$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Pod wpływem szkodliwych warunków środowiskowych podgrupa bakterii wchodzi w stan niskiej aktywności metabolicznej, unikając szkodliwych skutków. Bakterie te, zwane trwałymi, mogą tolerować przejściowe narażenie na wysokie stężenia antybiotyków.
Aby zbadać wpływ osmolitów - małych substancji rozpuszczonych w organicznych - na trwałość bakterii, najpierw należy uzyskać hodowlę komórek bakteryjnych w fazie wykładniczej z wcześniej istniejącymi trwałymi substancjami poniżej granicy wykrywalności, zawieszonymi w pożywkach.
Następnie przenieś zawiesinę do studzienek zawierających osmolit na płytce mikromacierzy. Trzymaj zestaw studzienek bez osmolitu jako kontroli. Uszczelnić płytkę membraną przepuszczającą gaz, aby umożliwić szybką dyfuzję gazu w celu wzrostu komórek i inkubacji.
Osmolity w pożywce w odpowiednich stężeniach wywołują stres osmotyczny, skłaniając niektóre komórki do przeprogramowania metabolizmu komórkowego z szybkiego na powolny wzrost, tworząc trwałe.
Teraz przenieś komórki traktowane osmolitem i kontrolne na płytkę testową zawierającą antybiotyk. Zapieczętować płytkę do oznaczania substancji trwałej i rozpocząć inkubację.
W obecności antybiotyków normalne komórki ulegają śmierci komórkowej, podczas gdy osoby trwałe - tolerujące antybiotyki - przeżywają. Na koniec zbierz niewielką część komórek, seryjnie rozcieńcz buforem i umieść na wolnej od antybiotyków płytce agarowej. Inkubuj płytkę.
W przypadku braku antybiotyków przetrwały wznawiają wzrost i rozmnażają się, tworząc kolonie. Policz liczbę kolonii na płytce agarowej.
Wyższa liczba kolonii niż w przypadku kontroli bez osmolitów po leczeniu antybiotykami sugeruje pozytywny wpływ osmolitów na tworzenie się trwałych.
Zacznij od przygotowania kultur komórkowych w mikromacierzy.
Przenieś 250 mikrolitrów komórek o fazie wykładniczej do 25 mililitrów świeżej modyfikowanej pożywki LB w 50-mililitrowej probówce wirówkowej. Następnie delikatnie wymieszaj zawiesinę komórkową, aby była jednorodna.
Przenieś rozcieńczoną zawiesinę komórek do sterylnego zbiornika o pojemności 50 mililitrów. Za pomocą pipety wielokanałowej przenieś 150 mikrolitrów zawiesiny komórek do każdej studzienki płytki z mikromacierzą, zawierającej różne substancje chemiczne. Mikromacierze mogą być również generowane ręcznie, zgodnie z metodą opisaną w manuskrypcie tekstowym.
Przykryj płytkę mikromacierzy przepuszczalną dla gazu membraną uszczelniającą i inkubuj ją w wytrząsarce orbitalnej w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 250 obr./min przez 24 godziny.
Aby przygotować płytki do oznaczania Persister, przygotuj 25 mililitrów zmodyfikowanej pożywki LB, zawierającej 5 mikrogramów na mililitr ofloksacyny w 50-mililitrowej probówce wirówkowej i przenieś tę pożywkę do sterylnego zbiornika.
Przenieść 190 mikrolitrów zmodyfikowanej pożywki LB do każdego dołka ogólnej płaskodennej 96-dołkowej płytki. Po 24-godzinnej inkubacji wyjąć mikromacierz z wytrząsarki i przenieść 10 mikrolitrów kultur komórkowych z mikromacierzy do dołków płytki testowej Persister, zawierającej zmodyfikowaną pożywkę LB z ofloksacyną.
Weź 10 mikrolitrów zawiesin komórkowych z płytki testowej Persister i seryjnie rozcieńcz ją 3 razy w 290 mikrolitrach roztworu PBS, używając okrągłodennej 96-dołkowej płytki i pipety wielokanałowej. Następnie umieść 10 mikrolitrów wszystkich seryjnie rozcieńczonych zawiesin komórkowych na świeżych płytkach agarowych bez antybiotyków.
Przykryj płytkę testową Persister membraną uszczelniającą przepuszczającą gaz i inkubuj ją w wytrząsarce orbitalnej w temperaturze 37 stopni Celsjusza i prędkości 250 obr./min przez sześć godzin.
Po 6-godzinnej inkubacji powtórzyć seryjne rozcieńczanie i plamienie na płytkach agarowych. Inkubuj płytki agarowe przez 16 godzin w temperaturze 37 stopni Celsjusza, a następnie policz jednostki tworzące kolonie lub CFU. Użyj poziomów CFU przed i sześć godzin po antybiotykoterapii, aby obliczyć frakcję Persister w każdym dołku.
CFU liczy się przed leczeniem OFX, pomaga również ocenić wpływ osmolitów na żywotność E. coli.