Monitorowanie aktywności elektrycznej neuronów wywołanej napadami padaczkowymi w wycinkach mózgu za pomocą układów mikroelektrod

0 wyświetleń5:15 min • July 8th, 2025

Zacznij od umieszczenia wycinka mózgu w komorze mikroelektrodowej lub komorze rejestracyjnej MEA wypełnionej sztucznym płynem mózgowo-rdzeniowym lub płynem mózgowo-rdzeniowym zawierającym badany lek.

Dostosuj położenie plastra i zabezpiecz go kotwą.

Uruchomić ciągły przepływ aCSF, zawierającego badany lek wywołujący drgawki.

Uchwyć obraz plasterka.

Wybierz odpowiednie mikroelektrody stykające się z wycinkiem mózgu.

Aktywuj jednostkę stymulacyjną i podłącz przewody do jednostki MEA.

Nagraj sygnały linii bazowej.

Wykonaj test, aby określić optymalną intensywność bodźca.

Teraz zacznij dostarczać impulsy elektryczne.

Impulsy te stymulują wybrany obszar mózgu, wywołując sztuczny napad.

Rejestruj wynikającą z tego aktywność elektryczną, aby uchwycić reakcje wywołane napadami.

Gdy poziom 4-AP aCSF i temperatura nagrywania ustabilizują się zgodnie z potrzebami, przekręć kurki perfuzyjne i ssące do pozycji wyłączonej, aby tymczasowo je zatrzymać. Szybko przenieś jeden wycinek mózgu do komory zapisu MEA za pomocą pipety Pasteura z odwróconym szkłem.

W razie potrzeby dostosuj jego położenie w obszarze nagrywania MEA, używając polerowanej na ogniowo, zwijonej pipety Pasteura lub miękkiej, kompaktowej małej szczoteczki. Umieść kotwicę dociskową na wycinku mózgu. Ponownie uruchom perfuzję i ssanie, przekręcając ich kurki z powrotem do pozycji włączonej.

Zrób zdjęcie wycinka mózgu za pomocą kamery zamontowanej na stoliku z odwróconym mikroskopem. Następnie uruchom skrypt mapMEA w oprogramowaniu komputerowym, aby uruchomić GUI w celu mapowania elektrod. Kliknij przycisk Przeglądaj, aby załadować obraz wycinka mózgu. Upewnij się, że elektroda referencyjna znajduje się w górnej kolumnie lewej połowy MEA. Następnie kliknij przycisk Aktywuj wskaźnik.

Wybierz górną i dolną elektrodę w skrajnej lewej kolumnie tablicy, aby oznaczyć współrzędne x i y do prostowania obrazu i mapowania elektrod. Z menu rozwijanego Typ plasterka wybierz opcję Poziomy. Zaznacz pole wyboru Struktury domyślne.

Korzystając z ponumerowanych przycisków pod obrazem wycinka mózgu, wybierz elektrody odpowiadające ROI i kliknij odpowiednie przyciski w panelu struktury, aby je przypisać. Powtórz ten krok dla każdego zwrotu z inwestycji. Następnie naciśnij przycisk Zapisz. Oprogramowanie wygeneruje folder wyników zawierający tabelę, raportującą wybrane elektrody i ROI.

W przypadku badania elektrofizjologii włącz jednostkę bodźca co najmniej 10 minut przed protokołem stymulacji, aby umożliwić samokalibrację i stabilizację. Następnie uruchom oprogramowanie sterujące bodźcem i sprawdź, czy stymulator i MEA amplifier są prawidłowo połączone, jak wskazuje zielona dioda LED na głównym panelu oprogramowania sterującego bodźcem.

Ustaw stymulację w konfiguracji dwubiegunowej. Podłącz jednostkę stymulacyjną do ziemi. Następnie połącz pary elektrod stykających się z piramidalną warstwą komórek proksymalnego subiculum CA1 spośród tych zmapowanych za pomocą mapy skryptuMEA. Aby uzyskać dane, naciśnij przycisk Odtwórz w głównym panelu oprogramowania do nagrywania. Zanotować co najmniej cztery zrzuty ictal.

Następnie przeprowadź szybki test wejścia/wyjścia, aby określić najlepszą intensywność bodźca. W tym celu należy za pomocą panelu głównego zaprojektować kwadratowy dwufazowy dodatnio-ujemny impuls prądowy o czasie trwania 100 mikrosekund na fazę.

W zakładce Amplituda impulsu wprowadź początkową amplitudę impulsu wynoszącą 100 mikroamperów na fazę. Ustaw impuls stymulacji na 0,2 herca lub mniej, dodając interwał impulsów wynoszący 5 sekund lub dłużej. Zwiększaj amplitudę bodźca o 50 do 100 mikroamperów w każdym badaniu, aż stymulacja będzie mogła niezawodnie wywołać zdarzenia podobne do międzynapadowych w korze przyhipokampa.

W celu elektrycznej modulacji ektogenezy limbicznej zaprogramuj jednostkę bodźca tak, aby dostarczała interesujący ją protokół stymulacji i użyj amplitudy bodźca zidentyfikowanej podczas testu wejścia/wyjścia.

Po ustaniu stymulacji sprawdź, czy sieć wróciła do stanu sprzed bodźca, rejestrując co najmniej cztery wyładowania ictal.

10:45

Zależny od czasu wzrost odpowiedzi sieci na stymulację kultur komórek neuronalnych na układach mikroelektrod

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:51

Rejestrowanie plastyczności synaptycznej w ostrych wycinkach hipokampa utrzymywanych w systemie komór do recyklingu, perfuzji i zanurzenia o małej objętości

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:53

Sieci kardiomiocytów pochodzące z ludzkich iPSC na wielodołkowych układach mikroelektrod do powtarzalnych zapisów potencjału czynnościowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:46

Oparta na mikroelektrodach ocena sieci neuronalnych w wycinkach rdzenia kręgowego myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:18

Monitorowanie kory mózgowej za pomocą układu wieloelektrodowego w odpowiedzi na czynniki wywołujące napady

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

13:14

Wieloelektrodowe zapisy pooperacyjnej tkanki korowej ludzkiego epilepsji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:39

Stymulacja prądem stałym i wieloelektrodowa rejestracja aktywności podobnej do napadów w przygotowaniu do wycinka mózgu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:24

Rejestracja i modulacja aktywności padaczkowej w wycinkach mózgu gryzoni sprzężonych z układami mikroelektrod

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:28

Wysokiej jakości aktywność podobna do napadów padaczkowych z ostrych wycinków mózgu przy użyciu komplementarnego układu mikroelektrod o dużej gęstości z tlenkiem metalu i półprzewodnikiem

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:30

Wieloelektrodowa platforma matrycowa do modelowania padaczki przy użyciu ludzkich pluripotencjalnych zespołów mózgowych pochodzących z komórek macierzystych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026