot strzałki). Ryciny 5 i 6 przedstawiają fotografie dwóch innych wstrzykniętych preparatów łożyska.
<img src="/files/ftp_upload/2837/2837fig1.jpg" alt="Sekwencja techniki chirurgicznej na tkance łożyska, ilustrująca proces szycia, procedura kliniczna." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 1"> Rycina 1. (A) Błona owodniowa jest ostrożnie usuwana z powierzchni płodowej wspólnego łożyska MC za pomocą nożyczek Metzenbauma. (B) Czysty brzeg pępowiny bliźniaka A zostaje odsłonięty poprzez proksymalne przecięcie nożyczkami Metzenbauma. (C) Skrzep jest usuwany z pępowiny poprzez kompresję manualną. (D) Zidentyfikowano tętnice pępowinowe (groty strzałek) oraz żyłę pępowinową (strzałka) bliźniaka A. (E) Po umieszczeniu kleszczy Kelly'ego na beznaczyniowej części przekroju pępowiny w celu uzyskania trakcji, w tętnicy pępowinowej bliźniaka A umieszcza się drut prowadzący i ostrożnie przesuwa go przez kręte naczynie. (F) Następnie, przy użyciu techniki Seldingera, niewielki cewnik jest wprowadzany po drucie prowadzącym do światła naczynia.
<img src="/files/ftp_upload/2837/2837fig2.jpg" alt='"Struktura łożyska; badanie anatomiczne; schemat krążenia pępowinowego; zasób edukacyjny."' data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rysunek 2"> Rysunek 2. W jednej tętnicy pępowinowej oraz w żyle pępowinowej każdego z bliźniąt umieszczono cewniki. Cewniki te zostały unieruchomione za pomocą wiązań z taśmy pępowinowej wokół całej pępowiny. Poprawne umiejscowienie każdego cewnika zostało potwierdzone, a skrzepy wewnątrzświatłowe usunięto poprzez wstrzyknięcie ogrzanej soli fizjologicznej.
<img src="/files/ftp_upload/2837/2837fig3.jpg" alt="Anatomia naczyń łożyska, pępowina i układ tętnic; badanie anatomiczne." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 3"> Rycina 3. (A) Krążenie tętnicze bliźniaka A zostało wypełnione żółtym barwnikiem. Kontrast wyraźnie przechodzi przez równik naczyniowy do krążenia tętniczego bliźniaka B. (B) Krążenie tętnicze bliźniaka B zostało wypełnione niebieskim barwnikiem. Mieszanie się żółtego i niebieskiego barwnika skutkuje powstaniem koloru zielonego w obrębie wykazanego anastomozy AA (strzałka).
<img src="/files/ftp_upload/2837/2837fig4.jpg" alt="Ludzkie łożysko z widocznymi naczyniami krwionośnymi, badanie anatomiczne, schemat sieci naczyniowej, skala 5 cm." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 4"> Rycina 4. Zastrzyknięto żyłę bliźniaka A (czerwona) oraz żyłę bliźniaka B (pomarańczowa). Wyznaczono anastomozę AA (strzałka) oraz anastomozę AV z przepływem skierowanym od bliźniaka A w stronę bliźniaka B (grot strzałki).
<img src="/files/ftp_upload/2837/2837fig5.jpg" alt="Ludzka łożyska z kolorowymi naczyniami krwionośnymi; schemat biologiczny ilustrujący drogi krążenia." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 5"> Rycina 5. Przykład łożyska w przypadku bliźniąt z MC, które poddano terapii laserowej po wstrzyknięciu postnatalnym. Tętnica i żyła bliźnięcia-donora są odpowiednio w kolorze żółtym i zielonym. Tętnica i żyła bliźnięcia-biorcy są odpowiednio w kolorze niebieskim i pomarańczowym. Nie wykryto żadnych pozostałych połączeń między układami krążenia.
<img src="/files/ftp_upload/2837/2837fig6.jpg" alt="Anatomia łożyska z zaznaczonymi naczyniami; biologiczny preparat badawczy; analiza ukrwienia łożyska." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 6"> Rycina 6. Przykład łożyska bliźniąt monochorialnych (MC) po wstrzyknięciu. Tętnica i żyła bliźnięcia po lewej stronie są zaznaczone odpowiednio kolorem żółtym i czerwonym. Tętnica i żyła bliźnięcia po prawej stronie są zaznaczone odpowiednio kolorem niebieskim i pomarańczowym. Na powierzchni łożyska widoczne są AA (grot strzałki) oraz VV (strzałka).

<ol><li>Rand, L., Lee, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complicated+monochorionic+twin+pregnancies%3A+updates+in+fetal+diagnosis+and+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Perinatol%22%5BJournal%5D)">Complicated monochorionic twin pregnancies: updates in fetal diagnosis and treatment.</a> Clin Perinatol. 36, 417-430 (2009).</li>
<li>Sebire, N., Talbert, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Twin-to-twin+transfusion+syndrome+results+from+dynamic+asymmetrical+reduction+in+placental+anastomoses%3A+a+hypothesis%5BTitle%5D)+AND+%22in+Placenta%22%5BJournal%5D)">Twin-to-twin transfusion syndrome results from dynamic asymmetrical reduction in placental anastomoses: a hypothesis.</a> in Placenta. , (2001).</li>
<li>Machin, G. A., Keith, L. G. An atlas of multiple pregnancy: biology and pathology. , Parthenon Pub. Group. New York. (1999).</li>
<li>Machin, G. A., Feldstein, V. A., van Gemert, M. J., Keith, L. G., Hecher, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Doppler+sonographic+demonstration+of+arterio-venous+anastomosis+in+monochorionic+twin+gestation%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+Obstet+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Doppler sonographic demonstration of arterio-venous anastomosis in monochorionic twin gestation.</a> Ultrasound Obstet Gynecol. 16, 214-217 (2000).</li>
<li>Denbow, M. L., Cox, P., Taylor, M., Hammal, D. M., Fisk, N. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Placental+angioarchitecture+in+monochorionic+twin+pregnancies%3A+Relationship+to+fetal+growth%2C+fetofetal+transfusion+syndrome%2C+and+pregnancy+outcome%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Obstetrics+and+Gynecology%22%5BJournal%5D)">Placental angioarchitecture in monochorionic twin pregnancies: Relationship to fetal growth, fetofetal transfusion syndrome, and pregnancy outcome.</a> American Journal of Obstetrics and Gynecology. 182, 417-426 (2000).</li>
<li>Taylor, M. J. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Doppler+detection+of+arterio-arterial+anastomoses+in+monochorionic+twins%3A+feasibility+and+clinical+application%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Doppler detection of arterio-arterial anastomoses in monochorionic twins: feasibility and clinical application.</a> Human Reproduction. 15, 1632-1636 (2000).</li>
<li>Bermúdez, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Placental+types+and+twin-twin+transfusion+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Obstetrics+and+Gynecology%22%5BJournal%5D)">Placental types and twin-twin transfusion syndrome.</a> American Journal of Obstetrics and Gynecology. 187, 489-494 (2002).</li>
<li>Lewi, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intertwin+anastomoses+in+monochorionic+placentas+after+fetoscopic+laser+coagulation+for+twin-to-twin+transfusion+syndrome%3A+is+there+more+than+meets+the+eye%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Obstet+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Intertwin anastomoses in monochorionic placentas after fetoscopic laser coagulation for twin-to-twin transfusion syndrome: is there more than meets the eye.</a> Am J Obstet Gynecol. 194, 790-795 (2006).</li>
<li>Wee, L. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterisation+of+deep+arterio-venous+anastomoses+within+monochorionic+placentae+by+vascular+casting%5BTitle%5D)+AND+%22Placenta%22%5BJournal%5D)">Characterisation of deep arterio-venous anastomoses within monochorionic placentae by vascular casting.</a> Placenta. 26, 19-24 (2005).</li>
<li>Paepe, M. E. D. e, Burke, S., Luks, F. I., Pinar, H., Singer, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Demonstration+of+placental+vascular+anatomy+in+monochorionic+twin+gestations%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatr+Dev+Pathol%22%5BJournal%5D)">Demonstration of placental vascular anatomy in monochorionic twin gestations.</a> Pediatr Dev Pathol. 5, 37-44 (2002).</li>
</ol>

Nie zadeklarowano żadnych konfliktów interesów.

Mapowanie naczyniowe łożysk bliźniąt jednojajowych (MC) poprzez wstrzykiwanie barwnika jest wartościową procedurą służącą do oceny skomplikowanych przypadków leczonych klinicznie oraz do dalszego pogłębiania naszej wiedzy na temat bliźniąctwa MC. Kluczowa jest koordynacja z zespołem położniczym, aby zapewnić szybkie pozyskanie nienaruszonego okazu łożyska. Wysuszenie lub przedłużone przechowywanie tkanki przed wstrzyknięciem barwnika może doprowadzić do uszkodzenia naczyń i wycieku barwnika poza naczynia. Należy unikać u...

<table><tbody><tr><td>Perforowana miska plastikowa</td><td>QuickMedicalMedical Equipment and Supplies</td><td>Polarware PA75</td><td>Perforacje można wykonać wiertarką</td></tr><tr><td>Miska ze stali nierdzewnej</td><td>Narang Medical Limited</td><td>HH517</td><td></td></tr><tr><td>Sól fizjologiczna</td><td>Fisher Scientific</td><td>50983204</td><td></td></tr><tr><td>Przewód polietylenowy o średnicy wewnętrznej 0,6-1,9 mm</td><td>Intramedic</td><td>7436</td><td></td></tr><tr><td>Drut prowadzący do kaniulacji tętnicy (0,46 mm)</td><td>Arrow International</td><td>PW-18080</td><td>Miękka końcówka</td></tr><tr><td>Tępe igły 18 G</td><td>BD Biosciences</td><td>305180</td><td></td></tr><tr><td>Taśma pępowinowa</td><td>QC supply</td><td>140895</td><td></td></tr><tr><td>Nożyczki Metzenbauma</td><td>Cole-Parmer</td><td>EW-10921-04</td><td></td></tr><tr><td>Kleszczyki Kelly'ego</td><td>Cole-Parmer</td><td>EW-10918-20</td><td></td></tr><tr><td>Strzykawka 3 ml</td><td>Covidien</td><td>1180300555</td><td></td></tr><tr><td>Barwnik patomorfologiczny</td><td>Bradley Products</td><td>7365-x</td><td></td></tr><tr><td>Aparat cyfrowy</td><td>Panasonic</td><td>Lumix-TZ50</td><td></td></tr></tbody></table>

cewnikowanie z wykorzystaniem drutu prowadzącego i wtryskiwanie barwnika do mapowania naczyniowego łożysk w bliзняtach jednołożyskowych

Guide Wire Assisted Catheterization and Colored Dye Injection for Vascular Mapping of Monochorionic Twin Placentas

Ciąże bliźniacze jednochorionowe (MC) wiążą się ze znacznie wyższym wskaźnikiem zachorowalności i śmiertelności niż w przypadku bliźniąt dwuchorionowych. Około 50% ciąż bliźniaczych MC rozwija powikłania wynikające ze wspólnej łożyska i związanych z nim połączeń naczyniowych1. Zgłasza się, że ciężki zespół transfuzji płodowo-płodowej (TTTS) odpowiada za około 20% tych powikłań2,3. Połączenia naczyniowe między bliźniętami występują w prawie wszystkich łożyskach MC i są powiązane z rokowaniem oraz wynikiem tych wysokiego ryzyka ciąż bliźniaczych. Liczba, wielkość i rodzaj połączeń są implikowane w rozwoju TTTS oraz innych stanów towarzyszących bliźniętom MC. Występują trzy rodzaje połączeń naczyniowych między bliźniętami: 1) połączenia tętnica-żyła (AV), w których tętnica odgałęziona niosąca odtlenowaną krew od jednego bliźnięcia przebiega wzdłuż powierzchni płodowej łożyska i wnika do kotyledonu łożyskowego. Krew przepływa przez głęboką wewnątrzmiąższową sieć kapilarną do żyły odprowadzającej, która wyłania się na powierzchni płodowej łożyska i przenosi utlenowaną krew w stronę drugiego bliźnięcia. Przepływ jest jednokierunkowy, od bliźnięcia dostarczającego krew przez tętnicę doprowadzającą do bliźnięcia otrzymującego krew przez żyłę odprowadzającą; 2) połączenia tętnica-tętnica (AA), w których tętnice odgałęzione od każdego z bliźniąt łączą się bezpośrednio na powierzchownej powierzchni łożyska, co skutkuje naczyniem o pulsującym przepływie dwukierunkowym, oraz 3) połączenia żyła-żyła (VV), w których żyły odgałęzione od każdego z bliźniąt łączą się bezpośrednio na powierzchownej powierzchni łożyska, umożliwiając dwukierunkowy przepływ niskociśnieniowy. In utero sonografia położnicza z ukierunkowanym badaniem Dopplerowskim jest wykorzystywana do identyfikacji obecności połączeń AV i AA4. Wykazano, że połączenia AA wykryte prenatalnie i potwierdzone po porodzie badaniami z wstrzykiwaniem kontrastu do łożyska wiążą się z lepszym rokowaniem dla obu bliźniąt5. Ponadto fetoskopowa ablacja laserowa połączeń naczyniowych między bliźniętami na powierzchni płodowej wspólnego łożyska jest obecnie preferowaną metodą leczenia wczesnego, ciężkiego TTTS. 
Badania nad postnatalnymi wstrzyknięciami do łożyska stanowią cenną metodę potwierdzania dokładności prenatalnych wyników Dopplera w badaniu USG oraz skuteczności laserowej terapii płodu6. Dzięki zastosowaniu barwników wstrzykiwanych ręcznie, osobno do krążenia tętniczego i żylnego każdego z bliźniąt, technika ta pozwala uwidocznić i wyznaczyć połączenia tętniczo-żylne (AV), tętniczo-tętnicze (AA) oraz żylno-żylne (VV). Ta definitywna demonstracja anatomii naczyniowej łożyska w bliźniętach jednojajstowych z monochorialnym implantowaniem (MC) może następnie zostać skorelowana z wynikami badania Doppler USG oraz stanem noworodków, aby pogłębić nasze zrozumienie patofizjologii bliźniąt MC i ich następstw. W niniejszej procedurze prezentujemy naszą technikę wstrzyknięć do łożyska.

Mapowanie naczyniowe łożysk bliźniąt jednojajowych (MC) po porodzie umożliwia szczegółowe wykazanie połączeń naczyniowych między układami krążenia bliźniąt. 
Uważa się, że niezrównoważenie tych połączeń odgrywa kluczową rolę w rozwoju powikłań związanych z bliźnięciem MC, w tym zespołu przetoczenia bliźniąt.

Cewnikowanie z wykorzystaniem drutu prowadzącego i wtryskiwanie barwnika do mapowania naczyniowego łożysk w bliзняtach jednołożyskowych

Ciąże jednołożyskowe (MC) wiążą się ze znacznie wyższym wskaźnikiem zapadalności i śmiertelności niż ciąże dwułożyskowe. Około 50% MC...

Ogólnym celem następnego eksperymentu jest zmapowanie naczyń krwionośnych łożyska w jednochorionowych ciążach bliźniąt, ze szczególnym uwzględnieniem połączeń anastomotycznych. Jest to osiągane najpierw poprzez staranne pozyskanie i przygotowanie łożyska po porodzie w celu ułatwienia wizualizacji naczyń. W drugim kroku cewniki są wprowadzane do krążenia tętniczego i żylnego każdego z bliźniąt, co umożliwia wstrzyknięcie barwnika do naczyń krwionośnych.Następnie do tętnic i żył każdego z bliźniąt wstrzykuje się barwnik w innym kolorze, aby wykazać liczbę i rodzaj przeplatających się połączeń. W rezultacie można zaobserwować morfologię naczyń krwionośnych łożyska na podstawie mapowania naczyniowego uzyskanego dzięki wstrzyknięciu barwnika. Nazywam się Eric Gellan, jestem rezydentem chirurgii ogólnej i stypendystą w zakresie medycyny płodowej w centrum leczenia płodów UCSF.Metoda ta pozwala odpowiedzieć na kluczowe pytania dotyczące opieki płodowej nad bliźniętami jednojajowymi, takie jak to, które stany chorobowe bliźniąt jednojajowych odnoszą korzyści z interwencji płodowej. Nazywam się Sam Schechter, jestem rezydentem chirurgii ogólnej i stypendystą w zakresie medycyny płodowej w UCSF Fetal Treatment Center. Zastosowanie tej procedury rozszerza się na terapię i diagnostykę drugiego bliźnięcia, zespołu przetaczania bliźniąt lub TTTS.Umożliwia ono ocenę skuteczności ablacji laserowej w obrębie wewnętrznych połączeń bliźniąt. W przypadku TTTS należy pobrać łożysko jak najszybciej po porodzie, aby zminimalizować powstawanie skrzepów, wysychanie oraz ogólną degradację tkanki. Umieść dużą plastikową lub metalową miskę z wcześniej wyciętymi otworami, umożliwiającymi odpływ płynów łożyskowych, w dużej misce ze stali nierdzewnej.Umieść łożysko w mniejszej z dwóch misek, opłucz je ciepłym roztworem soli fizjologicznej, a następnie, aby uzyskać lepszą widoczność łożyska, użyj nożyczek Metzenbauma do wycięcia splecionych błon płodowych, uważając, aby nie uszkodzić samego łożyska. Pozostaw margines splecionych błon o szerokości pół centymetra. Zidentyfikuj pępowiny poszczególnych bliźniąt, potwierdzając sukcesywnie, która z nich należała do bliźnięcia prezentującego; śledząc, która pępowina jest którą, przetnij każdą z nich tuż poniżej zacisków.Następnie delikatnie usuń wszelkie skrzepy z naczyń. Zidentyfikuj żyłę i tętnice na przeciętej krawędzi pępowiny, tak jak pokazano na tym reprezentatywnym obrazie. Będzie jedna żyła, wskazana strzałką, oraz co najmniej jedna, zazwyczaj dwie tętnice, wskazane tutaj grotami strzałek.Najtrudniejszym elementem tej procedury jest kaniulacja tętnicy pępkowej. Niektóre zespoły stwierdziły, że rezygnacja z prowadnika i zastosowanie wyłącznie cewnika tętnicy pępkowej jest w rzeczywistości dość skuteczne, co również zaobserwowaliśmy, jednak uważamy, że użycie prowadnika ułatwia procedurę i czyni ją znacznie bardziej efektywną. Następnie należy użyć kleszczy Kelly'ego, aby stworzyć delikatne przeciwciśnienie na nievascularnej części ciętego brzegu pępowiny.Następnie należy użyć standardowego drutu prowadzącego do kaniulacji tętnicy promieniowej z miękką końcówką, aby uzyskać dostęp do otworu tętniczego na przekroju ćwiartki A z bliźniąt. Lekkie obrócenie ćwiartki w celu wyprostowania krętych naczyń może ułatwić wprowadzenie drutu. Wprowadź drut prowadzący na co najmniej trzy centymetry do naczynia, stosując technikę Seldingera.Wprowadź przez prowadnicę do tętnicy cewnik polietylenowy o długości 20 centymetrów i średnicy wewnętrznej od 0,6 do 1,19 milimetra z tępo ściętym końcem dystalnym. Usuń prowadnicę po wprowadzeniu cewnika na co najmniej trzy centymetry do naczynia. Potwierdź prawidłowe umieszczenie cewnika, wstrzykując niewielką ilość soli fizjologicznej do naczynia i obserwując przepłukanie tętnic dystalnych.Delikatne przesuwanie palcami wzdłuż naczyń podczas wstrzykiwania soli fizjologicznej może pomóc w przemieszczeniu ewentualnych pozostałości skrzepów. Następnie, stosując tę samą procedurę z drutem prowadzącym G co w przypadku tętnicy i unikając przemieszczenia cewnika tętniczego, umieść cewnik w żyle pępowinowej bliźniaka A. Zawiąż fragment taśmy pępowinowej jeden centymetr dystalnie od krawędzi cięcia wokół cewników pępowinowych.Po pomyślnym wprowadzeniu cewnika do pępowiny bliźniaka niewykazującego odruchu oddechowego (non-res), w ten sam sposób należy upewnić się, że cewniki w tętnicy oraz żyle pępowinowej każdego z bliźniąt są zabezpieczone taśmą pępowinową i że oba układy krążenia zostały przepłukane solą fizjologiczną, tak jak zrobiono to w przypadku łożyska przedstawionego na tej figurze. Należy wybrać cztery kontrastujące kolory do wstrzyknięcia w tętnice i żyły bliźniąt A i B, tak aby kolory dla tętnicy i żyły każdego z bliźniąt były łatwo rozróżnialne.Powierzchowną anastomozę powinno być możliwe do wykrycia poprzez mieszanie się barwników i powstanie innego, łatwo rozpoznawalnego koloru mieszanego, co na niniejszej figurze objawia się obecnością zielonego barwnika i jest wskazane strzałką. Następnie, używając strzykawki o pojemności 3 mL, ręcznie wstrzyknij barwnik do tętnicy bliźniaka A pod niskim ciśnieniem, delikatnie przesuwając jeden lub dwa palce wzdłuż naczyń w kierunku przepływu barwnika, aby zapewnić wypełnienie całego drzewa naczyniowego. Jeśli zidentyfikowano powierzchowną anastomozę naczyniową, można zastosować ręczną okluzję naczynia doprowadzającego, aby umożliwić wypełnienie pozostałej części łożyska naczyniowego o wyższym oporze.Użyj oddzielnej strzykawki o pojemności 3 ml, aby ręcznie wstrzyknąć preparat do tętnicy bliźnięcia B, a następnie w ten sam sposób wykonaj wstrzyknięcia żylne. Na koniec użyj cyfrowej kamery o wysokiej rozdzielczości, aby wykonać zdjęcie po każdym wstrzyknięciu. Po zakończeniu wszystkich wstrzyknięć wyjmij preparat z miseczek.Umieść go na neutralnym kolorystycznie tle i wykonaj ponowne obrazowanie. Starannie udokumentuj liczbę i rodzaj połączeń widocznych między krążeniem bliźniąt. Jak pokazano na tej figurze, cewniki zostały umieszczone w żyle pępkowej i w jednej tętnicy pępkowej każdego z bliźniąt. Cewniki zostały zabezpieczone i przymocowane za pomocą wiązań z taśmy pępkowej wokół całego pępowiny.Potwierdzono prawidłowe umiejscowienie każdego cewnika, a skrzepy wewnątrzświatłowe usunięto poprzez wstrzyknięcie podgrzanej soli fizjologicznej. W tej łożysku krążenie tętnicze bliźniaka A zostało wypełnione żółtym barwnikiem, co wskazuje strzałka. Kontrast wyraźnie przechodzi przez równik naczyniowy do krążenia tętniczego bliźniaka B. Tutaj wstrzyknięcie do krążenia tętniczego bliźniaka B z tego samego łożyska (widoczne na poprzedniej rycini) powoduje mieszanie się żółtego barwnika z bliźniaka A i niebieskiego barwnika z bliźniaka B, co skutkuje powstaniem zielonego barwnika w obrębie anastomozy tętniczej lub aa.Jak pokazano za pomocą strzałki. W przypadku tej łożyska AA zostało zidentyfikowane prospektywnie wewnątrzmacicznie za pomocą dopplerowskiego badania USG. Wynik ten został potwierdzony poprzez zmieszanie krwi tętniczej bliźniaka A (kolor żółty) i bliźniaka B (kolor niebieski) w komunikującej się strukturze tętniczej (kolor zielony). Co więcej, jak wskazuje strzałka, żyła bliźniaka A została wstrzyknięta czerwonym barwnikiem, a żyła bliźniaka B jest pomarańczowa; anastomozę tętniczo-żylną z przepływem skierowanym od bliźniaka A w stronę bliźniaka B zaznaczono grotem strzałki.Poniżej przedstawiono przykład łożyska bliźniąt jednochorionowych, które zostało poddane terapii laserowej po wstrzyknięciu postnatalnym. Tętnica i żyła bliźnięcia-donora zaznaczono odpowiednio kolorem żółtym i zielonym. Tętnica i żyła bliźnięcia-biorcy zaznaczono odpowiednio kolorem niebieskim i pomarańczowym.Nie wykryto żadnych pozostałych połączeń między krążeniami. Ostatnia rycina przedstawia kolejny przykład łożyska bliźniąt jednojółkowych po wstrzyknięciu. Tętnica i żyła bliźnięcia po lewej stronie są odpowiednio zaznaczone kolorem żółtym i czerwonym.Prawa tętnica i żyła bliźniacza są zaznaczone odpowiednio na niebiesko i pomarańczowo. Na powierzchni łożyska widoczne są: AA wskazana grotem strzałki oraz anastomoza żylna Aveeno wskazana strzałką. Po opanowaniu tej techniki, procedura może zostać wykonana w 45 minut.W przypadku prawidłowego wykonania procedury, po obejrzeniu tego filmu powinni Państwo posiadać dobrą wiedzę na temat sposobu wstrzykiwania barwnika do układów tętniczego i żylnego w łożyskach bliźniąt jednojajowych (monochorionowych) w celu wykazania połączeń naczyniowych oraz anatomii.

guide-wire-assisted-catheterization-colored-dye-injection-for

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Przewód sterujący z pomocniczą sondą do cewnikowania i wstrzyknięcie kolorowanego barwnika w celu uzyskania mapy naczyń łożysk jednopłodowych

Zespół transfuzji bliźniak-bliźniak oraz sekwencja anemii i policytemii u bliźniąt to dwa potencjalnie dewastujące problemy w medycynie perinatalnej. Obie te zaburzenia występują wyłącznie u bliźniąt monochorialnych i wynikają z niezrównoważonego przepływu krwi przez naczyniowe anastomozy łożyskowe. Przedstawiamy prosty protokół służący do dokładnej oceny obecności anastomoz naczyniowych za pomocą wstrzykiwania barwnika do naczyń łożyska po urodzeniu.

Dokładna i prosta ocena anastomoz naczyniowych w łożysku jednojajuszowym z wykorzystaniem barwnika

Tutaj informujemy o podwójnym znakowaniu komórek grzebienia nerwowego i naczyń krwionośnych za pomocą wewnątrzgatunkowego szczepienia rurki nerwowejGFP w połączeniu z wewnątrznaczyniowym wstrzyknięciem DiI. Ta eksperymentalna technika pozwala nam jednocześnie wizualizować i badać rozwój układu nerwowego (jelitowego) wywodzącego się z NCC i układu naczyniowego podczas organogenezy.

Podwójne znakowanie komórek grzebienia nerwowego i naczyń krwionośnych w zarodkach kurczaków za pomocą szczepienia cewy nerwowejpiskląt GFP i wstrzyknięcia barwnika karbocyjaniny DiI

Nowy preparat ex vivo do obrazowania rdzenia kręgowego myszy. Protokół ten pozwala na obrazowanie dwufotonowe żywych interakcji komórkowych w całym rdzeniu kręgowym.

Dwufotonowe obrazowanie dynamiki komórkowej w rdzeniu kręgowym myszy

Chronicznie znieczulony model owcy bez znieczulenia jest używany do badania rozwoju ludzkiego płodu w zdrowiu i chorobie, ponieważ pozwala na chirurgiczne zakładanie i konserwację cewników i elektrod, powtarzalne pobieranie krwi, wstrzykiwanie substancji, rejestrowanie aktywności bioelektrycznej i obrazowanie in vivo. Opisujemy procedury wymagane do ustanowienia tego modelu.

Oprzyrządowanie owiec w okresie bliskim donoszonego do wielowymiarowych przewlekłych nagrań bez znieczulenia

Narażenie na promieniowanie jest niedocenianym ryzykiem w skomplikowanych procedurach ablacji. W tym miejscu opisujemy protokół mający na celu znaczne skrócenie czasu i dawki fluoroskopowej zarówno dla pacjenta, jak i personelu laboratoryjnego dzięki zastosowaniu nowatorskiego systemu wizualizacji cewnika bez fluoroskopii.

Niefluoroskopowe śledzenie cewnika w celu zmniejszenia fluoroskopii w elektrofizjologii interwencyjnej

Wprowadzamy metodę obrazowania in vivo przy użyciu dwóch różnych barwników fluorescencyjnych do śledzenia dynamicznych zmian naczyniowych kręgosłupa po kontuzji rdzenia kręgowego u dorosłych szczurów Sprague-Dawley.

Badanie in vivo Dwukolorowa metoda obrazowania dynamiki naczyń krwionośnych po kontuzyjnym urazie rdzenia kręgowego

Ćwiczenie specyficznych umiejętności wymaganych do fetoskopowej laserowej koagulacji monokosmówkowych zespoleń łożyskowych na realistycznych modelach może pomóc mniej doświadczonym chirurgom w pokonywaniu stromej krzywej uczenia się związanej z tą procedurą, która jest obecnie uważana za standard opieki nad zespołem transfuzji bliźniąt.

Modelowe szkolenie chirurgiczne: nabywanie umiejętności w zakresie fetoskopowej fotokoagulacji laserowej łożyska dwuzębowego z błoną diamniową przy użyciu realistycznych symulatorów

Opisujemy system, który wykorzystuje trzy metody do oceny bezpieczeństwa i skuteczności dostarczania leków ukierunkowanych na łożysko: obrazowanie in vivo do monitorowania akumulacji nanocząstek, ultradźwięki o wysokiej częstotliwości do monitorowania rozwoju łożyska i płodu oraz HPLC do ilościowego określania dostarczania leków do tkanek.

Kompleksowa ocena skuteczności i bezpieczeństwa podawania leków ukierunkowanych na łożysko przy użyciu trzech uzupełniających się metod

Tutaj przedstawiono protokół perfuzji naczyniowej ex vivo matczyno-płodowej, który umożliwia podanie artykułu testowego do układu naczyniowego matki i ocenę transferu przez łożysko cząsteczek ksenobiotycznych lub środków farmakologicznych oprócz zmian w fizjologii łożyska.

Perfuzja ex vivo łożyska gryzonia

Prezentowany tutaj jest protokół do przeprowadzenia kompleksowej echokardiografii noworodków przez przeszkolonych neonatologów na oddziale intensywnej terapii noworodków. Przeszkoleni pracownicy dokonują podłużnych ocen czynności serca, hemodynamiki układowej i płucnej w roli konsultacyjnej. W manuskrypcie opisano również wymagania, które należy spełnić, aby zostać w pełni wyszkolonym specjalistą hemodynamiki noworodków.

Precyzja hemodynamiczna na Oddziale Intensywnej Terapii Noworodków z wykorzystaniem celowanej echokardiografii noworodków

Poznaj technikę cewnikowania wspomaganego drutem prowadzącym i iniekcji barwnika do mapowania naczyń łożysk bliźniaczych jednokosmówkowych. Ta metoda umożliwia wizualizację połączeń naczyniowych i ocenę skuteczności terapii laserowej.

Cewnikowanie wspomagane drutem prowadzącym i iniekcja kolorowego barwnika do mapowania naczyniowego bliźniaczych łożysk jednokosmówkowych (Wideo) | JoVE Journal

Cewnikowanie z wykorzystaniem drutu prowadzącego i wtryskiwanie barwnika do mapowania naczyniowego łożysk w bliзняtach jednołożyskowych

Przeglądaj więcej filmów