14 sierpnia 2011
Testowanie interakcji białko-białko jest niezbędne do analizy funkcjonalności białka. Tutaj wprowadzamy test wiązania białko-białko in vitro, aby zbadać białko unieruchomione przez błonę za pomocą białka rozpuszczalnego. Test ten zapewnia wiarygodną metodę testowania interakcji między nierozpuszczalnym białkiem a białkiem w roztworze.
Badanie białka. Interakcja białek jest niezbędna do analizy funkcjonalności białek. Ten film przedstawia test wiązania białek in vitro w celu przetestowania interakcji między błoną a unieruchomionym białkiem z białkiem rozpuszczalnym.
Najpierw białka fuzyjne są klonowane, poddawane ekspresji i ekstrahowane. Oznaczone nierozpuszczalne białko jest unieruchamiane na membranie nitrocelulozowej i poddawane obróbce w celu ponownego fałdowania do uzyskania natywnego potwierdzenia. Błona jest następnie badana za pomocą znakowanych rozpuszczalnych białek i przeprowadza się immunoblot w celu wykrycia białek.
Jeśli znakowane białka wchodzą w interakcję, są wychwytywane przez białko unieruchomione na błonie i obserwowany jest sygnał z immunoblottingu. W związku z tym test ten zapewnia wiarygodną metodę testowania interakcji między nierozpuszczalnym białkiem a białkiem w roztworze. Główną przewagą tej techniki nad istniejącymi naczyniami, takimi jak GST pull down, jest to, że można wiarygodnie ocenić wiązanie między białkiem nierozpuszczalnym a białkiem rozpuszczalnym in vitro.
Pierwszym krokiem tej procedury jest wygenerowanie genetycznie znakowanych białek do wykrywania. Zacznij od sklonowania białka, które zostanie unieruchomione na błonie. Odnieś się tutaj jako pro Im dla unieruchomionego białka w wektorze ekspresji, kodując duży znacznik, taki jak GST, pusty wektor wyrażenia, który koduje tylko dla znacznika, który będzie używany jako unieruchomiona kontrola negatywna białka i jest określany jako pro IM nc.
Następnie sklonuj białko, które będzie używane jako rozpuszczalna sonda, do wektora ekspresji, kodując inny znacznik, taki jak strep drugi. Będzie to określane jako prozol dla białka rozpuszczalnego jako kontrola ujemna, klon, białko rozpuszczalne w kontroli ujemnej do tego samego wektora ekspresji. Będzie to określane jako Prosol NC dla kontroli ujemnej białka rozpuszczalnego.
Następnie użyj systemu ekspresji białek, takiego jak wirus coli lub balo, do ekspresji oznakowanych białek, zastosowany system ekspresji powinien być starannie wybrany w oparciu o wymóg modyfikacji potranslacyjnych. Wyekstrahuj wyrażone białka z wybranego organizmu. Dla pro IM i pro I mnc Resus.
Zawieś komórki w buforze ładującym stronę SDS zawierającym koktajl inhibitorów proteazy. Następnie gotuj komórki przez pięć minut, a następnie odwiruj je w celu usunięcia osadu w celu ekstrakcji Prosol i prosolu NC. Stosuj standardowe procedury. Pro IMS może być ekstrahowany w warunkach denaturacji, ponieważ białka zostaną ponownie sfałdowane po unieruchomieniu w błonie nitrocelulozowej.
Jednak prozol powinien być ekstrahowany, aby dać natywne potwierdzenie, ponieważ zostaną one dodane do bufora wiążącego po wyekstrahowaniu oznakowanych białek. Określić stężenie rekombinowanych białek za pomocą standardowej metody, takiej jak zestaw do oznaczania białek BioRad. Jeśli surowy ekstrakt, a nie oczyszczone białko, zostanie użyte do testu.
Oszacuj stężenie białka będącego przedmiotem zainteresowania, skanując densytometrię odpowiedniego pasma na żelu z poliakryloamidu wybarwionym kumasi SDS. Wykorzystanie znanych stężeń BSA jako punktu odniesienia. Następnie należy wykreślić krzywą wzorcową w oparciu o natężenia sygnału zmierzone za pomocą densytometrii skaningowej BSA i obliczyć ilość białka zawartego w surowym ekstrakcie.
Kolejnym etapem zabiegu jest unieruchomienie pro Iam i pro IAM NC na membranie. Zacznij od załadowania po jednym mikrogramie, każdy z ekstraktów pro Iam i pro IAM NC po dwóch na żel poliakrylowy SDS. Po elektroforezie usuń żel ze szklanych płytek i umieść go w 100 mililitrach buforu transferowego, a następnie inkubuj z delikatnym mieszaniem przez 20 minut w temperaturze pokojowej.
Po inkubacji należy wykonać western blot, aby przenieść białka do błony nitrocelulozowej po przeniesieniu, aby umożliwić ponowne fałdowanie białek związanych z błoną. Umieścić membranę w 15 mililitrach buforu A i inkubować ją, delikatnie mieszając. Aby usunąć resztki SDS, inkubować przez 15 minut w temperaturze pokojowej, delikatnie mieszając.
Po inkubacji ostrożnie usunąć membranę z buforu. Następnie umieść membranę w 25 mililitrach buforu denaturacyjnego. Inkubować przez dwie godziny w temperaturze pokojowej z delikatnym mieszaniem.
Podczas inkubacji membrana nitrocelulozowa stanie się nieprzezroczysta. Następnie za pomocą kleszczy przenieś membranę do 25 mililitrów TBS i inkubuj z delikatnym mieszaniem przez pięć minut. Na tym etapie membrana powraca do swojego pierwotnego białego koloru.
Następnie przenieś membranę do 25 mililitrów buforu wiążącego. Inkubować w temperaturze czterech stopni Celsjusza z delikatnym mieszaniem przez noc. Następnie rozpuszczalne białko zostanie wykorzystane do zbadania błony w poszukiwaniu unieruchomionego białka.
Najpierw przygotuj hybrydyzacyjne, rozcieńcz od jednego do 10 mikrogramów prozolu i prosolu NC w oddzielnych probówkach zawierających 10 mililitrów świeżego buforu wiążącego. Następnie przenieś bufor do worka hybrydyzacyjnego. Następnie należy przeciąć membranę na dwa paski, oba zawierające pro IM i pro IAM nc.
Membrany te zostaną umieszczone w buforze hybrydyzacyjnym. Przenieść każdą membranę do roztworu hybrydyzacyjnego prosol lub prosol NC i inkubować przez 1,5 godziny w temperaturze pokojowej z delikatnym mieszaniem. Usuń membrany z roztworów hybrydyzacyjnych i płucz trzy razy przez 15 minut w TBS.
Aby zobrazować interakcje białek, należy zablokować błonę za pomocą 2,5% odtłuszczonego mleka w TBST na jedną godzinę. Po inkubacji umieść zablokowane błony w pierwotnym roztworze przeciwciała. Tutaj stosuje się przeciwciało przeciw paciorkowcowi dwa poliklonalne przeciwciało królika.
Inkubować przez godzinę w temperaturze pokojowej z delikatnym mieszaniem po inkubacji. Płukać membrany w 20 mililitrach TBST przez 15 minut i dwukrotnie przez pięć minut w temperaturze pokojowej z delikatnym mieszaniem. Następnie umieść błony w sprzężonym roztworze przeciwciała drugorzędowego HRP Tutaj stosuje się przeciwciało anty królicze IgG sprzężone z HRP.
Inkubować przez godzinę w temperaturze pokojowej z delikatnym mieszaniem. Przepłukać membrany w 20 mililitrach TBST przez 15 minut i dwa razy przez pięć minut w temperaturze pokojowej z delikatnym mieszaniem jak poprzednio, po ostatnim płukaniu w TBS uwidocznić interakcję białek za pomocą chemiluminescencyjnego podłoża HRP Here Millipore. Im Molan Western Chemiluminescent.
Substrat HRP stosuje się po immunoosuszeniu prozolu. Płukać membranę i TBST przez 15 minut i dwa razy przez pięć minut w temperaturze pokojowej. Następnie ponownie sonduj błony za pomocą przeciwciała pierwszorzędowego, aby znacznik mógł się zaszczepić.
Po nim następuje odpowiednie przeciwciało drugorzędowe. Wizualizacja PRO I i pro Im NNC poprzez wykrywanie chemiluminescencji w celu walidacji tożsamości prążków uzyskanych w teście nakładania błony białkowej. Interakcję między białkami A i K oraz YFP i MP CYFP oceniano w komórkach naskórka tytoniu przy użyciu metody opisanej w tym filmie, jak pokazano tutaj.
Gdy oceniano komplementację fluorescencji biomolekularnej, zrekonstruowano silny sygnał YFP. Ten sygnał BFC zgromadził się w Punta na obrzeżach komórki, które są diagnostyczne dla osocza de ponieważ MP jest wysoce nierozpuszczalnym białkiem. W przypadku ekspresji u bakterii lub roślin zastosowano test nakładania błony białkowej w celu walidacji tej interakcji.
Ekstrakty białkowe in vitro zawierające jeden mikrogram GST MP lub nieskondensowanego GST rozpuszczano za pomocą elektroforezy w żelu poliakrylamidowym SDS, a następnie elektrotransferu do membrany nitrocelulozowej. Kiedy te pro iams były badane rozpuszczalnym paciorkowym nnk dwa GST mp, ale nie niepołączone, GST wykazywał wiązanie. Co więcej, gdy ten sam zestaw pro IMS był badany z niepowiązanym pro saw nc IE Arabidopsis Cytoplasmic, NADH kinaza tagowana strep 2, nie zaobserwowano żadnego wiązania, co dodatkowo demonstruje specyficzność interakcji A NK MP Podczas próby tej procedury ważne jest, aby pamiętać o prawidłowym uzupełnieniu unieruchomionych białek zgodnie z przedstawionym protokołem.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Ten artykuł przedstawia in vitro test powiązań białko-białko zaprojektowany do badania interakcji między białkiem unieruchomionym na błonie a rozpuszczalnym białkiem. Metoda zapewnia niezawodne podejście do badania interakcji z udziałem nierozpuszczalnych białek.
Validating protein-protein interactions is essential for target de-risking in early discovery, particularly when studying insoluble or membrane-associated targets. The protein membrane overlay assay enables reliable in vitro assessment of interactions between soluble and insoluble proteins, addressing a key limitation of solubility-dependent methods like GST pull-down or Co-IP. When combined with orthogonal approaches such as BiFC, it supports mechanistic confidence and reduces false-positive risk in target validation workflows.
The assay fits within the discovery continuum from target engagement screening to lead optimization, particularly for targets where solubility complicates biochemical validation. It enables progression from phenotypic hits or genetic interactors to mechanistically de-risked targets.