-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Elektroporacja mezenchymy twarzoczaszki
Elektroporacja mezenchymy twarzoczaszki
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
Electroporation of Craniofacial Mesenchyme

Elektroporacja mezenchymy twarzoczaszki

Full Text
12,460 Views
07:23 min
November 28, 2011

DOI: 10.3791/3381-v

Jacqueline M. Tabler1, Karen J. Liu1

1Department of Craniofacial Development,King's College London

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Chrząstki twarzoczaszki rozwijają się w bliskim kontakcie z innymi tkankami i są trudne do manipulowania u żywych zwierząt. Używamy elektroporacji do dostarczania narzędzi molekularnych podczas wzrostu szkieletu twarzoczaszki, omijając wczesne efekty embrionalne. Takie podejście pozwoli nam na efektywne testowanie cząsteczek kandydujących in vivo.

Ogólnym celem tej procedury jest elektrooperacja naładowanych makrocząsteczek w mezenchymie czaszki twarzy. Osiąga się to poprzez uprzednie umieszczenie znieczulonego zarodka w stadium 28 w komorze elektroporacji. Kolejnym krokiem jest mikrowstrzyknięcie roztworu zawierającego naładowane makrocząsteczki do mezenchymy czaszkowo-twarzowej.

Po tym szybko stosuje się prąd elektryczny, wprowadzając w ten sposób nukleotydy ładunku do komórek w pozostałym miejscu. Ostatnim etapem zabiegu jest wizualizacja elektroporowanej tkanki za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej. Ostatecznie można uzyskać wyniki pokazujące zmiany w tkankach czaszki twarzy.

Wyniki te można analizować in vivo lub w tkance utrwalonej za pomocą fluorescencji, mikroskopii lub immunohistochemii. Główną przewagą elektroporacji nad istniejącymi metodami, takimi jak mikroiniekcja i mutacja, jest tkankowa i czasowa kontrola naszych narzędzi molekularnych, co zademonstruje nasza dzisiejsza procedura Jackie Tabler, doktor habilitowany w moim laboratorium. Para elektrod w kształcie litery L wymagana do tej procedury jest wykonana z drutu wolframowego o wysokiej czystości 0,4 milimetra, a każda elektroda najpierw przecina osiem centymetrów drutu.

Następnie za pomocą szpachli, takiej jak niebieska strzykawka, uderza w jednomililitrową strzykawkę w środku drutu wolframowego, pozostawiając cztery centymetry drutu odsłonięte od końcówki strzykawki. Zegnij końcówkę w kształt litery L jeden centymetr od końca. Przytnij końcówkę tak, aby koniec miał 0,5 centymetra długości.

Ta końcówka jest końcem elektrody, która prowadzi nadmiar drutu wolframowego równolegle do strzykawki. Będzie on służył do podłączenia generatora impulsów elektrody po wykonaniu drugiej elektrody. Przymocuj parę elektrod do siebie za pomocą taśmy tak, aby końcówka elektrody przebiegała równolegle, w odległości jednego centymetra od siebie.

Na koniec podłącz elektrody do generatora impulsów fali prostokątnej za pomocą prądu stałego. Aby przygotować specjalnie wykonaną komorę do elektroporacji, wyłóż dno 90-milimetrowego naczynia około pięcioma milimetrami nietoksycznej gipsowej plasteliny do modelowania scen. Napełnij naczynie środkiem do elektroporacji, zanurzając scenę gipsową.

Następnie użyj kleszczyków zegarmistrzowskich numer pięć, aby wyrzeźbić studnię w kształcie litery T w gipsowej scenie, aby utworzyć elektroporację. Cóż, długi bok studni powinien mieć wymiary około dwóch milimetrów na dwa milimetry na 10 milimetrów, a krótki bok powinien mieć wymiary dwa milimetry na dwa milimetry na pięć milimetrów. Mikropipety do tej procedury są wykonane z kapilar ze szkła krzemianowego.

Za pomocą ściągacza do igieł przygotuj mikropipety ze stożkiem o długości od 8 do 12 milimetrów i cienką końcówką, zmiażdż końcówkę około dwóch milimetrów od końcówki za pomocą kleszczy, tworząc postrzępioną przerwę w celu ustawienia mikropipety. Najpierw napełnij go około jednym mikrolitrem roztworu do wstrzykiwań, który w tej demonstracji zawiera fluorescencyjnie znakowane oligonukleotydy. Następnie zabezpiecz mikropipetę pod kątem mikromanipulatora w odległości 50 stopni od blatu.

Ustaw ciśnienie wtrysku na 20 PSI i skalibruj mikropipetę, aby wstrzykiwać 30 litrów na impuls. Przygotowując się do elektroporacji, znieczul larwy ksenolarne w stadium 28, inkubując je przez pięć minut. W pożywkach do elektroporacji, które są normalnymi pożywkami zawierającymi 0,1% benzokainy, przenieś znieczuloną kijankę do komory elektroporacji.

Który jest wypełniony mediami do elektroporacji. Najtrudniejszą częścią procedury jest włożenie mikro zwierzaka do kijanki. Tak więc, aby zapewnić sukces, należy bardzo mocno zabezpieczyć zarodek, a następnie szybko przyłożyć prąd po mikroiniekcji.

Umieść zarodek w długiej studzience tak, aby głowa spoczywała w złączu T. Z odsłoniętą stroną grzbietową do dołu i stroną brzuszną, głowę należy lekko unieść w porównaniu z ogonem za pomocą kleszczy, delikatnie zabezpieczyć kijankę w studni z otaczającą ją sceną gipsową. Ważne jest, aby zabezpieczyć kijankę, aby nie drgała podczas elektroporacji, co mogłoby spowodować poważne uszkodzenie tkanek twarzy.

Aby rozpocząć tę procedurę, należy włożyć końcówkę mikropipety bezpośrednio za gruczołem cementowym i do mechy twarzy. Wstrzyknąć 30 nanolitrów roztworu do mezenchymy, wycofać mikropipetę. Szybko ustaw końcówki elektrod równolegle do głowy zarodka i zastosuj osiem 50-milisekundowych impulsów kwadratowych o napięciu 20 miliwoltów.

Następnie wycofaj elektrody za pomocą kleszczy. Ostrożnie wypuść kijankę ze studni. Następnie za pomocą pipety przenieś kijankę na trzy czwarte nom z 0,025 miligrama na mililitr.

Kijanki gentamycyny można inkubować w tym podłożu przez noc lub dłużej po 24 godzinach. Kijanki przesiewowe za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej w celu uzyskania wydajnej elektroporacji. Zastosowanie cząsteczek fluorescencyjnych pozwala na łatwe badania przesiewowe zarodków poddanych elektropostacji.

Rysunek ten przedstawia typową partię kijanek morfologicznych oligonukleotydowych poddanych elektroporacji około 1248 roku i 96 godzin po elektroporacji. Odpowiednio na etapach 30, 34 i 44. Fluorescencyjne oligonukleotydy morficzne można uwidocznić w obrębie czaszki twarzy na etapach 30 i 34.

Na etapie 44 fluorescencyjny można wykryć w chrząstkach oznaczonych białymi grotami strzałek. Obszarem silnie autofluorescencyjnym jest jelito. Postępując zgodnie z tą procedurą, możemy śledzić linię elektrokomórek, a także wymagania molekularne dla interesujących nas białek.

Podejście to można połączyć z technikami obrazowania na żywo w celu zbadania funkcji genów w czasie podczas rozwoju twarzoczaszki.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Elektroporacja mezenchyma twarzoczaszki dostarczanie DNA naładowane makrocząsteczki precyzyjne punkty czasowe precyzyjne lokalizacje rozwój neuronów rozwój siatkówki tkanki miękkie mezenchyma twarzy transfer genów tkanka chrzęstna chondropenne linie komórkowe modele zwierzęce zapalenia stawów chrząstki twarzy ksenop układ kręgowców

Related Videos

Elektroporacja pojedynczych komórek in vivo w nienaruszonym rozwijającym się mózgu

13:31

Elektroporacja pojedynczych komórek in vivo w nienaruszonym rozwijającym się mózgu

Related Videos

13.8K Views

Hodowla pierwotna i elektroporacja plazmidowa mysiego narządu Cortiego.

12:29

Hodowla pierwotna i elektroporacja plazmidowa mysiego narządu Cortiego.

Related Videos

26.6K Views

Skuteczne dostarczanie genów do wielu terytoriów OUN za pomocą elektroporacji in utero

13:12

Skuteczne dostarczanie genów do wielu terytoriów OUN za pomocą elektroporacji in utero

Related Videos

20.5K Views

Elektroporacja myszy w macicy: kontrolowana czasoprzestrzenna transfekcja genów

09:30

Elektroporacja myszy w macicy: kontrolowana czasoprzestrzenna transfekcja genów

Related Videos

43.9K Views

Metody badania morfogenezy neuronów: elektroporacja RNAi ex vivo w embrionalnej mysiej korze mózgowej

10:12

Metody badania morfogenezy neuronów: elektroporacja RNAi ex vivo w embrionalnej mysiej korze mózgowej

Related Videos

12.2K Views

Elektroporacja tyłomózgowia w celu śledzenia trajektorii aksonów i celów synaptycznych w zarodku pisklęcia

10:04

Elektroporacja tyłomózgowia w celu śledzenia trajektorii aksonów i celów synaptycznych w zarodku pisklęcia

Related Videos

11.4K Views

Elektroporacja powierzchni pialu noworodków

06:22

Elektroporacja powierzchni pialu noworodków

Related Videos

14.3K Views

Hodowla embrionalnych eksplantatów ślimakowych myszy i transfer genów za pomocą elektroporacji

09:03

Hodowla embrionalnych eksplantatów ślimakowych myszy i transfer genów za pomocą elektroporacji

Related Videos

13.4K Views

Podwójna elektroporacja in utero w celu ukierunkowania na czasowo i przestrzennie oddzielone populacje komórek

10:45

Podwójna elektroporacja in utero w celu ukierunkowania na czasowo i przestrzennie oddzielone populacje komórek

Related Videos

7.9K Views

Połączona elektroporacja in vivo i krótkotrwałe unerwienie mięśnia szkieletowego dźwigacza bocznego zorza długiego czaszki

04:44

Połączona elektroporacja in vivo i krótkotrwałe unerwienie mięśnia szkieletowego dźwigacza bocznego zorza długiego czaszki

Related Videos

904 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code