$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Odkładanie się nieprawidłowo sfałdowanych agregatów białkowych - amyloidów w przestrzeni tkanki zewnątrzkomórkowej jest cechą charakterystyczną różnych chorób proteopatycznych. Te amyloidy składają się z arkuszy beta, które ustawiają się prostopadle do osi fibrylarnej, tworząc krzyżowe powtórzenia arkuszy beta.
Aby wykryć złogi amyloidu za pomocą barwienia heptamerem-formylotiofenem octowym lub hFTAA, należy pobrać utrwalony w formalinie, zatopiony w parafinie wycinek tkanki zawierający złogi amyloidu.
Potraktuj skrawki ksylenem w celu odparafinowania tkanki w celu poprawy dostępności do barwienia w kolejnych krokach. Dodaj kilka kropli roztworu barwiącego hFTAA na sekcję tkanki i inkubuj, aby barwnik mógł wniknąć w tkankę.
hFTAA zawiera siedem sprzężonych jednostek tiofenu zawierających siarkę i końcowych grup karboksylowych przyłączonych do szkieletu tiofenu. Cechy te zapewniają elastyczność niezwiązanego barwnika. Podczas inkubacji końcowe grupy karboksylowe barwnika wiążą się z dodatnio naładowanymi resztami aminokwasowymi wyściełającymi hydrofobowy rowek arkusza beta poprzez oddziaływania elektrostatyczne.
W konsekwencji zachodzi zmiana konformacyjna, która zmniejsza elastyczność strukturalną związanego barwnika hFTAA. Zwiększa to wydajność kwantową fluorescencji związanego barwnika - względny stosunek pochłoniętych i wyemitowanych fotonów. Proces ten pomaga poprawić wizualizację amyloidów.
Obserwuj szkiełko pod mikroskopem fluorescencyjnym. Obecność żółto-czerwonych plam fluorescencyjnych wskazuje na obecność amyloidów w skrawkach tkanek.
Przygotować luminescencyjny sprzężony roztwór oligotiofenu przez ponowne zawieszenie liofilizowanego hFTAA w dwumilimolowym wodorotlenku sodu w celu przygotowania roztworu podstawowego o stężeniu 1 mg/ml. Przenieść roztwór podstawowy do szklanej fiolki i przechowywać w temperaturze czterech stopni Celsjusza.
Jeśli stosuje się skrawki utrwalone formaliną, zatopione w parafinie, należy odparafinować ksylen przez noc. W dniu barwienia należy zanurzyć skrawki w kolejnych kąpielach 99% etanolu, 70% etanolu,dH2Oi PBS, za każdym razem na 10 minut. Następnie pozwól skrawkom tkanki wyschnąć w warunkach otoczenia.
Podczas wyschnięcia tkanki przygotuj roztwór roboczy hFTAA, rozcieńczając zapas w stosunku 1:10 000 w PBS. Gdy tkanka jest sucha, dodaj kropelki roztworu roboczego hFTAA do każdego odcinka tkanki, aby ją przykryć. Inkubować przez 30 minut w temperaturze pokojowej.
Spłucz roztwór barwiący 500 mikrolitrami PBS, a następnie zanurz szkiełko w kąpieli PBS na 10 minut.
Po pozostawieniu sekcji do wyschnięcia w warunkach otoczenia, zamontuj ją za pomocą fluorescencyjnego medium montażowego. Poczekaj, aż podłoże montażowe osiądzie przez noc.
Detekcja amyloidu może być wykonana bezpośrednio po zamontowaniu, a nawet bez montażu. Jeśli jednak celem eksperymentu jest zebranie wysokiej jakości informacji spektralnych, preferowana jest inkubacja przez noc.