February 24th, 2012
Interfejs elektroda-tkanka elektrod rejestrujących neurony można scharakteryzować za pomocą spektroskopii impedancji elektrycznej (EIS) i cyklicznej woltamperometrii (CV). Zastosowanie polaryzacji napięcia zmienia właściwości elektrochemiczne granicy faz elektroda-tkanka i może poprawić zdolność rejestrowania. Polaryzacja napięciowa, EIS, CV i zapisy neuronowe są komplementarne.
Ogólnym celem tej procedury jest monitorowanie jakości interfejsu tkankowego elektrody wszczepionych systemów protetycznych do rejestracji neuronowej, a także poprawa jakości zapisu i długoterminowej funkcjonalności. Osiąga się to poprzez pierwsze zbieranie codziennych danych z elektrochemicznej spektroskopii impedancyjnej i rejestracji neuronowej. Cykliczne dane telemetryczne V lub CV są zbierane w celu uzyskania dalszych szczegółów na temat jakości interfejsów tkankowych elektrod, które nie wykazują aktywności neuronalnej i wykazują wysoką impedancję.
Następnie na cztery sekundy stosuje się korekcyjne odchylenie napięcia 1,5 V. Następnie następuje ciągłe gromadzenie danych i dodatkowe polaryzowanie napięcia w razie potrzeby. Ostatecznie przy użyciu tych metod możliwa jest niższa impedancja oraz poprawa lub wznowienie zarejestrowanej aktywności neuronalnej.
Główną przewagą tej techniki nad istniejącymi metodami, takimi jak dostarczanie leków lub modyfikacja usług, jest to, że polaryzacja napięcia może mieć silny wpływ na poprawę funkcjonalności i wydajności systemów protetycznych rejestrujących neurony po dziesiątkach do setek dni po implantacji. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie inżynierii neuronowej, takie jak to, jak poprawić funkcjonalny okres eksploatacji wszczepialnych systemów elektrod. Implikacje tej techniki rozciągają się w kierunku terapii lub diagnozy wielu deficytów neurologicznych.
Jest to ważne, ponieważ częstość występowania i możliwości leczenia tych deficytów wzrastają w laboratorium samochodowym metamfetaminy. Statystyka PG dostosowana za pomocą dodatków FA two i kanałów mucks. Zbuduj adapter stopnia głównego, aby połączyć oborniki kanału ze stopniem głównym.
Teraz podłącz elektrody robocze i czujnikowe do dodatku obornika kanałowego. Następnie podłącz elektrody odniesienia i przeciwelektrody przymocowane do zwierzęcia poddanego części adaptera stopnia czołowego podłączonej do ścieżki powrotnej prądu. Uruchom oprogramowanie analizatora odpowiedzi częstotliwościowej i sprawdź, czy plik procedury jest ustawiony na testowanie dwóch przebiegów wieloznakowych, z których każdy składa się z 15 znaków jednocześnie w zakresie od 10 herców do 30 kiloherców.
Upewnij się również, że przyłożone napięcie wynosi 25 miliwoltów lub mniej. Teraz otwórz i edytuj plik projektu. Projekt wykorzystuje plik procedury, który przechodzi przez każdy kanał i zapisuje wynik.
Połącz zwierzę z pasywnym stopniem głowy bez wzmocnienia. Aktywne stopnie głowicy nie będą przekazywać sygnałów wejściowych. Wykonaj plik projektu w zależności od ustawień.
Nagrania z każdego kanału trwają od 10 sekund do kilku minut. Teraz wyświetl i zinterpretuj wynik. Przekaż wyjściowe pliki tekstowe za pomocą MATLAB i utwórz wykres nyquist lub bode.
Zależne od częstotliwości przesunięcia w fazie wskazują na odpowiedź tkanki. Uruchom oprogramowanie systemu elektrochemicznego ogólnego przeznaczenia. Sprawdź, czy ustawienia pliku procedury są ustawione tak, aby przemiatać napięcie na poziomie 50 miliwoltów na sekundę i mieszczą się w granicach hydrolizy.
Uruchom co najmniej trzy skanowania, aby system osiągnął równowagę i zapisz wyniki z końcowego skanowania. Szybkość skanowania można zwiększyć do jednego wolta na sekundę, aby skrócić czas pomiaru. Jednak kształt krzywej dożylnej prawdopodobnie ulegnie zmianie, jeśli szybkość skanowania będzie szybsza niż reakcje przenoszenia ładunku zachodzące na granicy faz tkanki elektrody.
Następnie otwórz i edytuj plik projektu. Projekt wykorzystuje plik procedury, który przechodzi przez każdy kanał i zapisuje wyniki. Połącz zwierzę z pasywnym stopniem głowy i wykonaj plik projektu z prędkością jednego wolta na sekundę.
Zbieranie trwa 10 sekund na kanał przy użyciu szybkości oszustwa 50 miliwoltów na sekundę. Trwa około trzech minut na kanał. Na koniec wyświetl i zinterpretuj wyniki.
Przekaż wyjściowe pliki tekstowe za pomocą MATLAB i wykreśl relację IV. Zdolność przenoszenia ładunku jest określana ilościowo poprzez integrację obszaru prądu cewnika w CV E. Najbardziej krytyczną decyzją w tym protokole jest podjęcie decyzji, kiedy zastosować polaryzację napięcia. Jest to możliwe dzięki cyklicznej telemetrii impedancji i danym z nagrań.
Uruchom oprogramowanie systemu elektrochemicznego ogólnego przeznaczenia i sprawdź, czy plik procedury jest ustawiony na użycie metody kroków i przemiatania. Zwiększ napięcie o 1,5 V na czas czterech sekund. Następnie otwórz i edytuj plik projektu, który używa pliku procedury do przechodzenia przez każdy kanał i zapisywania wyniku.
Połącz zwierzę z pasywną sceną głowy i wykonaj nagrania pliku projektu z każdego kanału. Poświęć około 10 sekund, a następnie zbierz dane z CV i nagrań EIS, a następnie zinterpretuj wyniki w typowym przepływie pracy. Nagrania i EIS są zbierane codziennie lub co tydzień we wszystkich kanałach, podczas gdy CV i odmładzanie mogą być wykorzystywane.
Jeśli aktywność skokowa nie jest już wykrywalna, EIS zmienia się w ciągu kilku dni lub tygodni po wszczepieniu elektrody. Niebieskie dane zostały zebrane natychmiast po implantacji, a zielone cztery miesiące później. Gdy dane EIS są wyświetlane jako wykres nyquista, półkole o wyższych częstotliwościach w pobliżu początku układu współrzędnych wskazuje na odpowiedź tkanki w miejscu elektrody.
Analiza CV wytwarza krzywą napięcia prądu, która wykazuje pewną histerezę. Najistotniejszą statystyką CV jest nośność ładunku, obszar wewnątrz krzywej IV znormalizowany przez obszar miejsca elektrody. Do mikrostymulacji preferowane są elektrody o dużej pojemności ładunku.
Podczas odmładzania stosowany jest impuls napięciowy. Zwykle skutkuje to zwiększoną pojemnością ładowania i zmniejszoną impedancją, skoki można również przywrócić w kanałach, które wcześniej miały skoki. Chociaż odmładzanie ma tylko krótkotrwały wpływ na impedancję i stosunek sygnału do szumu, technika ta może być stosowana codziennie.
W danych zbieranych codziennie od świnki morskiej, której wszczepiono 16-kanałową matrycę, odmładzanie miało silny wpływ na obniżenie wielkości impedancji jednego kiloherca o rząd wielkości po każdym zastosowaniu. W wyniku odzyskanych sygnałów i niższej impedancji, SNR wzrastał po każdej sesji odmładzającej. Ostatecznie wszystkie sygnały zostały utracone po 160 dniach od implantacji, a odmładzanie nie było już skuteczne.
Po opanowaniu tej techniki można ją wykonać w około godzinę. Podczas próby tej procedury ważne jest, aby upewnić się, że wykonane są prawidłowe połączenia i że wyniki spektroskopii impedancyjnej wskazują na znaczącą odpowiedź tkanek przed zabiegami biologicznymi napięciowymi.
To badanie koncentruje się na interfejsie elektroda-tkanki elektrod rejestrujących nerwy, wykorzystując spektroskopię impedancji elektrycznej (EIS) i woltomierzy cyklicznych (CV) w celu poprawy możliwości rejestracji. Poprzez zastosowanie uprzedzenia napięciowego, naukowcy dążą do poprawy właściwości elektrochemicznych interfejsu, a tym samym zwiększenia jakości rejestracji nerwowych.
Monitoring and improving the electrode-tissue interface is critical for extending the functional lifetime of neural recording systems in preclinical discovery. Voltage biasing combined with EIS and CV enables mechanistic de-risking of implantable devices by identifying interface degradation and applying corrective interventions. This approach supports predictive confidence in neural prosthetic development by linking electrochemical changes to neural signal recovery, informing go/no-go decisions in early-stage neurotechnology pipelines.
The method integrates into the discovery continuum from hypothesis testing through lead identification by providing quantitative, longitudinal interface metrics that precede functional validation.