-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Engineering
Optyczne wychwytywanie nanocząstek
Optyczne wychwytywanie nanocząstek
JoVE Journal
Engineering
This content is Free Access.
JoVE Journal Engineering
Optical Trapping of Nanoparticles

Optyczne wychwytywanie nanocząstek

Full Text
23,020 Views
13:39 min
January 15, 2013

DOI: 10.3791/4424-v

Jarrah Bergeron1, Ana Zehtabi-Oskuie1, Saeedeh Ghaffari1, Yuanjie Pang1, Reuven Gordon1

1Electrical and Computer Engineering,University of Victoria

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article details a procedure for low power optical trapping of dielectric nanoparticles using a double-nanohole in a metal film. The method allows for trapping particles around 20 nanometers in size, providing insights into biophysical processes.

Key Study Components

Area of Science

  • Optical trapping
  • Nanoparticle manipulation
  • Biophysical measurements

Background

  • Optical trapping techniques are essential for studying small particles.
  • Traditional methods struggle with smaller nanoparticles.
  • Dielectric loading enhances light transmission for trapping.
  • Understanding protein folding and viral infection mechanisms is crucial in biochemistry.

Purpose of Study

  • To develop a setup for trapping nanoparticles using low laser intensities.
  • To monitor trapping events and protein interactions.
  • To improve integration of double nanohole traps into existing systems.

Methods Used

  • Integration of a detector into an optical laser trapping setup.
  • Dispensing nanoparticle solutions into a microfluidic chamber.
  • Using a Thor Lab's optical tweezer kit for trapping.
  • Fabrication of double nanohole apertures using focused ion beam milling.

Main Results

  • Successful trapping of nanoparticles demonstrated.
  • Changes in laser intensity correlated with trapping events.
  • Red shifting of transmission curves observed with trapped particles.
  • Technique shows potential for studying protein folding.

Conclusions

  • The method allows for trapping smaller nanoparticles effectively.
  • It provides a new approach to study biophysical interactions.
  • Integration challenges remain for existing optical trapping systems.

Frequently Asked Questions

What is the main advantage of this optical trapping method?
This method can trap smaller nanoparticles with lower laser intensities compared to traditional techniques.
How does the trapping mechanism work?
When a particle enters the illuminated aperture, increased light transmission creates a force that pulls the particle back into the trap.
What are the safety precautions during setup?
Eye protection should be worn, and the laser beam should be contained within a safe area.
What materials are used to create the double nanohole?
The double nanohole is milled into a gold film that is 100 nanometers thick.
What is the purpose of the avalanche photo diode?
It replaces the quadrant detector in the force measurement module for improved detection.
How are nanoparticles introduced into the chamber?
Nanoparticles are added to the PDMS window in the microfluidic chamber.

Poniższe podejście do konfiguracji szczegółowo opisuje optyczne uwięzienie nanocząstek dielektrycznych o niskiej mocy za pomocą podwójnej nanodziury w metalowej folii.

Ogólnym celem tej procedury jest stworzenie aperturowego zestawu pułapki optycznej do uwięzienia cząstek o wielkości około 20 nanometrów. W tym celu do istniejącej konfiguracji optycznego pułapkowania laserowego dodawany jest detektor, który umożliwia pomiar. Następnie roztwór nanocząstek, który ma być mierzony, jest dozowany do komory mikroprzepływowej z podwójną pułapką nanootworów, a komora jest ładowana do zestawu pułapki optycznej.

Kiedy cząstka dostaje się do oświetlonego otworu, przepuszczalność światła dramatycznie wzrasta z powodu obciążenia dielektrycznego. Jeśli cząstka próbuje opuścić otwór, zmniejszona transmisja powoduje zmianę pędu na zewnątrz od otworu, a zgodnie z trzecim prawem Newtona powoduje powstanie siły ciągnącej cząstkę z powrotem do otworu, zatrzymując cząstkę. Cząstka powoduje przesunięcie krzywej przekładni na czerwono, co można monitorować.

W ten sposób pułapka może stać się czujnikiem. Ostatecznie można uzyskać wyniki, które pokazują zdarzenia pułapkowania nanocząstek, w tym rozwijanie uwięzionych białek, na co wskazują zmiany intensywności lasera przez podwójną nanodziurę. Główną zaletą tej techniki w porównaniu z istniejącymi metodami, takimi jak pułapkowanie optyczne z użyciem siły gradientu, jest to, że może ona wychwytywać mniejsze nanocząstki o mniejszej intensywności lasera.

Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w biochemii, takie jak to, w jaki sposób pojedyncze białka fałdują się i oddziałują oraz w jaki sposób cząsteczki wirusa infekują żywe komórki? Ogólnie rzecz biorąc, osoby korzystające z tej metody będą miały trudności, ponieważ trudno jest zintegrować podwójną dziurę nana z istniejącym systemem pułapki laserowej. Konfiguracja pułapki optycznej oparta jest na zestawie pęsety optycznej Thor Lab, wyposażonym w moduł pomiaru siły.

Fotodioda lawinowa służy do zastąpienia detektora kwadrantowego w module pomiaru siły. Podczas ustawiania optycznego systemu pułapkowania należy nosić okulary ochronne, gdy laser jest włączony. Upewnij się, że wiązka będzie przechowywana w bezpiecznym obszarze, działając w zamkniętym pomieszczeniu i ograniczając wiązkę w jak największym stopniu w konfiguracji pułapki, należy unikać biżuterii odblaskowej.

Noszone są rękawiczki lateksowe. Aby zapewnić czystość optyki, zainstaluj zestaw pęsety optycznej i moduł pomiaru siły. Zgodnie z instrukcjami producenta, zmontowany zestaw pęsety optycznej ma konstrukcję mikroskopu z odwróconym światłem i składa się z następujących elementów: lasera pułapkowego, obiektywu zanurzeniowego 100 x w oleju, trzyosiowego stolika do pozycjonowania próbki i kamery CCD.

Należy pamiętać, że ochrona przed wyładowaniami elektrostatycznymi jest zalecana podczas pracy z diodami laserowymi. Moduł pomiaru siły pozwala na kalibrację pęsety optycznej za pomocą detekcji położenia tylnej płaszczyzny ogniskowej kondensatora. Zamiast modułów pomiaru siły stosuje się zdjęcie lawinowe na bazie silikonu DDE lub PD.

Detektor położenia kwadrantu wkłada również kondensator rezystorowy lub filtr RC za pomocą rezystora 200 kilo oh i kondensatora 100 pikofaradów. Służy to do redukcji szumów o wysokiej częstotliwości i ułatwienia dostrzegania zdarzeń pułapkowania na oscyloskopie. Użyj koncentrycznego, aby podłączyć filtr RC za A PD. Następnie za pomocą koncentrycznych i adaptera T podłącz oscyloskop i moduł akwizycji danych do filtra RC.

System jest teraz gotowy do załadunku próbki. Apertura z podwójnym nanootworem składa się z dwóch nano otworów wyfrezowanych w złotą folię przez skupioną wiązkę jonów. Folia ma grubość 100 nanometrów i jest wsparta na szklanym podłożu.

Nanootwory zachodzą na siebie, tworząc dwa ostre guzki. Nanocząstki zostaną uwięzione w szczelinie między tymi guzkami przez światło lasera. To jest incydent na podwójnym nanootworze.

Duże elementy pasujące powinny być również wyfrezowane w folii metalowej, aby pomóc w identyfikacji położenia podwójnego nanootworu w mikroskopie optycznym. Ustawienie tych funkcji powinno znajdować się w odległości około 100 mikronów od podwójnego nanootworu. Wlej 10 gramów polidimetylosuboksanu lub bazy PDMS i jeden gram utwardzacza do jednorazowego kubka Mieszaj przez kilka minut.

Następnie opróżnij mieszaninę w komorze próżniowej, aż wszystkie pęcherzyki znikną. Następnie wlej 1,5 grama PDMS do szalki Petriego o średnicy dziewięciu centymetrów. Wiruj PDMS na dnie szalki Petriego z prędkością 950 obr./min przez 65 sekund po wirowaniu.

Grubość nie jest krytyczna, o ile jest poniżej 80 mikronów. Delikatnie umieść od trzech do pięciu. Nakrywka numer 1.5 nasuwa się na PDMS w taki sposób, że nie zachodzą na siebie i ewakuują się przez 30 minut.

Jeśli podczas ewakuacji szkiełka nakrywkowe przesunęły się i są ułożone jedna na drugiej, delikatnie odsuń je od siebie. Upewnij się, że PDMS pod szkiełkami nakrywkowymi jest cienki i jednolity. Następnie ponownie ewakuuj szalkę Petriego na 30 minut.

Wyjmij szalkę Petriego z komory próżniowej i podgrzewaj ją na płycie grzejnej przez 20 minut w temperaturze 85 stopni Celsjusza, aby utwardzić PDMS. Po zestaleniu się PDMS użyj żyletki, aby przeciąć wzdłuż krawędzi jednego z szkiełek nakrywkowych. Następnie za pomocą pęsety z cienką końcówką lub ostrza delikatnie podważ szkiełko, cienka warstwa PDMS przylgnie do szkiełka nakrywkowego.

Umieść szkło nakrywkowe z PDMS na nowej szalce Petriego. Następnie za pomocą żyletki wytnij okienko o wymiarach trzy milimetry na trzy milimetry w PDMS. To okno utworzy komorę, w której będzie przechowywany roztwór nanocząstek.

Użyj wycinarki laserowej, aby wyprodukować akrylowy uchwyt na szkiełko mikroskopowe z otworem o średnicy trzech czwartych cala pośrodku. Zaklej obwód otworu taśmą dwustronną. Użyj żyletki, aby odciąć nadmiar taśmy.

Umieść wyprodukowane szkiełko mikroskopowe na jednym z przygotowanych szkiełek nakrywkowych pokrytych PDMS, tak aby PDMS był umieszczony między szkłem a akrylem. Za pomocą mikropipety dodaj kilka kropli o masie 0,05% na objętość. Roztwór nanosfery polistyrenowej do okna PDMS.

Dodaj kroplę na złotą folię, w której znajdują się nanootwory. Umieść próbkę złota na szkiełkach nakrywkowych z nanootworami wewnątrz okienka PDMS. Upewnij się, że w komorze nie ma pęcherzyków.

Następnie dociśnij próbkę złota do okładki. Wsuń i wklep nadmiar roztworu, ponieważ zostanie użyty obiektyw zanurzeniowy w olejku. Dodaj kroplę oleju po drugiej stronie szkiełka nakrywkowego na górze okienka PDMS.

Zwróć uwagę na lokalizację nanootworów. Włóż mikroskop. Wsuń olej do uchwytu szkiełka skierowany w dół, a następnie opuść uchwyt szkiełka, aż olejek immersyjny zetknie się z mikroskopem.

Obiektyw, z grubsza wyrównaj stolik suwaka tak, aby znaki rejestracyjne wyfrezowane w złotej folii znajdowały się pod obiektywem. Korzystanie z oprogramowania do akwizycji obrazu, takiego jak strona Thor, która jest dołączona jako część zestawu do zalewkowania. Znajdź znaki rejestracyjne na złotej folii i podążaj za liniami wskaźnika aż do otworów nana.

Ustaw slajd w taki sposób, aby znaczniki wskaźników i inne otwarte obszary były usunięte ze środka ekranu. Nadmierna przepuszczalność światła może uszkodzić włączenie lasera A PD. Ponieważ zwierciadło dichroiczne nie jest idealne, powinno pojawić się miejsce w pobliżu środka ekranu od wiązki laserowej.

Korzystanie z oprogramowania do sterowania sceną pizo. Dokładniej doprecyzuj wyrównanie we wszystkich trzech osiach. Gdy wyrównanie jest prawidłowe, zaobserwuje się maksymalne napięcie wyładowań niezupełnych, wskazujące na najwyższą transmisję przez nanoaperturę.

Teraz, gdy system jest skonfigurowany, a próbka załadowana, można uzyskać dane dotyczące pułapkowania optycznego. Za pomocą znaków wskaźnikowych umieść miejsce w pobliżu znanego miejsca nanodziury. Podwójne nanootwory będą zbyt małe, aby można je było wyraźnie rozwiązać i pojawią się jako małe kropki na ekranie.

Transmisja światła przez próbkę jest wskazywana przez poziom sygnału na oscyloskopie. Dalej wyrównaj próbkę, aby zmaksymalizować przepuszczalność światła. Uważaj na znaki wskaźnikowe oraz widoczne i niewidoczne zadrapania, ponieważ przepuszczalność światła będzie wysoka w tych obszarach, nanootwory będą wykazywać nagłe skoki przepuszczalności światła podczas zadrapań.

Wykazuj bardziej stopniowe zmiany za pomocą płyty falowej. Dostosuj polaryzację światła, aby uzyskać najwyższą transmisję światła, ponieważ struktura z podwójnym nanootworem jest spolaryzowana. Aby uzyskać dane, należy pobrać próbkę napięcia APD za pomocą modułu akwizycji danych przez żądany czas.

Czas akwizycji jest zwykle liczony w setkach sekund. W tym przypadku do akwizycji danych używane jest niestandardowe oprogramowanie, a napięcie jest próbkowane z prędkością 2000 razy na sekundę. Za pomocą MATLAB przefiltruj uzyskane dane za pomocą filtra KY Gole i wykreśl je w stosunku do tymianku na wykresie, aby pokazać uwięzienie 20 nanometrów nanocząstek polistyrenu, transmisję przez podwójny nanootwór zmierzono w funkcji czasu.

Za pomocą transmisji optycznej wyładowano następnie pozycję wykreśloną. Z biegiem czasu zdarzenie pułapkowania jest charakterystycznie nagłe, z ostrą krawędzią pokazującą wyraźne przełączanie między dwoma poziomami mocy transmisji, jak pokazano w tym przykładzie, często występuje wzrost szumu sygnału w stanie uwięzionym. Ten wzrost hałasu wynika z ruchu Browna uwięzionej cząstki.

Zauważ, że bez uwięzionej cząstki to źródło hałasu nie jest obecne. W wynikach mogą pojawić się pewne artefakty, które nie wskazują na zdarzenia zalewkowania. Wyniki pokazujące dryf postrzegany jako powolne zmiany w transmisji w ciągu kilku minut, jak pokazano tutaj, należy odrzucić Po tej procedurze można wykonać inne metody, takie jak ramen i spektroskopia fluorescencyjna, aby odpowiedzieć na dodatkowe pytania dotyczące natury nanocząstki, która jest uwięziona po jej rozwinięciu.

Technika ta utorowała naukowcom drogę do badania biologicznie istotnych nanocząstek na poziomie pojedynczej cząsteczki. Na przykład, aby wyczuć wiązanie z białkami i zbadać infekcję wirusową zarówno na poziomie pojedynczej cząsteczki. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak zintegrować podwójną pułapkę optyczną nho z systemem laserowym T mikroskopu inwerterowego, aby wyłapywać pojedyncze nanocząstki.

Explore More Videos

Pułapkowanie optyczne nanocząstki unieruchamianie manipulowanie łagodny sposób światło pęseta optyczna skupiona wiązka formułowanie siły gradientu perturbacyjnego cząstki reżimu Rayleigha moc optyczna cząstki dielektryczne ogrzewanie samoindukowane pułapkowanie optyczne o działaniu zwrotnym (SIBA) kulki polistyrenu reżim nieperturbacyjny kontrast przenikalności pole elektromagnetyczne siła optyczna

Related Videos

Wykorzystanie plazmonicznych i fotonicznych nanostruktur krystalicznych do lepszej manipulacji mikro- i nanocząstkami

09:29

Wykorzystanie plazmonicznych i fotonicznych nanostruktur krystalicznych do lepszej manipulacji mikro- i nanocząstkami

Related Videos

12.7K Views

Budowa mikroskopu o wysokiej rozdzielczości z konwencjonalnymi i holograficznymi możliwościami optycznego pułapkowania

09:12

Budowa mikroskopu o wysokiej rozdzielczości z konwencjonalnymi i holograficznymi możliwościami optycznego pułapkowania

Related Videos

12.6K Views

Analiza ruchu naupliusa 'Artemia salina' za pomocą optycznego śledzenia nanocząstek plazmonicznych

05:52

Analiza ruchu naupliusa 'Artemia salina' za pomocą optycznego śledzenia nanocząstek plazmonicznych

Related Videos

11K Views

Produkcja i eksploatacja nanooptycznego przenośnika taśmowego

11:10

Produkcja i eksploatacja nanooptycznego przenośnika taśmowego

Related Videos

12.1K Views

Pułapka optyczna obciążenia mikrocząstek dielektrycznych w powietrzu

08:57

Pułapka optyczna obciążenia mikrocząstek dielektrycznych w powietrzu

Related Videos

9.6K Views

Pułapkowanie plazmoniczne i uwalnianie nanocząstek w środowisku monitorowania

09:13

Pułapkowanie plazmoniczne i uwalnianie nanocząstek w środowisku monitorowania

Related Videos

8K Views

Uwięzienie mikrocząstek w nanoplazmonicznej sieci optycznej

07:20

Uwięzienie mikrocząstek w nanoplazmonicznej sieci optycznej

Related Videos

7K Views

Budowa i działanie napędzanego światłem układu silnika obrotowego Gold Nanorod

09:48

Budowa i działanie napędzanego światłem układu silnika obrotowego Gold Nanorod

Related Videos

9.4K Views

Optyczne pułapkowanie nanocząstek plazmonicznych do charakterystyki spektroskopii Ramana wzmocnionej powierzchniowo in situ

06:19

Optyczne pułapkowanie nanocząstek plazmonicznych do charakterystyki spektroskopii Ramana wzmocnionej powierzchniowo in situ

Related Videos

3K Views

Zastosowanie podwójnej pęsety optycznej i mikrofluidyki do badań pojedynczych cząsteczek

06:53

Zastosowanie podwójnej pęsety optycznej i mikrofluidyki do badań pojedynczych cząsteczek

Related Videos

2.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code