Name: Cienkowarstwowy klej chirurgiczny na bazie chitozanu, aktywowany laserowo, SurgiLux: przygotowanie i demonstracja (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-23T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 32 s
Description: Poznaj przygotowanie i zastosowanie laserowo aktywowanego kleju chirurgicznego SurgiLux na bazie chitozanu. Ta metoda umożliwia silne i elastyczne łączenie tkanek kolagenowych bez czasu utwardzania.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Autorzy dziękują za grant przyznany przez National Health and Medical Research Council of Australia (NHMRC #1000674) dla L.J.R. Foster.

1. Przygotowanie roztworu SurgiLux
<ol>
 <li>Przygotować 2% (v/v) roztwór kwasu octowego w wodzie dejonizowanej w czystym zlewce szklanym; w celu uniknięcia kontaminacji należy pracować w komorze z laminarnym przepływem powietrza.</li>
 <li>Odważyć 0,02% (w/v) chromoforu, indocyjaniny zielonej (ICG), do sterylnej probówki Eppendorf; probówkę należy owinąć folią aluminiową, aby zapobiec przenikaniu światła.</li>
 <li>Za pomocą czystej, jednorazowej pipety przenieść około 1 ml rozcieńczonego roztworu kwasu octowego do probówki w celu rozpuszczenia barwnika, delikatnie wstrząsnąć i pozostawić owiniętą w folii.</li>
 <li>Przenieść rozpuszczony ICG do zlewki i dodać 2% (w/v) proszku chitozanu, a następnie wprowadzić sterylny mieszadło magnetyczne.</li>
 <li>Przykryć zlewkę Parafilmem, a następnie owinąć folią aluminiową; zawartość mieszać z prędkością około 125 rpm przez 72 hr w temperaturze pokojowej w komorze z laminarnym przepływem powietrza.</li>
 <li>Przenieść zawartość do czystych probówek do wirowania i wirować przy 15,000 x g przez 15 min w temperaturze 4 °C, aby usunąć wszelkie cząstki stałe.</li>
 <li>Ostrożnie przenieść zielony roztwór SurgiLux do czystej zlewki szklanej, przykryć Parafilmem, a następnie owinąć folią aluminiową i przechowywać w lodówce przez 12 hr w celu zwiększenia lepkości roztworu.</li>
</ol>
2. Odlewanie błon SurgiLux
<ol>
 <li>Za pomocą sterylnej strzykawki nalać 8 ml schłodzonego roztworu SurgiLux do czystej szalki Petriego o średnicy 95 mm, a następnie delikatnie przechylić szalkę, aby zapewnić całkowite pokrycie jej powierzchni roztworem. Zmiana stosunku objętości roztworu do powierzchni odlewu pozwala na kontrolę grubości filmu, patrz Rysunek 1.</li>
 <li>Usunąć widoczne pęcherzyki powietrza z roztworu za pomocą końcówki sterylnej igły. Przykryć szalkę folią aluminiową i umieścić w lodówce w celu usunięcia pozostałych pęcherzyków o rozmiarach mikronowych.</li>
 <li>Po 20 min ostrożnie wyjąć szalkę Petriego z lodówki, umieścić ją w komorze z laminarnym przepływem powietrza, przykryć folią aluminiową i pozostawić roztwór do odparowania na 3 tygodnie.</li>
 <li>Po całkowitym odparowaniu naciąć krawędzie przezroczystego zielonego filmu SurgiLux w szalce Petriego i delikatnie „odkleić” film od powierzchni szalki.</li>
 <li>Film SurgiLux powinien być elastyczny i łatwy do manipulowania bez rozrywania lub łamania.</li>
 <li>Przechowywać okrągłe filmy SurgiLux w szalce Petriego zawiniętej w folię aluminiową w suchych warunkach do momentu użycia.</li>
</ol>
3. Aktywacja laserowa folii adhezyjnych SurgiLux
<ol>
 <li>Aby zademonstrować proces aktywacji laserowej, użyjemy fragmentu tkanki bydlęcej, np. steka, dociętego do rozmiaru 15 mm szerokości i 20 mm długości. Przetnij tkankę w linii prostej za pomocą skalpela nr 10, aby uzyskać 2 kawałki o wymiarach 15 na 10 mm.</li>
 <li>Zbliż dwa fragmenty tkanki tak, aby ich krawędzie się stykały, ale nie nakładały na siebie, a następnie za pomocą patyczka higienicznego lub gazy delikatnie wchłoń nadmiar płynu.</li>
 <li>Następnie wytnij fragment folii SurgiLux o wymiarach 7 x 9 mm i ostrożnie ułóż folię wzdłuż przeciętej tkanki; następnie delikatnie dociśnij ją suchym patyczkiem higienicznym.</li>
 <li>Folie SurgiLux są aktywowane za pomocą podczerwonego lasera diodowego przy ustawieniu 120 mW. Ponieważ jest to laser klasy IIIB, należy podjąć odpowiednie środki bezpieczeństwa, w tym zapewnienie wszystkim osobom obecnym odpowiednich okularów ochronnych.</li>
 <li>Zaczynając od rogu, naświetl folię SurgiLux laserem podczerwonym ustawionym na 120 mW z średnicą plamki wiązki 1 mm. Przesuwaj plamkę wiązki po zielonej folii z prędkością około 1 mm na sekundę. Powtórz proces naświetlania jeszcze dwa razy.</li>
</ol>
4. Wytrzymałość naprawy
<ol>
 <li>Koniec tkanki należy starannie zamocować w uchwytach urządzenia do badań wytrzymałości na rozciąganie. W tym doświadczeniu wykorzystano system Instron Mini55 z ogniwem obciążeniowym 50 Newton. Maksymalne obciążenie, wytrzymałość na rozciąganie oraz wydłużenie przy zerwaniu obliczono przy użyciu oprogramowania komputerowego Bluehill (USA). Wyznaczono średnie z co najmniej 10 próbek (n = 10).</li>
 <li>Należy usunąć luz, a następnie rozdzielać fragmenty tkanki z prędkością 1 mm na sekundę, aż do całkowitego rozdzielenia dwóch kawałków tkanki połączonych paskiem SurgiLux.</li>
</ol>

<ol><li>Kjaergard, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Suture+support%3A+is+it+advantageous%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Surg%22%5BJournal%5D)">Suture support: is it advantageous.</a> Am. J. Surg. 182, 15S-20S (2001).</li>
<li>Lauto, A., Mawad, D., Foster, L. J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adhesive+biomaterials+for+tissue+reconstruction%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chem.+Tech.+Biotech%22%5BJournal%5D)">Adhesive biomaterials for tissue reconstruction.</a> J. Chem. Tech. Biotech. 83, 464-472 (2008).</li>
<li>Fung, L. C., Mingin, G. C., Massicotte, M., Felsen, D., Poppas, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+temperature+on+tissue+thermal+injury+and+wound+strength+after+photochemical+wound+closure%5BTitle%5D)+AND+%22Lasers+Surg.+Med%22%5BJournal%5D)">Effects of temperature on tissue thermal injury and wound strength after photochemical wound closure.</a> Lasers Surg. Med. 25, 285-290 (1999).</li>
<li>Piribo, <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPiribo%2C++%22Glues+%26+Sealants%3A+Industry+Background+Report%22">Glues & Sealants: Industry Background Report</a>. , (2005).</li>
<li>Lauto, A., Hook, J., Doran, M., Camacho, F., Poole-Warren, L. A., Avolio, A., Foster, L. J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chitosan+adhesive+for+laser+tissue-welding%3A+in+vitro+characterisation%5BTitle%5D)+AND+%22Lasers+Surg.+Med%22%5BJournal%5D)">Chitosan adhesive for laser tissue-welding: in vitro characterisation.</a> Lasers Surg. Med. 36, 193-201 (2005).</li>
<li>Lauto, A., Stoodley, M., Marcel, H., Avolio, A., Sarris, M., McKenzie, G., Sampson, D. D., Foster, L. J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+and+in+vivo+tissue+repair+with+laser-activated+chitosan+adhesive%5BTitle%5D)+AND+%22Lasers+Surg.+Med%22%5BJournal%5D)">In vitro and in vivo tissue repair with laser-activated chitosan adhesive.</a> Lasers Surg. Med. 39, 19-27 (2007).</li>
<li>Lauto, A., Foster, L. J. R., Avolio, A., Sampson, D., Raston, C., Sarris, M., McKenzie, G., Stoodley, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sutureless+Nerve+Repair+with+Laser-Activated+Chitosan+Adhesive%3A+A+Pilot+in+vivo+Study%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Photomed.+Laser.+Surg%22%5BJournal%5D)">Sutureless Nerve Repair with Laser-Activated Chitosan Adhesive: A Pilot in vivo Study.</a> J. Photomed. Laser. Surg. 26 (3), 227-234 (2008).</li>
<li>Marçal, H., Badylak, S. F., Sellaro, T. L., Lauto, A., Foster, L. J. R., Mahler, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+coalescence+of+decellularized+tissue+scaffolds%2C+laser-activated+chitosan+bioadhesive+and+olfactory+ensheathing+cells+for+tissue+repair+and+regeneration+of+the+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22Lasers+Med.+Sci%22%5BJournal%5D)">The coalescence of decellularized tissue scaffolds, laser-activated chitosan bioadhesive and olfactory ensheathing cells for tissue repair and regeneration of the spinal cord.</a> Lasers Med. Sci. 23 (1), 96(2008).</li>
<li>Foster, L. J. R., Thomson, K., Marcal, H., Butt, J., Watson, S., Wakefield, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+chitosan-vancomycin+composite+biomaterial+as+a+laser+activated+surgical+adhesive+with+regional+antimicrobial+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">A chitosan-vancomycin composite biomaterial as a laser activated surgical adhesive with regional antimicrobial activity.</a> Biomacromolecules. 11 (12), 3563-3570 (2010).</li>
<li>Shahbazi, J., Marcal, H., Watson, S., Wakefield, D., Sarris, M., Foster, L. J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sutureless+sealing+of+penetrating+corneal+wounds+using+a+laser-activated+thin+film+adhesive%5BTitle%5D)+AND+%22Lasers+Surg.+Med%22%5BJournal%5D)">Sutureless sealing of penetrating corneal wounds using a laser-activated thin film adhesive.</a> Lasers Surg. Med. , accepted 15/05/2011 Forthcoming.</li>
<li>Meyers, M. A., Chen, P. -Y., Lin, A. Y. -M., Seki, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biological+materials%3A+Structure+and+mechanical+properties%5BTitle%5D)+AND+%22Prog.+Mater.+Sci%22%5BJournal%5D)">Biological materials: Structure and mechanical properties.</a> Prog. Mater. Sci. 53 (1), 1-206 (2008).</li>
</ol>

Nie zadeklarowano żadnych konfliktów interesów.

Chitozan może być dostępny w różnych zakresach masy cząsteczkowej i z różnym stopniem deacetylacji (DDA). Zróżnicowanie czystości chitozanu może prowadzić do obecności cząstek w roztworze SurgiLux; w celu ich usunięcia stosuje się wirowanie, co powinno doprowadzić do uzyskania przejrzystego zielonego roztworu. Jednak jako dodatkowy lub alternatywny etap przygotowania można zastosować również filtrację. Podobnie jak w przypadku każdego procesu przetwarzania materiałów, różnice takie jak DDA i masa cząsteczkowa chitozanu m...

<table><tbody><tr><td>Chitosan</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>448877</td><td></td></tr><tr><td>Zieleń indocyjaninowa</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I2633</td><td>Znana również jako Cardiogreen</td></tr><tr><td>Kwas octowy</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>320099</td><td></td></tr><tr><td>Podczerwony laser diodowy z dostarczaniem światłowodowym (808 nm, 120 mW, rdzeń wiązki 200 &amp;mu;m)</td><td>CNI Lasers</td><td>Fc-808</td><td>System zmienny o mocy do 5 W</td></tr><tr><td>Okulary ochronne do laserów</td><td>CNI Lasers</td><td>LS-G</td><td></td></tr><tr><td>Aparat do badań rozciągania</td><td>Instron Pty Ltd</td><td>5542</td><td>Czujnik siły 50 N</td></tr></tbody></table>

surgilux: przygotowanie i demonstracja aktywowanej laserowo cienkiej powłoki chirurgicznego kleju na bazie chitosanu

A Chitosan Based, Laser Activated Thin Film Surgical Adhesive, 'SurgiLux': Preparation and Demonstration

Szwy to technologia sprzed 4 000 lat, która dzięki swojej wytrzymałości naprawczej (~100 KPa) pozostaje „złotym standardem” w zamykaniu ran. Jednak szwy mogą stanowić ognisko infekcji, a w wielu procedurach nie są w stanie zapewnić naprawy rany lub zakłócają funkcjonalną regenerację tkanki.1 Jako alternatywy dla szwów w naprawie takich ran opracowano chirurgiczne kleje i spoiwa, takie jak te oparte na fibrynie i cyjanoakrylanach. Niemniej jednak obecne komercyjne kleje również mają istotne wady, począwszy od transferu wirusów i prionów oraz braku wytrzymałości naprawczej w przypadku klejów fibrynowych, aż po toksyczność tkankową i brak biokompatybilności w przypadku klejów opartych na cyjanoakrylanach. Ponadto obecnie dostępne kleje chirurgiczne mają zazwyczaj postać żelu i mogą charakteryzować się długim czasem utwardzania, co ogranicza ich zastosowanie.2 Podobnie wykorzystanie laserów UV w celu ułatwienia mechanizmów sieciowania w „lutowniczych” preparatach białkowych lub albuminowych może prowadzić do uszkodzenia DNA, natomiast laserowe spawanie tkanek (LTW) predysponuje do uszkodzeń termicznych tkanek.3 Pomimo tych wad, kleje i LTW przejęły około 30% rynku zamykania ran, którego wartość szacuje się na ponad 5 miliardów USD rocznie, co jest znaczącym dowodem na zapotrzebowanie na technologie bezszwowe.4
W dążeniu do opracowania technologii bezszwowej wykorzystaliśmy chitosan jako biomateriał do stworzenia elastycznego, cienkiego filmu w postaci aktywnego laserowo kleju chirurgicznego o nazwie „SurgiLux”. Ten nowatorski bioklej wykorzystuje unikalną kombinację biomateriałów i fotoniki, które posiadają zatwierdzenie FDA i są z powodzeniem stosowane w różnych produktach i zastosowaniach biomedycznych. SurgiLux eliminuje wszystkie wady związane ze szwami oraz obecnymi klejami chirurgicznymi (patrz Tabela 1).
W niniejszej prezentacji opisujemy stosunkowo prosty protokół wytwarzania SurgiLux oraz demonstrujemy jego aktywację laserową i wytrzymałość spoiny tkankowej. Filmy SurgiLux przylegają do tkanki kolagenowej bez modyfikacji chemicznych, takich jak sieciowanie, a za pomocą naświetlania przy użyciu laserowego promieniowania podczerwonego o stosunkowo niskiej mocy (120 mW) zamiast światła UV. Filmy chitozanowe wykazują naturalne, lecz słabe przyciąganie adhezyjne do kolagenu (~3 KPa); aktywacja laserowa filmów SurgiLux na bazie chitozanu wzmacnia siłę tej adhezji poprzez oddziaływania łańcuchów polimerowych w wyniku przejściowej rozszerzalności cieplnej.5 Bez tego procesu „aktywacji” filmy SurgiLux są łatwo usuwalne.6-9 SurgiLux został przetestowany zarówno in vitro, jak i in vivo na różnych tkankach, w tym na nerwach, jelitach, oponie twardej i rogówce. We wszystkich przypadkach wykazał dobrą biokompatybilność oraz pomijalne uszkodzenia termiczne w wyniku naświetlania.6-10

Wirowanie prowadzi do otrzymania przezroczystego zielonego roztworu, którego lepkość wzrasta po przechowywaniu w temperaturze 4-6 °C. Po odstawieniu na 3 tygodnie zielony roztwór przekształca się w przezroczystą zieloną błonę SurgiLux o grubości około 20 mikronów, która, jak pokazano na filmie, jest łatwo elastyczna.
Po naświetleniu laserem folia SurgiLux wiąże się z tkanką. Można to zaobserwować na krawędziach folii, gdzie tkanka zdaje się kurczyć podczas przechodzenia wiązki lasera nad folią...

Opisano proces wytwarzania nowego, elastycznego chirurgicznego kleju w formie cienkiej warstwy z zatwierdzonych przez FDA składników: chitosanu oraz zieleni indocyjaninowej. Zademonstrowano wiązanie tego kleju z tkanką kolagenową poprzez prosty proces aktywacji z użyciem niskomocnego lasera podczerwonego.

SurgiLux: przygotowanie i demonstracja aktywowanej laserowo cienkiej powłoki chirurgicznego kleju na bazie chitosanu

Szwy są technologią liczącą 4000 lat, która dzięki swojej wytrzymałości w procesie naprawy (~100 KPa) pozostaje „złotym standardem” w zamykaniu ran. Jednakże szwy...

Ogólnym celem tej procedury jest zademonstrowanie nowego aktywowanego laserem kleju chirurgicznego o nazwie Sux. Jest to realizowane poprzez przygotowanie roztworu kleju Sux, a następnie wytworzenie błony klejącej Sux.Następnie stosuje się naświetlanie laserowe, aby związać cienką warstwę kleju Sux z tkanką. Na koniec sprawdza się trwałość połączenia klejowego. W rezultacie można uzyskać wyniki wykazujące, że cienka warstwa kleju Sul lock silnie wiąże się z tkanką po naświetlaniu laserowym.Główną zaletą tej techniki w porównaniu z istniejącymi metodami, takimi jak chirurgiczne kleje fibrynowe i cyjanoakrylowe, jest fakt, że klej Sux tworzy cienką warstwę, która zapewnia łatwość operowania, nie wymaga czasu utwardzania i gwarantuje jednorodne wiązanie z tkanką. Procedurę tę zaprezentuje Elizabeth Caston, doktorantka w Grupie Badawczej nad Biopolimerami. Aby przygotować roztwór UX w komorze z laminarnym przepływem powietrza, należy zacząć od sporządzenia 2% roztworu kwasu octowego i wody dejonizowanej w sterylnej probówce typu Eppendorf.Odważ chromofor w cyjanie w zieleni, czyli ICG, a probówkę owiń folią, aby zapobiec przenikaniu światła. Używając czystej jednorazowej pipety, przenieś około 1 ml rozcieńczonego roztworu kwasu octowego do probówki i delikatnie wstrząśnij, aby rozpuścić barwnik. Przenieś rozpuszczony ICG do zlewki i dodaj proszek 2% chitosan.Przed dodaniem sterylnego mieszadełka magnetycznego przykryć zlewkę parafilmem i owinąć ją folią. Następnie, w komorze z laminarnym przepływem powietrza, umieścić zawartość na mieszalce z prędkością około 125 RPM przez 72 godziny w temperaturze pokojowej. Po inkubacji przenieść zawartość do czystych probówek i odwirować przy 15 000 G przez 15 minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza.Aby usunąć wszelkie zanieczyszczenia cząsteczkowe, ostrożnie przelej zielony roztwór UX do czystego zlewki szklanej. Przykryj go parafilmem, a następnie owiń zlewkę folią. Przechowuj roztwór w lodówce przez 12 godzin, aby zwiększyć jego lepkość, używając do tego sterylnej strzykawki.Odlej osiem mililitrów schłodzonego roztworu sux do czystej szalki Petriego o średnicy 95 milimetrów i delikatnie przechyl naczynie, aby zapewnić całkowite pokrycie dna roztworem. Za pomocą końcówki sterylnej igły usuń wszelkie widoczne pęcherzyki powietrza z roztworu. Następnie przykryj szalkę folią i wstaw do lodówki na 20 minut.Aby usunąć wszelkie pozostałe pęcherzyki powietrza o rozmiarach mikronowych, ostrożnie przenieś szalkę Petriego do komory z laminarnym przepływem powietrza i pozostaw roztwór do odparowania na trzy tygodnie. Po całkowitym odparowaniu nacinamy zewnętrzne krawędzie przezroczystych zielonych filmów Sux i delikatnie odklejamy film od powierzchni szalki. Przechowuj okrągłe filmy UX w szalce Petriego zawinięte w folię w suchych warunkach do momentu użycia.Proces aktywacji laserem zademonstrowano tutaj na kawałku tkanki bydlęcej, na przykład na wycinku, który najpierw należy przyciąć do wymiarów 15 milimetrów szerokości i 20 milimetrów długości. Używając skalpela chirurgicznego nr 10, przetnij tkankę na pół, aby uzyskać dwa kawałki o wymiarach około 15 na 10 milimetrów każdy. Ułóż oba kawałki tkanki tak, aby ich krawędzie się stykały, ale nie nakładały na siebie. Następnie, używając patyczka higienicznego lub gazy, delikatnie wchłoń nadmiar płynu.Następnie wyciąć fragment folii UX o wymiarach siedem na dziewięć milimetrów i ostrożnie ułożyć go wzdłuż przeciętego fragmentu tkanki, dociskając go delikatnie suchym patyczkiem bawełnianym. Następnie, mając na sobie odpowiedni sprzęt ochronny do laserów klasy 3B, w tym okulary ochronne, należy użyć laserowej diody podczerwonej ustawionej na 120 milliwattów i, zaczynając od rogu, przesuwać wiązkę nad folią ULX z prędkością około jednego milimetra na sekundę.Powtórz proces naświetlania jeszcze dwa razy. Po naświetlaniu sprawdź wytrzymałość naprawy, uważnie mocując końce tkanki w zaciskach urządzenia do badań rozciągania. Na koniec wyeliminuj luz, a następnie rozdziel fragmenty tkanki z prędkością 1 mm/s, aż dwa kawałki tkanki połączone paskiem sux całkowicie się rozdzielą po naświetleniu laserem. Folia sux wiąże się z tkanką, co można zaobserwować na krawędziach folii, gdzie tkanka wydaje się skurczona w wyniku przejścia wiązki lasera nad folią.Zauważmy, że nie obserwuje się zwęglania ani ablacji tkanki. Siła wiązania sux z tkanką jest wystarczająca do uniesienia przeciętych fragmentów tkanki i po jej opracowaniu powinna wynosić około 15 kilo pascals. Technika sux utorowała drogę badaczom w dziedzinie chirurgii do eksploracji zamykania i uszczelniania ran za pomocą SULs w różnych scenariuszach klinicznych.

a-chitosan-based-laser-activated-thin-film-surgical-adhesive-surgilux

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bioinżynieria

Oparty na chitosanie, aktywowana laserowo cienki film chirurgiczny klej chirurgiczny, 'SurgiLux': Przygotowanie i demonstracja

Do naprawy tkanek podczas procedur chirurgicznych zazwyczaj niezbędne są szwy. Jednak ich stosowanie może być problematyczne, ponieważ są one inwazyjne i mogą uszkodzić tkankę. W niniejszym opracowaniu przedstawiono metody wytwarzania i aplikacji nowatorskiego kleju tkankowego. Ta folia adhezyjna jest aktywowana laserowo i nie wymaga stosowania szwów.

Wytwarzanie i zastosowanie błon z błękitu bengalskiego i chitosanu w laserowej naprawie tkanek

Niniejszy artykuł opisuje podejście w zakresie biofabrykacji: osadzanie polisacharydów reagujących na bodźce w obecności spolaryzowanych elektrod w celu stworzenia biokompatybilnych filmów, które mogą zostać funkcjonalizowane komórkami lub białkami. Przedstawiamy laboratoryjną strategię wytwarzania tych filmów, a także ich podstawowe zastosowania w tworzeniu interaktywnych, biofunkcjonalizowanych powierzchni dla aplikacji typu lab-on-a-chip.

Łączenie interfejsu bioelektronicznego za pomocą biofabrykacji

W przeszczepie śródbłonka proponuje się całkowicie laserową procedurę. Technika chirurgiczna opiera się na wykorzystaniu lasera femtosekundowego do przygotowania tkanki dawcy. Następnie stosuje się technikę spawania laserowego, aby zabezpieczyć śródbłonek dawcy we właściwej pozycji.

"Całkowicie laserowy" przeszczep śródbłonka

Przygotowano rusztowanie do wstrzykiwań inżynierii tkankowej składające się z mikrocząsteczek poli(N-izopropylacrylamidu)-siarczanu chondroityny (PNIPAAm-g-CS)-zawierającego poli(N-izopropylacrylamid). W tym badaniu analizowana jest siła adhezji, właściwości pęcznienia i biokompatybilność in vitro. Opracowane tutaj techniki charakterystyki mogą mieć zastosowanie do innych systemów termożelowania.

Synteza termożelujących kompozytów siarczanowych poli(N-izopropylacyloamidu)-grafto-chondroityny z mikrocząstkami alginianowymi dla inżynierii tkankowej

Metoda zamrażania i rozmrażania jest stosowana do produkcji hydrożeli chitozanowo-poli(alkohol winylowy) bez środków sieciujących. W przypadku tej metody ważne jest, aby wziąć pod uwagę warunki zamrażania (temperatura, liczba cykli) i stosunek polimeru, które mogą wpływać na właściwości i zastosowania otrzymanych hydrożeli.

Metoda zamrażania i rozmrażania do przygotowania hydrożeli chitozanowo-poli(alkohol winylowy) bez środków sieciujących i badań uwalniania diflunisalnego

Tutaj prezentujemy protokoły hodowli sferoidów komórek ludzkiego więzadła przyzębia (PDL) za pomocą filmów chitozanowych. Hodowla trójwymiarowych (3D) sferoid komórkowych stanowi alternatywę dla konwencjonalnego systemu hodowli polistyrenowych do hodowli tkankowych (TCPS).

Tworzenie sferoid ludzkich komórek więzadeł przyzębia na błonach chitozanu

Przygotowane rusztowanie DOX-CL spełniało warunki idealnego opatrunku DW pod względem wytrzymałości mechanicznej, porowatości, absorpcji wody, szybkości degradacji, przedłużonego uwalniania, właściwości przeciwbakteryjnych, biokompatybilności i przeciwzapalnych, które są uważane za niezbędne do odzyskania uszkodzonej tkanki w DW.

Rusztowanie kompozytowe z kolagenem i chitozanem naładowane doksycykliną do przyspieszonego gojenia się ran cukrzycowych

Obecny protokół opisuje nieopartą na emulsji metodę wytwarzania mikrożeli chitozanowo-genipinowych. Wielkość tych mikrożeli może być precyzyjnie kontrolowana i mogą one wykazywać pęcznienie zależne od pH, ulegać degradacji in vivo i być naładowane cząsteczkami terapeutycznymi, które uwalniają się z czasem w sposób ciągły, co czyni je bardzo istotnymi dla zastosowań inżynierii tkankowej.

Wytwarzanie mikrożeli chitozanowo-genipinowych o kontrolowanej wielkości i wolnych od emulsji do zastosowań w inżynierii tkankowej

Ten artykuł opisuje metodę przewlekłej obserwacji in vivo spoczynkowego mikrogleju w mysim hipokampie CA1 przy użyciu precyzyjnie kontrolowanej chirurgii i mikroskopii dwufotonowej.

In vivo (in vivo) Przewlekłe dwufotonowe obrazowanie mikrogleju w hipokampie myszy

Celem tego projektu jest skuteczne zmniejszenie występowania działań niepożądanych, takich jak rumień i pigmentacja po nieablacyjnym leczeniu laserem frakcyjnym poprzez połączenie nieablacyjnego lasera frakcyjnego 1565 z 30% supercząsteczkowym kwasem salicylowym, zapewniając pacjentom nową, bezpieczniejszą metodę leczenia odmładzania twarzy.

Poprawa odmładzania twarzy dzięki połączeniu nieablacyjnego lasera frakcyjnego o długości fali 1565 nm z 30% supramolekularnym kwasem salicylowym

W tym miejscu przedstawiamy protokół wytwarzania unikalnego dwuwarstwowego urządzenia mikroprzepływowego do badania elektromechanicznej regulacji homeostazy tkanek nabłonkowych. Urządzenie aplikuje statyczne fizjologiczne prądy elektryczne prostopadłe do płaszczyzny tkanki, wpływając na adhezję, proliferację i wytłaczanie komórki. Obrazowanie żywych komórek i pomiary naprężeń mechanicznych ujawniają mechanizmy tych procesów.

Ujawnienie elektromechanicznej kontroli homeostazy tkanek za pomocą dwuwarstwowego urządzenia mikroprzepływowego

Poznaj przygotowanie i zastosowanie laserowo aktywowanego kleju chirurgicznego SurgiLux na bazie chitozanu. Ta metoda umożliwia silne i elastyczne łączenie tkanek kolagenowych bez czasu utwardzania.

SurgiLux: przygotowanie i demonstracja aktywowanej laserowo cienkiej powłoki chirurgicznego kleju na bazie chitosanu

Przeglądaj więcej filmów