-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Mysi model treningu mięśni za pomocą elektrycznej stymulacji nerwowo-mięśniowej
Mysi model treningu mięśni za pomocą elektrycznej stymulacji nerwowo-mięśniowej
JoVE Journal
Medicine
This content is Free Access.
JoVE Journal Medicine
A Murine Model of Muscle Training by Neuromuscular Electrical Stimulation

Mysi model treningu mięśni za pomocą elektrycznej stymulacji nerwowo-mięśniowej

Full Text
21,334 Views
08:24 min
May 9, 2012

DOI: 10.3791/3914-v

Fabrisia Ambrosio1,2,3, G. Kelley Fitzgerald2, Ricardo Ferrari1,2, Giovanna Distefano1,2, George Carvell2

1Department of Physical Medicine and Rehabilitation,University of Pittsburgh, 2Department of Physical Therapy,University of Pittsburgh, 3McGowan Institute for Regenerative Medicine,University of Pittsburgh

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Opisany jest mysi model elektrycznej stymulacji nerwowo-mięśniowej (NMES), bezpiecznej i niedrogiej metody klinicznej dla mięśni przedniego przedziału. Model ten ma tę zaletę, że modyfikuje łatwo dostępne urządzenie kliniczne w celu wywoływania ukierunkowanych i specyficznych skurczów mięśni u myszy.

Transcript

Ogólnym celem tej procedury jest zademonstrowanie modelu treningu mięśni z wykorzystaniem elektrycznej stymulacji nerwowo-mięśniowej. Osiąga się to poprzez najpierw dostosowanie klinicznie dostępnej elektrody powierzchniowej, która jest przeznaczona do stosowania u ludzi, do elektrody powierzchniowej, która może być stosowana u myszy, a następnie znieczulenie i ustawienie zwierzęcia do stymulacji. Następnie umieść elektrodę powierzchniową bezpośrednio nad głębokim nerwem strzałkowym tuż dystalnie do głowy kości strzałkowej.

Ostatnim krokiem jest wykonanie protokołu stymulacji przednich mięśni lokowych. Ostatecznie analiza histologiczna wykazuje wzrost unaczynienia mięśni szkieletowych, a testy kurczliwości in situ wykazują zwiększoną szczytową siłę satanistyczną . Cześć, mam na imię Fabrizio.

Jestem adiunktem na Wydziale Medycyny Fizykalnej i Rehabilitacji Uniwersytetu w Pittsburghu oraz dyrektorem Laboratorium Rehabilitacji Komórkowej. Dzisiaj zademonstrujemy Wam lustrzany model treningu mięśni z wykorzystaniem elektrycznej stymulacji nerwowo-mięśniowej. W pierwszej części demonstracji pokażemy, jak zmodyfikować klinicznie dostępną elektrodę powierzchniową w elektrodę, której można użyć do stymulacji mięśni szkieletowych u myszy.

W drugiej części pokażemy, jak wdrożyć ten protokół stymulacji elektrycznej nerwowo-mięśniowej w swoich eksperymentach i rozwoju modeli zwierzęcych, które ściśle naśladują modalności. Korzystanie z kliniki jest ważne, ponieważ może pomóc nam odpowiedzieć na pytania związane z fizjologią mięśni szkieletowych, takie jak to, w jaki sposób aktywacja mięśni wyzwala mechaniczne reakcje transdukcyjne, a w tym możemy spojrzeć na to na poziomie molekularnym, komórkowym i tkankowym. Cześć, nazywam się Ricardo Ferrari.

Jestem doktorantką na Wydziale Fizjoterapii Uniwersytetu w Pittsburghu. Elektrostymulacja w pobliżu mięśni jest powszechną procedurą stosowaną w klinice w celu zwiększenia siły mięśniowej i poprawy gojenia mięśni. Pozostaje jednak wiele pytań co do optymalnych parametrów, które należy zastosować.

Ten model zwierzęcy może pomóc w opracowaniu określonych protokołów stymulacji elektrycznej do stosowania w warunkach klinicznych. Aby przygotować elektrodę, zacznij od zgięcia dwóch złotych kołków o długości sześciu milimetrów pod kątem 90 stopni. Następnie odsłoń około siedmiu centymetrów dwóch drutów miedzianych, usuwając izolację zewnętrzną.

Następnie przewody ze złączy do dwóch złotych pinów, które są oddalone od siebie o około 3,5 milimetra. Po tym miejscu nałóż rurkę termokurczliwą na połączenie między drutami miedzianymi a złotymi kołkami w celu izolacji i stabilizacji, podgrzej rurkę termokurczliwą, upewnij się, że złote kołki są równoległe do siebie i wsuń je przez płytkę drukowaną tak, aby końcówki były wyrównane. Następnie osadź kołki w wielu aplikacjach przezroczystej żywicy epoksydowej, pozwalając żywicy epoksydowej całkowicie wyschnąć między aplikacjami na końcu, przeszlifuj żywicę epoksydową, aby odsłonić końcówki złotych kołków.

Następnie użyj woltomierza, aby sprawdzić, czy przewody nie są zwarte elektrycznie. Następnie użyj plastikowej rurki, aby zaizolować metalowe styki żeńskiego złącza przewodu dwukierunkowego. Następnie podłącz przewody elektrody z urządzenia NMES do żeńskiego złącza przewodu dwukierunkowego.

Wszystkie procedury zostały sprawdzone i zatwierdzone przez University of Pittsburgh IACUC i zostały przeprowadzone w PHS Assured i alac. Międzynarodowe akredytowane programy i placówki znieczulają zwierzę poprzez wdychanie izofluoru. Zwierzę powinno pozostać w znieczuleniu przez cały czas trwania sesji NMES.

Znieczulenie należy potwierdzić za pomocą testu odruchu odruchu prostownika palca u nogi. Następnie ułóż zwierzę w bocznej pozycji leżącej. Następnie ogolić tylną kończynę, przetrzeć ją alkoholem, przetrzeć elektrodę 3% wybielaczem.

Następnie za pomocą wody ustaw parametry stymulacji, w tym czas trwania impulsu 150 mikrosekund i częstotliwość 50 PP s. Następnie ustaw czas stymulacji na pięć sekund z 0,5-sekundowym wzrostem i 0,5-sekundowym spadkiem. Pozwoli to mięśniowi stopniowo przyzwyczaić się do stymulacji i będzie wygodniejsze dla zwierzęcia.

Następnie ustaw czas wyłączenia między skurczami na 10 sekund. Można to dostosować w zależności od pożądanego efektu, ale skrócenie czasu pracy spowoduje szybszą inicjację zmęczenia mięśni. Następnie wysterylizuj elektrodę 3% wybielaczem, a następnie wodą i nałóż żel przewodzący na elektrodę w celu stymulacji mięśni przedniego przedziału, w tym najdłuższego mięśnia piszczelowego przedniego i prostownika palca, umieść elektrodę powierzchniową bezpośrednio nad wspólnym nerwem kroczowym zwierzęcia położonym tuż dystalnie do bocznego kłykcia kości udowej.

Umiejscowienie elektrody jest potwierdzone, gdy stymulacja wywołuje pełne zgięcie grzbietowe kostki i pełne wyprostowanie palców. Z drugiej strony, zgięcie grzbietowe łapy bez wyprostu palca sugeruje, że stymulowany jest tylko mięsień piszczelowy przedni. Następnie rozpocznij intensywność NMES przy dziewięciu miliamperach, wykonaj dwie serie skurczów, co daje w sumie 20 skurczów z pięciominutowym odpoczynkiem między seriami w okresie odpoczynku, przeprowadzana jest stymulacja kończyny przeciwległej.

Teraz umieść zwierzę w komorze odzyskiwania. Po czterech tygodniach NMES u myszy z poślizgiem MDX w wieku od trzech do pięciu miesięcy, barwienie mięśni szkieletowych hematyną i eoiną nie wykazuje wzrostu liczby włókien jądrzastych centralnie w porównaniu z niestymulowanymi odpowiednikami kontrolnymi. Sugeruje to, że zastosowanie NMES nie inicjuje kaskady regeneracji zwyrodnień.

Immunohistochemia CD 31 jako marker komórek śródbłonka ujawnia, że w porównaniu z myszami kontrolnymi, które nie otrzymały stymulacji, cztery tygodnie NMES spowodowały znaczącą angiogenezę leczonego mięśnia. Rysunek ten pokazuje zwiększoną szczytową tytaniczną siłę mięśni leczonych NMES w porównaniu z mięśniami kontrolnymi nieleczonymi. Po opanowaniu tej techniki wypełnienie protokołu powinno zająć około 15 minut na zwierzę.

Najtrudniejszą częścią tego protokołu jest znalezienie odpowiedniego miejsca dla elektrody, aby wywołać pożądaną reakcję mięśni. Dziękuję za oglądanie. W razie jakichkolwiek pytań prosimy o kontakt z naszym laboratorium.

Explore More Videos

Model mysi trening mięśni elektryczna stymulacja nerwowo-mięśniowa NMES mięśnie szkieletowe przezskórna stymulacja powierzchniowa jednostka motoryczna włókna mięśniowe przerost włókien mięśniowych wzmocnienie mięśni angiogeneza wydzielanie czynnika wzrostu aktywacja komórek prekursorowych mięśni parametry stymulacji efekt leczenia rodzaj włókna przeciwwskazania dostępne na rynku elektrody

Related Videos

Zaprogramowana stymulacja elektryczna u myszy

07:29

Zaprogramowana stymulacja elektryczna u myszy

Related Videos

20.9K Views

Inżynieria tkanek mięśni szkieletowych z mysich komórek progenitorowych mioblastów i zastosowanie stymulacji elektrycznej

08:38

Inżynieria tkanek mięśni szkieletowych z mysich komórek progenitorowych mioblastów i zastosowanie stymulacji elektrycznej

Related Videos

21.3K Views

Ocena funkcji nerwowo-mięśniowej za pomocą przezskórnej elektrycznej stymulacji nerwów

07:53

Ocena funkcji nerwowo-mięśniowej za pomocą przezskórnej elektrycznej stymulacji nerwów

Related Videos

22.4K Views

Zastosowanie przewlekłej stymulacji do badania adaptacji fenotypowych mięśni szkieletowych szczurów wywołanych aktywnością skurczową

09:50

Zastosowanie przewlekłej stymulacji do badania adaptacji fenotypowych mięśni szkieletowych szczurów wywołanych aktywnością skurczową

Related Videos

6.9K Views

Paradygmaty treningu stymulacji elektrycznej kończyn dolnych po urazie rdzenia kręgowego

08:07

Paradygmaty treningu stymulacji elektrycznej kończyn dolnych po urazie rdzenia kręgowego

Related Videos

12.9K Views

Nieinwazyjna ocena funkcji mięśni zginacza grzbietowego u myszy

05:31

Nieinwazyjna ocena funkcji mięśni zginacza grzbietowego u myszy

Related Videos

11.4K Views

Funkcjonalna izolacja pojedynczych jednostek motorycznych mięśnia brzuchatego łydki przyśrodkowego szczura

06:54

Funkcjonalna izolacja pojedynczych jednostek motorycznych mięśnia brzuchatego łydki przyśrodkowego szczura

Related Videos

5.6K Views

Inżynieria i charakterystyka modelu optogenetycznego ludzkiego połączenia nerwowo-mięśniowego

11:07

Inżynieria i charakterystyka modelu optogenetycznego ludzkiego połączenia nerwowo-mięśniowego

Related Videos

2.6K Views

Trening oporowy dostosowany do dawki u myszy ze zmniejszonym ryzykiem uszkodzenia mięśni

07:29

Trening oporowy dostosowany do dawki u myszy ze zmniejszonym ryzykiem uszkodzenia mięśni

Related Videos

2K Views

Wielokrotne pomiary wzrostu mięśni szkieletowych w czasie rzeczywistym u poszczególnych żywych ryb danio pręgowanych poddanych zmienionej aktywności elektrycznej

11:41

Wielokrotne pomiary wzrostu mięśni szkieletowych w czasie rzeczywistym u poszczególnych żywych ryb danio pręgowanych poddanych zmienionej aktywności elektrycznej

Related Videos

2.3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code