JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuronauka
0 wyświetleń • 5:15 min • July 8th, 2025
Zacznij od umieszczenia wycinka mózgu w komorze mikroelektrodowej lub komorze rejestracyjnej MEA wypełnionej sztucznym płynem mózgowo-rdzeniowym lub płynem mózgowo-rdzeniowym zawierającym badany lek.
Dostosuj położenie plastra i zabezpiecz go kotwą.
Uruchomić ciągły przepływ aCSF, zawierającego badany lek wywołujący drgawki.
Uchwyć obraz plasterka.
Wybierz odpowiednie mikroelektrody stykające się z wycinkiem mózgu.
Aktywuj jednostkę stymulacyjną i podłącz przewody do jednostki MEA.
Nagraj sygnały linii bazowej.
Wykonaj test, aby określić optymalną intensywność bodźca.
Teraz zacznij dostarczać impulsy elektryczne.
Impulsy te stymulują wybrany obszar mózgu, wywołując sztuczny napad.
Rejestruj wynikającą z tego aktywność elektryczną, aby uchwycić reakcje wywołane napadami.
Gdy poziom 4-AP aCSF i temperatura nagrywania ustabilizują się zgodnie z potrzebami, przekręć kurki perfuzyjne i ssące do pozycji wyłączonej, aby tymczasowo je zatrzymać. Szybko przenieś jeden wycinek mózgu do komory zapisu MEA za pomocą pipety Pasteura z odwróconym szkłem.
W razie potrzeby dostosuj jego położenie w obszarze nagrywania MEA, używając polerowanej na ogniowo, zwijonej pipety Pasteura lub miękkiej, kompaktowej małej szczoteczki. Umieść kotwicę dociskową na wycinku mózgu. Ponownie uruchom perfuzję i ssanie, przekręcając ich kurki z powrotem do pozycji włączonej.
Zrób zdjęcie wycinka mózgu za pomocą kamery zamontowanej na stoliku z odwróconym mikroskopem. Następnie uruchom skrypt mapMEA w oprogramowaniu komputerowym, aby uruchomić GUI w celu mapowania elektrod. Kliknij przycisk Przeglądaj, aby załadować obraz wycinka mózgu. Upewnij się, że elektroda referencyjna znajduje się w górnej kolumnie lewej połowy MEA. Następnie kliknij przycisk Aktywuj wskaźnik.
Wybierz górną i dolną elektrodę w skrajnej lewej kolumnie tablicy, aby oznaczyć współrzędne x i y do prostowania obrazu i mapowania elektrod. Z menu rozwijanego Typ plasterka wybierz opcję Poziomy. Zaznacz pole wyboru Struktury domyślne.
Korzystając z ponumerowanych przycisków pod obrazem wycinka mózgu, wybierz elektrody odpowiadające ROI i kliknij odpowiednie przyciski w panelu struktury, aby je przypisać. Powtórz ten krok dla każdego zwrotu z inwestycji. Następnie naciśnij przycisk Zapisz. Oprogramowanie wygeneruje folder wyników zawierający tabelę, raportującą wybrane elektrody i ROI.
W przypadku badania elektrofizjologii włącz jednostkę bodźca co najmniej 10 minut przed protokołem stymulacji, aby umożliwić samokalibrację i stabilizację. Następnie uruchom oprogramowanie sterujące bodźcem i sprawdź, czy stymulator i MEA amplifier są prawidłowo połączone, jak wskazuje zielona dioda LED na głównym panelu oprogramowania sterującego bodźcem.
Ustaw stymulację w konfiguracji dwubiegunowej. Podłącz jednostkę stymulacyjną do ziemi. Następnie połącz pary elektrod stykających się z piramidalną warstwą komórek proksymalnego subiculum CA1 spośród tych zmapowanych za pomocą mapy skryptuMEA. Aby uzyskać dane, naciśnij przycisk Odtwórz w głównym panelu oprogramowania do nagrywania. Zanotować co najmniej cztery zrzuty ictal.
Następnie przeprowadź szybki test wejścia/wyjścia, aby określić najlepszą intensywność bodźca. W tym celu należy za pomocą panelu głównego zaprojektować kwadratowy dwufazowy dodatnio-ujemny impuls prądowy o czasie trwania 100 mikrosekund na fazę.
W zakładce Amplituda impulsu wprowadź początkową amplitudę impulsu wynoszącą 100 mikroamperów na fazę. Ustaw impuls stymulacji na 0,2 herca lub mniej, dodając interwał impulsów wynoszący 5 sekund lub dłużej. Zwiększaj amplitudę bodźca o 50 do 100 mikroamperów w każdym badaniu, aż stymulacja będzie mogła niezawodnie wywołać zdarzenia podobne do międzynapadowych w korze przyhipokampa.
W celu elektrycznej modulacji ektogenezy limbicznej zaprogramuj jednostkę bodźca tak, aby dostarczała interesujący ją protokół stymulacji i użyj amplitudy bodźca zidentyfikowanej podczas testu wejścia/wyjścia.
Po ustaniu stymulacji sprawdź, czy sieć wróciła do stanu sprzed bodźca, rejestrując co najmniej cztery wyładowania ictal.
Niniejszy artykuł szczegółowo opisuje protokół indukowania sztucznych napadów drgawek w skrawkach mózgu przy użyciu matryc mikrolektrod (MEAs). Metoda ta obejmuje precyzyjne pozycjonowanie skrawków mózgu, stymulację elektryczną oraz rejestrację aktywności neuronalnej w celu badania dynamiki napadów.
Niniejszy protokół umożliwia mechanistyczną redukcję ryzyka w odniesieniu do celów terapeutycznych związanych z napadami drgawkowymi, zapewniając powtarzalny model elektrofizjologiczny do oceny wpływu związków na nadpobudliwość sieci neuronowej. Wspiera on walidację celów oraz opracowywanie testów w procesach odkrywania leków neurofarmakologicznych poprzez ilościowe określanie wzorców wyładowań ictalnych jako funkcjonalnego odczytu. Metoda ta zwiększa pewność prognostyczną we wczesnych etapach przesiewania kandydatów na leki przeciwdrgawkowe dzięki standaryzowanemu, wysokorozdzielczemu monitorowaniu aktywności neuronalnej.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum procesu odkrywania leków – od testowania hipotez dotyczących celu molekularnego, poprzez identyfikację związków wiodących, aż po przedkliniczną ocenę skuteczności, umożliwiając iteracyjne udoskonalanie kandydatów na leki przeciwdrgawkowe w oparciu o elektrofizjologię sieciową.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026