Test próbny in vitro: metoda oceny wpływu osmolitów na trwałość bakterii

0 wyświetleń4:54 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pod wpływem szkodliwych warunków środowiskowych podgrupa bakterii wchodzi w stan niskiej aktywności metabolicznej, unikając szkodliwych skutków. Bakterie te, zwane trwałymi, mogą tolerować przejściowe narażenie na wysokie stężenia antybiotyków.

Aby zbadać wpływ osmolitów - małych substancji rozpuszczonych w organicznych - na trwałość bakterii, najpierw należy uzyskać hodowlę komórek bakteryjnych w fazie wykładniczej z wcześniej istniejącymi trwałymi substancjami poniżej granicy wykrywalności, zawieszonymi w pożywkach.

Następnie przenieś zawiesinę do studzienek zawierających osmolit na płytce mikromacierzy. Trzymaj zestaw studzienek bez osmolitu jako kontroli. Uszczelnić płytkę membraną przepuszczającą gaz, aby umożliwić szybką dyfuzję gazu w celu wzrostu komórek i inkubacji.

Osmolity w pożywce w odpowiednich stężeniach wywołują stres osmotyczny, skłaniając niektóre komórki do przeprogramowania metabolizmu komórkowego z szybkiego na powolny wzrost, tworząc trwałe.

Teraz przenieś komórki traktowane osmolitem i kontrolne na płytkę testową zawierającą antybiotyk. Zapieczętować płytkę do oznaczania substancji trwałej i rozpocząć inkubację.

W obecności antybiotyków normalne komórki ulegają śmierci komórkowej, podczas gdy osoby trwałe - tolerujące antybiotyki - przeżywają. Na koniec zbierz niewielką część komórek, seryjnie rozcieńcz buforem i umieść na wolnej od antybiotyków płytce agarowej. Inkubuj płytkę.

W przypadku braku antybiotyków przetrwały wznawiają wzrost i rozmnażają się, tworząc kolonie. Policz liczbę kolonii na płytce agarowej.

Wyższa liczba kolonii niż w przypadku kontroli bez osmolitów po leczeniu antybiotykami sugeruje pozytywny wpływ osmolitów na tworzenie się trwałych.

Zacznij od przygotowania kultur komórkowych w mikromacierzy.

Przenieś 250 mikrolitrów komórek o fazie wykładniczej do 25 mililitrów świeżej modyfikowanej pożywki LB w 50-mililitrowej probówce wirówkowej. Następnie delikatnie wymieszaj zawiesinę komórkową, aby była jednorodna.

Przenieś rozcieńczoną zawiesinę komórek do sterylnego zbiornika o pojemności 50 mililitrów. Za pomocą pipety wielokanałowej przenieś 150 mikrolitrów zawiesiny komórek do każdej studzienki płytki z mikromacierzą, zawierającej różne substancje chemiczne. Mikromacierze mogą być również generowane ręcznie, zgodnie z metodą opisaną w manuskrypcie tekstowym.

Przykryj płytkę mikromacierzy przepuszczalną dla gazu membraną uszczelniającą i inkubuj ją w wytrząsarce orbitalnej w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 250 obr./min przez 24 godziny.

Aby przygotować płytki do oznaczania Persister, przygotuj 25 mililitrów zmodyfikowanej pożywki LB, zawierającej 5 mikrogramów na mililitr ofloksacyny w 50-mililitrowej probówce wirówkowej i przenieś tę pożywkę do sterylnego zbiornika.

Przenieść 190 mikrolitrów zmodyfikowanej pożywki LB do każdego dołka ogólnej płaskodennej 96-dołkowej płytki. Po 24-godzinnej inkubacji wyjąć mikromacierz z wytrząsarki i przenieść 10 mikrolitrów kultur komórkowych z mikromacierzy do dołków płytki testowej Persister, zawierającej zmodyfikowaną pożywkę LB z ofloksacyną.

Weź 10 mikrolitrów zawiesin komórkowych z płytki testowej Persister i seryjnie rozcieńcz ją 3 razy w 290 mikrolitrach roztworu PBS, używając okrągłodennej 96-dołkowej płytki i pipety wielokanałowej. Następnie umieść 10 mikrolitrów wszystkich seryjnie rozcieńczonych zawiesin komórkowych na świeżych płytkach agarowych bez antybiotyków.

Przykryj płytkę testową Persister membraną uszczelniającą przepuszczającą gaz i inkubuj ją w wytrząsarce orbitalnej w temperaturze 37 stopni Celsjusza i prędkości 250 obr./min przez sześć godzin.

Po 6-godzinnej inkubacji powtórzyć seryjne rozcieńczanie i plamienie na płytkach agarowych. Inkubuj płytki agarowe przez 16 godzin w temperaturze 37 stopni Celsjusza, a następnie policz jednostki tworzące kolonie lub CFU. Użyj poziomów CFU przed i sześć godzin po antybiotykoterapii, aby obliczyć frakcję Persister w każdym dołku.

CFU liczy się przed leczeniem OFX, pomaga również ocenić wpływ osmolitów na żywotność E. coli.

09:09

Wysokowydajne testy w czasie rzeczywistym z podwójnym odczytem wewnątrzkomórkowej aktywności przeciwdrobnoustrojowej i cytotoksyczności komórek eukariotycznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:57

System badań przesiewowych skuteczności i cytotoksyczności inhibitorów ukierunkowanych na wewnątrzkomórkowe prątki gruźlicy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:29

Wysokoprzepustowy, kompatybilny test do oceny skuteczności leku przeciwko prątkom gruźlicy pasażowanym przez makrofagi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:02

Mikroprzepływowa mikroskopia poklatkowa do badania trwałości antybiotyków w bakteriach

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:57

Assessing Intracellular Bacterial Persistence and Antibiotic Resistance in a Mouse Model

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:37

Test odroczonego hamowania wzrostu w celu oceny wpływu związków przeciwdrobnoustrojowych pochodzenia bakteryjnego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:20

Badanie wpływu probiotyków na kolonizację pneumokoków za pomocą testu przylegania in vitro

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:47

ScanLag: Wysokoprzepustowa kwantyfikacja wzrostu kolonii i czasu opóźnienia

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:42

Test odroczonego hamowania wzrostu w celu ilościowego określenia wpływu środków przeciwdrobnoustrojowych pochodzenia bakteryjnego na konkurencję

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:38

Zastosowanie techniki miękkiego nakładki agarowej do badań przesiewowych pod kątem związków hamujących wytwarzanych przez bakterie

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026