$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Przyżyteczna mikroskopia fluorescencyjna jest przydatna do badania fototoksycznej indukcji powstawania skrzepliny - skrzepu krwi - w miejscu uszkodzenia mikrokrążenia.
Zacznij od zażycia znieczulonej bezwłosej myszy, której wstrzyknięto fototoksyczny polisacharyd znakowany fluoroforem. Umieść mysz w pozycji leżącej na platformie grzewczej, aby utrzymać fizjologiczną temperaturę dla prawidłowego krążenia krwi.
Umieść wierzchołkową część ucha pod przyżyciowym mikroskopem fluorescencyjnym. Po wzbudzeniu światłem fluorofor emituje fluorescencję, co pozwala na monitorowanie przepływu krwi w mikronaczyniach. Zwiększ natężenie światła, aby wywołać tworzenie się skrzepliny.
Fluorofor pochłania światło o dużej intensywności i reaguje z tlenem cząsteczkowym, tworząc reaktywne formy tlenu. Cząsteczki te powodują stres oksydacyjny w komórkach śródbłonka, prowadząc w ten sposób do uszkodzenia komórek i odsłonięcia macierzy podśródbłonkowej.
Uszkodzone komórki uwalniają mediatory zakrzepowe, które łączą odsłonięty kolagen w macierzy podśródbłonkowej i krążące płytki krwi, które wiążą się z mediatorami za pośrednictwem określonych receptorów.
Wiązanie aktywuje płytki krwi, powodując uwalnianie cząsteczek efektorowych, które aktywują i rekrutują inne krążące płytki krwi do miejsca urazu. Krążące białka fibrynogenu wiążą się z receptorami fibrynogenu na aktywowanych płytkach krwi - łącząc je, tworząc czop płytkowy.
Wizualizuj ograniczony przepływ krwi, aby potwierdzić czop płytkowy - główny etap tworzenia skrzepliny.
Umieść zwierzę na platformie pod mikroskopem stereoskopowym. Użyj 10-krotnego powiększenia. Do mikroskopii prawego ucha należy przygotować lewą żyłę szyjną, wykonując najpierw 5-milimetrowe nacięcie w skórze szyi w kierunku czaszkowo-ogonowym. Następnie za pomocą mikrokleszczy i mikronożyczek należy wypreparować tkankę podskórną. Następnie uwolnij żyłę z przydanki bez dotykania naczynia.
Teraz użyj wcześniej przygotowanej strzykawki insulinowej do wstrzyknięcia barwnika fluorescencyjnego. Ostrożnie chwyć ścianę naczynia mikrokleszkami, nie przebijając żyły. Przebić rozdętą ścianę naczynia za pomocą igły strzykawki i wstrzyknąć dożylnie dekstran FITC. Wyjmij igłę i zatamuj krwawienie za pomocą bawełnianych wacików. Unikaj zanieczyszczenia ucha krwią i barwnikiem.
Przenieś zwierzę na płycie grzewczej do szklanej konstrukcji akrylowej ze szczeliną na płytę grzewczą i płaszczyzną o wysokości 0,5 centymetra do ustawienia ucha. Przymocuj zwierzę w pozycji leżącej na płycie grzewczej za pomocą bandaża samoprzylepnego. Umieść wypukłą chrząstkę u podstawy ucha obok płaszczyzny ucha, tak aby wierzchołkowa część ucha mogła być umieszczona płasko na płaszczyźnie. Dodaj jedną kroplę wody o temperaturze pokojowej do szklanej płytki akrylowej. Za pomocą bawełnianych wacików zaabsorbuj kroplę wody i pozwól, aby siły kapilarne przymocowały płaszczyznę ucha do szkła akrylowego.
Małżowina uszna musi być ustawiona tak płasko, jak to możliwe, mimo że chrząstka nadaje małżowinie usznej wypukły kształt. Tak więc tylko bardziej elastyczna dystalna część małżowiny usznej powinna być umieszczona na szklanej płycie akralnej. Aby uniknąć uszkodzenia tkanek i wynaczynienia zamrożonego barwnika, należy jak najmniej dotykać ucha kleszkami.
Następnie dodaj jedną kroplę wody do wypukłej grzbietowej strony ucha. Ostrożnie nałóż jedno szkiełko nakrywkowe na ucho, nie uciskając naczyń podstawowych wchodzących do ucha. Użyj bawełnianych wacików, aby usunąć jak najwięcej wody spod szkiełka nakrywkowego, aby zminimalizować odległość między szkiełkiem nakrywkowym a naczyniami docelowymi ucha.
Rozpocznij od wyregulowania przyżyciowego mikroskopu fluorescencyjnego do wizualizacji FITC-dekstranu. Przenieś przygotowane zwierzę na biurko przyżyciowego mikroskopu fluorescencyjnego. Używając 5-krotnego, 10-krotnego i 20-krotnego powiększenia oraz 20% natężenia światła, poszukaj naczynia żylnego o średnicy od 50 do 60 mikronów i następczym przepływie krwi.
Dodaj jedną kroplę wody o temperaturze pokojowej do szkiełka nakrywkowego, aby zanurzyć się w wodzie obiektywu o powiększeniu 63x. Natychmiast po nałożeniu kropli wody rozpocznij nagrywanie naczynia przez 20 sekund w celu podstawowej oceny średnicy i przepływu krwi. Indukcję skrzepliny należy rozpocząć 5 minut po wstrzyknięciu FITC-dextran. W tym celu należy zwiększyć natężenie światła do 100%.
Podczas fototoksycznej indukcji skrzepliny zamknij otwór mikroskopu na 2 sekundy w ciągu 30 sekund, aby sprawdzić, czy przepływ krwi nie jest niedrożny. Jeśli przepływ krwi utrzymuje się, ponownie otwórz otwór. Naczynie jest klasyfikowane jako niedrożne, jeśli przepływ stoi w miejscu przez 30 sekund lub dłużej lub jeśli przepływ krwi jest wsteczny. Wybrać i zamknąć pięć naczyń na ucho w ciągu 1 godziny po wstrzyknięciu FITC-dekstranu.