Name: Wydajna immunoprecypitacja chromatyny przy użyciu ograniczonych ilości biomasy (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-05-01T13:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 29 s
Description: Poznaj efektywną metodę immunoprecypitacji chromatyny dla komórek T przy użyciu ograniczonych ilości biomasy. Technika ta umożliwia badanie interakcji białko-DNA oraz modyfikacji histonowych w immunologii.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ta praca była wspierana przez granty NIH CA141009 i GM39067. Dziękujemy E. Parnellowi i R. Yarringtonowi za komentarze do części pisemnej.

1. Izolacja naiwnych limfocytów T CD4 myszy ze śledzioną
<ol>
 <li>Złóż mysz w ofierze w humanitarny sposób, zgodnie z protokołami Instytucjonalnego Komitetu ds. Opieki nad Zwierzętami i Wykorzystania (IACUC). Wyciąć śledzionę i umieścić ją na szalce Petriego zawierającej 10 ml DMEM z 10% FBS.</li>
 <li>Zmiażdż śledzionę za pomocą matowych końców dwóch szklanych szkiełek, aby uwolnić splenocyty. Przenieść zawiesinę komórek do stożkowej probówki o pojemności 15 ml.</li>
 <li>Zebrać komórki przez odwirowanie przy 200 x g (~1 200 obr./min dla wirówki klinicznej o typowej średnicy wirnika) przez 5 minut w temperaturze 4 °C.</li>
 <li>Ponownie zawieś komórki w 2 ml buforu ACK w celu lizy czerwonych krwinek, 1 minutę w temperaturze pokojowej (RT). Zatrzymaj reakcję, dodając 8 ml DMEM z FBS.</li>
 <li>Zebrać komórki przez odwirowanie w temperaturze 200 x g przez 5 minut w temperaturze 4 °C.</li>
 <li>Ponownie zawiesić komórki w 5 ml DMEM zawierającym FBS i przepuścić przez filtr siatkowy 70 μm (BD Falcon, Cat# 352350). Policz komórki i przystąp do izolacji naiwnych limfocytów T CD4 za pomocą zestawu do izolacji CD4 (Miltenyi, Cat# 130-095-248) zgodnie z instrukcjami producenta. Zebrać naiwne limfocyty T CD4 przez odwirowanie w stężeniu 200 x g przez 5 minut w temperaturze 4 °C. Zawiesić komórki w 10 ml DMEM za pomocą FBS.</li>
</ol>
2. Przygotowanie chromatyny
<ol>
 <li>Dodaj 37% formaldehydu do końcowego stężenia 1% do zawiesiny komórkowej w DMEM i delikatnie kołysz w RT (np. za pomocą nutatora) przez 15 minut, aby usieciować kompleksy DNA: białko.</li>
 <li>Zatrzymaj sieciowanie, dodając 1 M glicyny do końcowego stężenia 125 mM. Kontynuuj kołysanie przez 5 minut przy RT.</li>
 <li>Zebrać komórki przez odwirowanie w temperaturze 200 x g przez 5 minut w temperaturze 4 °C.</li>
 <li>Przemyć komórki przez ponowne zawieszenie w 5 ml lodowatego PBS zawierającego inhibitory proteazy. Przemyć w lodowatym PBS zawierającym inhibitory proteazy w sumie 3 razy i zebrać komórki przez odwirowanie w temperaturze 4 °C.</li>
 <li>Ponownie zawiesić komórki w 1 ml lodowatego buforu do lizy komórek zawierającego inhibitory proteazy. Inkubować na lodzie przez 15 minut. Skuteczność lizy komórek można określić poprzez ponowne zawieszenie małej porcji komórek w 0,4% roztworze błękitu trypanowego (Sigma, Cat# T8154) i obserwację pod mikroskopem.</li>
 <li>Zebrać jądra przez odwirowanie przy 200 x g (zwykle ~1 200 obr./min) przez 5 minut w temperaturze 4 °C. Ostrożnie wyrzucić supernatant.</li>
 <li>Zawiesić jądra w 500 μl buforu do lizy jądrowej zawierającego inhibitory proteazy. Inkubować na lodzie przez 15 minut.</li>
 <li>Sonikuj komórki za pomocą Misonix Sonicator 3,000, rozmiar sondy 1,6 mm: Poziom wyjściowy 4, 15 sekund burst, 4 razy na lodzie. Każda próbka musi być schładzana na lodzie przez 1-2 minuty przed ponownym sonikacją, aby zapobiec przegrzaniu próbek. Przegrzanie może spowodować odwrócenie ogniw poprzecznych.</li>
 <li>Odwirować sonikowaną chromatynę przy 16 000 x g (~13 200 obr./min w mikrowirówce) przez 5 minut w temperaturze 4 °C.</li>
 <li>Weź 20 μl podwielokrotności klarownego supernatantu, dodaj barwnik ładujący DNA i sprawdź sonikowane DNA za pomocą elektroforezy przez 2% żel agarozowy (idealny rozmiar sonikowanego DNA dla większości zastosowań to 200-500 pz).</li>
 <li>Określ stężenie DNA za pomocą spektrofotometru UV. Chromatyna ścięta może być natychmiast użyta w celu wywołania reakcji immunoprecypitacji chromatyny lub przechowywana w temperaturze -80 °C. Zazwyczaj uzyskujemy 7,5-10 μg DNA z 2-3 X 106 oczyszczonych limfocytów T CD4 na mysz.</li>
</ol>
3. Immunoprecypitacja chromatyny (wszystkie etapy muszą być przeprowadzone w temperaturze 0-4 °C)
<ol>
 <li>Rozcieńczyć sonikowaną chromatynę do stężenia DNA 5-10 μg/ml (objętość całkowita = 1 ml) w buforze rozcieńczającym ChIP z inhibitorami proteazy.</li>
 <li>Zaoszczędź 100 μl (10%) jako dane wejściowe. Przechowywać na lodzie.</li>
 <li>Podamy po 450 μl do dwóch probówek do mikrofug o pojemności 1,7 ml oznaczonych jako kontrola izotypu (mysia lub królicza IgG) i przeciwciało będące przedmiotem zainteresowania. Jeżeli stosuje się wiele przeciwciał o tym samym izotypie, do przeprowadzenia tej analizy wystarczy jedna kontrolna izotyp. Będziesz potrzebował wielu kontroli izotypów, jeśli używane są przeciwciała o innym pochodzeniu zwierzęcym lub izotypie.</li>
 <li>Dodać 2-5 μg specyficznego przeciwciała, w zależności od swoistości użytego przeciwciała, lub kontroli izotypu do odpowiednich probówek.</li>
 <li>Kołysz probówkami za pomocą nutatora przez noc w temperaturze 4 °C, aby umożliwić tworzenie kompleksów chromatyna-przeciwciało.</li>
 <li>Do powyższej mieszaniny dodać 25 μl kulek magnetycznych z białkiem G (zawiesina zawieszonych kulek w stosunku 1:1) i pozostawić na co najmniej 2 godziny w temperaturze 4 °C. Koraliki od naszego dostawcy mogą być używane bezpośrednio.</li>
 <li>Umieść rurki do mikrofuge na stojaku magnetycznym i pozwól, aby koraliki zebrały się po namagnesowanej stronie.</li>
 <li>Ostrożnie usuń roztwór przez aspirację, nie naruszając kulek.</li>
 <li>Dodaj 1 ml roztworu do płukania o niskiej zawartości soli i pozwól delikatnie kołysać się przez 5 minut na nutatorze. Zbierz koraliki za pomocą stojaka magnetycznego i usuń roztwór myjący. Powtórz raz.</li>
 <li>Dodaj 1 ml roztworu do płukania o wysokiej zawartości soli i pozostaw na 5 minut na nutatorze. Zbierz koraliki za pomocą stojaka magnetycznego i usuń roztwór myjący. Powtórz raz.</li>
 <li>Dodaj 1 ml roztworu do płukania chlorku litu i pozostaw na 5 minut do kołysania na nutatorze. Zbierz koraliki za pomocą stojaka magnetycznego i usuń roztwór myjący. Powtórz raz. Zastosowanie LiCl poprawia skuteczne usuwanie niespecyficznych oddziaływań chromatyny z kulkami.</li>
 <li>Dodaj 1 ml roztworu TE i pozostaw na 5 minut do kołysania na nutatorze. Zbierz koraliki za pomocą stojaka magnetycznego i usuń roztwór myjący.</li>
 <li>Eluować DNA z kulek, dodając 250 μl buforu elucyjnego. Kołysz się przez 15 minut w temperaturze pokojowej. Odpipetować eluat i zachować ten materiał w nowej probówce do mikrofugu o pojemności 1,7 ml. Powtórz jeszcze raz i połącz obie elucjacje. Wyrzuć koraliki.</li>
 <li>Aby odwrócić wiązania krzyżowe, dodaj 5 M NaCl do końcowego stężenia 0,3 M i 1 μl RNazy A (20 mg / ml) do eluowanego DNA. Dodać 400 μl buforu elucyjnego do wejść zapisanych w kroku 3.2, aby uzyskać objętość 500 μl. Do danych wejściowych dodać NaCl do 0,3 M, 1 μl RNazy A, 10 μl 0,5 M EDTA, 20 μl 1 M Tris-HCl pH 6,5 i 1 μl proteinazy K (20 mg/ml).</li>
 <li>Inkubować probówki przez noc w temperaturze 65 °C w suchym bloku grzewczym. Aby uniknąć parowania próbek, należy uszczelnić lub obciążyć probówki, aby zapobiec ich otwarciu. Można również użyć pieca do hybrydyzacji.</li>
 <li>Pozwól probówkom ostygnąć do temperatury suchej temperatury. Dodać 1 ml 100% etanolu i inkubować przez 2 godziny przez noc w temperaturze -80 °C, aby wytrącić DNA.</li>
 <li>Odwirować probówki o masie 16 000 x g przez 15 minut, aby uzyskać granulki DNA. Umyj osad DNA raz 70% etanolem i wysusz go na powietrzu. Zawiesić osad DNA w 100 μl autoklawizowanej wody destylowanej.</li>
 <li>Oczyść DNA za pomocą kolumn wirowych QiaQuick i eluuj w całkowitej objętości 50 μl buforu elucyjnego. To DNA jest gotowe do użycia do PCR.</li>
</ol>
4. Przygotowanie reakcji PCR (wszystkie kroki muszą być przeprowadzone na lodzie)
<ol>
 <li>Zbierz wszystkie próbki DNA z ChIP i odpowiadające im próbki wejściowe. Zbierz również wszystkie odczynniki i startery PCR dla regionu docelowego, a także regionu kontrolnego. Użyj polimerazy DNA Taq "gorącego startu". W tej procedurze użyjemy testu opartego na SYBR Green do ilościowego określenia amplifikacji DNA, ale w razie potrzeby można użyć zestawów qPCR mastermix.</li>
 <li>Wykonaj szeregowe rozcieńczenie wejściowego DNA, aby wygenerować krzywą wzorcową w analizie qPCR: na przykład 10%, 1%, 0,1% i 0,01% w buforze elucyjnym (z kolumn wirowych QiaQuick w kroku 3.18). Zakres stężeń i przyrost tego standardowego zestawu szablonów krzywych może się różnić w zależności od oczekiwanych poziomów wzbogacenia ChIP itp. Dozować 10 μl wejściowych próbek DNA do odpowiednich dołków na 96-dołkowej płytce (Genemate, cat# T-3182-1), w dwóch egzemplarzach.</li>
 <li>Dozować 10 ml DNA ChIP z kontroli izotypu, jak również specyficzne przeciwciało do odpowiednich studzienek, w trzech egzemplarzach.</li>
 <li>Sporządzić "mieszankę wzorcową" zawierającą startery docelowe lub startery kontrolne (końcowe stężenie 0,1 μM każdego startera) i rozlać 10 μl do odpowiednich studzienek. Na przykład w poniższym szablonie należy dozować startery ukierunkowane zawierające mieszankę wzorcową do studzienek oznaczonych kolorem zielonym i dozować mieszankę wzorcową ze starterami kontrolnymi do studzienek oznaczonych kolorem czerwonym.</li>
 <li>Przykryj płytkę PCR optyczną folią uszczelniającą z tworzywa sztucznego i odwiruj przy 500 x g w wirówce klinicznej (~1,200 obr./min) przez 1 minutę w temperaturze pokojowej, aby zebrać wszystko na dnie studzienki.</li>
 <li>Rozpocznij reakcję PCR. W tym przykładzie użyjemy LightCycler 480 II (Roche) z oprogramowaniem LightCycler 480SW 1.5 do uruchomienia qPCR.</li>
</ol>
Wstępna inkubacja: 1 cykl: 95 °C/5 min.
Amplifikacja: 40-45 cykli: 94 °C/5 sek., 60 °C/5 sek., 72 °C/10 sek (temperatura wyżarzania powinna być o 2-3 °C niższa niż temperatura topnienia podkładów).
Krzywa topnienia: 1 cykl.
Chłodzenie: 1 cykl.
<obramowanie tabeli="1">
 <tbody>
 <tr>
 <td></td>
 <td>1</td>
 <td>cyfra arabska</td>
 <td>3</td>
 <td>4</td>
 <td>5</td>
 <td>6</td>
 <td>7</td>
 <td>8</td>
 <td>9</td>
 <td>10</td>
 <td>11</td>
 <td>12</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>ZA</td>
 <td>10% Wejście</td>
 <td>10% Wejście</td>
 <td>Izotypu</td>
 <td>specyficzny</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>W</td>
 <td>1% Wejście</td>
 <td>1% Wejście</td>
 <td>Izotypu</td>
 <td>specyficzny</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Z</td>
 <td>Wejście 0,1%</td>
 <td>Wejście 0,1%</td>
 <td>Izotypu</td>
 <td>specyficzny</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>D</td>
 <td>Wejście 0,01%</td>
 <td>Wejście 0,01%</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>E</td>
 <td>10% Wejście</td>
 <td>10% Wejście</td>
 <td>Izotypu</td>
 <td>specyficzny</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Z</td>
 <td>1% Wejście</td>
 <td>1% Wejście</td>
 <td>Izotypu</td>
 <td>specyficzny</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Z</td>
 <td>Wejście 0,1%</td>
 <td>Wejście 0,1%</td>
 <td>Izotypu</td>
 <td>specyficzny</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>H</td>
 <td>Wejście 0,01%</td>
 <td>Wejście 0,01%</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 </tbody>
</table>
Zielony: Użyj starterów dla wybranych regionów.
Czerwony: Użyj starterów regionu kontrolnego.
5. Analiza
<ol>
 <li>Zaprogramować oprogramowanie qPCR do ilościowego oznaczania bezwzględnej ilości DNA. Co ważne, zastosowanie krzywej standardowej do interpolacji ilości DNA w nieznanych próbkach specyficznych i izotypowych pozwala na ocenę i dopasowanie jakości i wydajności wszystkich zestawów starterów w zakresie stężeń występujących w próbkach. Co więcej, zapewnia również bardziej wiarygodną metodę konwersji wartości Cq (C, t lub C, p) na końcowe względne wyniki wzbogacania fałdowania niż przy użyciu ΔΔCq i powiązanych metod.</li>
 <li>Przejdź do edytora próbek i oznacz studzienki zawierające próbki wejściowe o różnych rozcieńczeniach (10%, 1%, 0,1% i 0,01%) ich standardowymi wartościami krzywej. Oznacz również studzienki nieznanymi próbkami ChIP, dokładnie tak, jak ułożona jest płytka PCR. W równoważnym oprogramowaniu stosowanym w innych maszynach qPCR należy odpowiednio oznaczyć podzbiory odpowiadające reakcjom dla każdej pary starterów, wartości krzywej wzorcowej oraz próbki eksperymentalnej i kontrolnej izotypu.</li>
 <li>W oprogramowaniu LightCycler przejdź do edytora podzbiorów i zaznacz podzbiory, w tym studzienki z próbkami wejściowymi, a także nieznane próbki ChIP. Nieznane próbki zostaną określone ilościowo przy użyciu krzywej wzorcowej uzyskanej ze znanych stężeń próbek wejściowych do analizy. W równoważnym oprogramowaniu stosowanym w innych maszynach qPCR należy wyznaczyć podzbiory odpowiadające wszystkim reakcjom dla każdej pary starterów.</li>
 <li>Po zakończeniu amplifikacji PCR przeprowadź analizę za pomocą "Abs Quant/2nd Derivative Max" i wybierz podzbiór do analizy i naciśnij OK. W równoważnym oprogramowaniu używanym w innych maszynach qPCR przelicz wartość Cq na ilość DNA w każdym podzbiorze.</li>
 <li>Naciśnij "Oblicz", co spowoduje wygenerowanie krzywej wzorcowej przy użyciu znanych stężeń próbek wejściowych i wyświetli bezwzględną ilość DNA obecnego w nieznanych próbkach.</li>
 <li>Jeśli jakość ściętego DNA jest dobra i jeśli startery wiążą się specyficznie z docelowym regionem, wydajność PCR powinna być bliska 2.</li>
 <li>Wykonaj analizę krzywej topnienia za pomocą opcji "Tm Calling" dla tego samego podzbioru, jeśli jest dostępna. Pojedynczy pik oznacza, że tylko jeden konkretny produkt został wzmocniony. Amplifikację specyficznego DNA można również przetestować poprzez elektroforezę produktu PCR wraz z drabinką DNA przez żel agarozowy.</li>
 <li>Eksportuj dane jako plik tekstowy rozdzielany tabulatorami, który można otworzyć w programie Microsoft Excel w celu dalszej analizy.</li>
 <li>Korzystając z programu Microsoft Excel, podziel ilość DNA dla specyficznego przeciwciała z kontrolą izotypu dla docelowych starterów. Powtórz ten krok dla starterów regionu kontrolnego. Jeśli do różnych immunoprecypitacji stosuje się wiele przeciwciał tego samego izotypu, należy znormalizować każde z nich wartościami z tej samej kontrolnej izotypu. Ponadto, jeśli stosuje się wiele docelowych par starterów, do normalizacji każdego celu należy użyć ilości DNA z pojedynczego zestawu par starterów kontrolnych (ryc. 1 i 2). Wartości wyjściowe reprezentują swoiste wzbogacenie immunoprecypitacji przeciwciał w każdym miejscu w stosunku do immunoprecypitacji tła przeciwciał nieswoistych.</li>
 <li>Podziel wzbogacenie fałdowania (do kontroli izotypu) dla starterów docelowych ze wzbogaceniem fałdowania (do kontroli izotypu) dla starterów regionu kontrolnego, aby uzyskać wzbogacenie względem kontrolnego regionu niezwiązanego (rysunek 1). Co ważne, należy zauważyć, że ze względu na generowanie krzywych wzorcowych z całkowitym wejściowym DNA dla każdej próbki, każda z powyższych wartości immunoprecypitacji interpolowana z krzywych standardowych jest już znormalizowana i wyrażona jako ułamek całkowitego wkładu przez oprogramowanie maszyny.</li>
 <li>Jeżeli rygorystyczność stosowanych do immunoprecypitacji lub przemywania jest zbyt wysoka, możliwe jest, że zaobserwuje się solidną amplifikację z próbek immunoprecypitowanych specyficznymi przeciwciałami, podczas gdy amplifikacja z próbek immunoprecypitowanych kontrolnych izotypu nie będzie obserwowana. W takim scenariuszu lepiej jest odjąć ilość kontrolnego ChIP Isotype od specyficznego przeciwciała ChIP zarówno dla regionu docelowego, jak i regionu niezwiązanego. Względne wzbogacenie można obliczyć, dzieląc różnicę dla regionu docelowego przez różnicę dla regionu niezwiązanego (rysunek 3).</li>
</ol>

<ol><li>Weinmann, A. S., Bartley, S. M., Zhang, T., Zhang, M. Q., Farnham, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+chromatin+immunoprecipitation+to+clone+novel+E2F+target+promoters%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+Cellular+Biology%22%5BJournal%5D)">Use of chromatin immunoprecipitation to clone novel E2F target promoters.</a> Molecular and Cellular Biology. 21, 6820-6832 (2001).</li>
<li>Weinmann, A. S., Farnham, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+unknown+target+genes+of+human+transcription+factors+using+chromatin+immunoprecipitation%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Identification of unknown target genes of human transcription factors using chromatin immunoprecipitation.</a> Methods. 26, 37-47 (2002).</li>
<li>Li, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Constitutive+nuclear+localization+of+NFAT+in+Foxp3%2B+regulatory+T+cells+independent+of+calcineurin+activity%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Constitutive nuclear localization of NFAT in Foxp3+ regulatory T cells independent of calcineurin activity.</a> J. Immunol. 188, 4268-4277 (2012).</li>
<li>Shakya, A., Kang, J., Chumley, J., Williams, M. A., Tantin, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oct1+is+a+switchable%2C+bipotential+stabilizer+of+repressed+and+inducible+transcriptional+states%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Oct1 is a switchable, bipotential stabilizer of repressed and inducible transcriptional states.</a> The Journal of Biological Chemistry. 286, 450-459 (2011).</li>
<li>Dahl, J. A., Collas, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rapid+micro+chromatin+immunoprecipitation+assay+%28microChIP%29%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">A rapid micro chromatin immunoprecipitation assay (microChIP).</a> Nature Protocols. 3, 1032-1045 (2008).</li>
<li>Lubelsky, Y., Macalpine, H. K., Macalpine, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+localization+of+replication+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Genome-wide localization of replication factors.</a> Methods. 57, 187-195 (2012).</li>
<li>O'Neill, L. P., VerMilyea, M. D., Turner, B. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenetic+characterization+of+the+early+embryo+with+a+chromatin+immunoprecipitation+protocol+applicable+to+small+cell+populations%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Genetics%22%5BJournal%5D)">Epigenetic characterization of the early embryo with a chromatin immunoprecipitation protocol applicable to small cell populations.</a> Nature Genetics. 38, 835-841 (2006).</li>
<li>Sikes, M. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+streamlined+method+for+rapid+and+sensitive+chromatin+immunoprecipitation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunological+Methods%22%5BJournal%5D)">A streamlined method for rapid and sensitive chromatin immunoprecipitation.</a> Journal of Immunological Methods. 344, 58-63 (2009).</li>
<li>Rhee, H. S., Pugh, B. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comprehensive+genome-wide+protein-DNA+interactions+detected+at+single-nucleotide+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Comprehensive genome-wide protein-DNA interactions detected at single-nucleotide resolution.</a> Cell. 147, 1408-1419 (2011).</li>
<li>Rhee, H. S., Pugh, B. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+structure+and+organization+of+eukaryotic+pre-initiation+complexes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Genome-wide structure and organization of eukaryotic pre-initiation complexes.</a> Nature. 483, 295-301 (2012).</li>
<li>Kharchenko, P. V., Tolstorukov, M. Y., Park, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+and+analysis+of+ChIP-seq+experiments+for+DNA-binding+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Design and analysis of ChIP-seq experiments for DNA-binding proteins.</a> Nature Biotechnology. 26, 1351-1359 (2008).</li>
<li>Robertson, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+profiles+of+STAT1+DNA+association+using+chromatin+immunoprecipitation+and+massively+parallel+sequencing%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Genome-wide profiles of STAT1 DNA association using chromatin immunoprecipitation and massively parallel sequencing.</a> Nature Methods. 4, 651-657 (2007).</li>
</ol>

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Powyższy protokół zapewnia solidną metodę dokładnego ilościowego określania wzbogacenia DNA z pierwotnych limfocytów przy użyciu ChIP. Jednym z głównych powodów solidności tego protokołu jest uwzględnienie kontrprób biologicznych. Powyższy protokół wykorzystuje trzy powtórzenia, dla których wzbogacenie jest obliczane niezależnie. Wyniki są następnie uśredniane w celu zapewnienia stopnia wzbogacenia i odchyleń standardowych obliczanych w celu zapewnienia miary zmienności. Dla każdej próbki przeprowadza się również trzy ko...

<table><tbody><tr><td>Formaldehyd</td><td>Sigma</td><td>F-8775</td><td>Przechowywać w RT</td></tr><tr><td>Fosforan buforowany solą fizjologiczną</td><td>hyklon</td><td>SH30256.01</td><td>Przechowywać w 4 stopniach; C</td></tr><tr><td>Inhibitor proteazy w tabletkach</td><td>Roche</td><td>04693116001</td><td>Przechowywać w temperaturze 4 & stopni; Koraliki magnetyczne C</td></tr><tr><td>Białko G</td><td>Aktywny Motyw</td><td>101945</td><td>Przechowywać w 4 stopniach; C</td></tr><tr><td>RNaza A (20 mg / ml)</td><td>EMD Milipor</td><td>556746</td><td>Przechowywać w temperaturze -20 & deg; C</td></tr><tr><td>Proteinaza K (20 mg / ml)</td><td>Roche</td><td>03115879001</td><td>Rozpuścić w 50 mM Tris-HCl, 10 mM CaCl2, pH 8,0</td></tr><tr><td>Polimeraza DNA Platinum Taq</td><td>Invitrogen</td><td>10966-034</td><td>Przechowywać w temperaturze -20 &deg; C</td></tr><tr><td>SYBR Green I</td><td>Invitrogen</td><td>S7567</td><td>Przechowywać przy -20 &deg; C</td></tr><tr><td>1 M Glicyna</td><td></td><td></td><td>Przechowywać w RT</td></tr><tr><td>Bufor do lizy komórek (5 mM rury, pH 8,0; 85 mM KCl; 0,5% NP-40)</td><td></td><td></td><td>Przechowywać w temperaturze 4 &deg; C</td></tr><tr><td>Bufor do lizy jądrowej (50 mM Tris, pH 8,1; 10 mM EDTA; 1% SDS)</td><td></td><td></td><td>Przechowywać w</td></tr><tr><td>RT Bufor rozcieńczający ChIP (0,01% SDS; 1,1% Triton X-100; 1,2 mM EDTA; 16,7 mM Tris pH 8,1; 190 mM NaCl)</td><td></td><td></td><td>Przechowywać w temperaturze 4 &deg; C</td></tr><tr><td>Bufor do przemywania o niskiej zawartości soli (0,1% SDS; 1% Triton X-100; 2 mM EDTA; 20 mM Tris pH 8,1; 150 mM NaCl)</td><td></td><td></td><td>Przechowywać w temperaturze 4 & C</td></tr><tr><td>Bufor do płukania o wysokiej zawartości soli (0,1% SDS; 1% Triton X-100; 2 mM EDTA; 20 mM Tris pH 8,1; 600 mM NaCl)</td><td></td><td></td><td>Przechowywać w temperaturze 4 stopni; Bufor</td></tr><tr><td>do płukania C LiCl (0,25 M LiCl; 1% NP-40; 1% Deoksycholan sodu, 1 mM EDTA; 10 mM Tris pH 8,0)</td><td></td><td></td><td>Przechowywać w temperaturze 4 &deg; </td></tr><tr><td>Bufor C TE (10 mM Tris, pH 7,4, 1 mM EDTA)</td><td></td><td></td><td>Przechowywać w temperaturze 4 & Bufor</td></tr><tr><td>elucyjny C (1% SDS; 0,1 M NaHCO3)</td><td></td><td></td><td>Przygotuj świeży</td></tr><tr><td>5 M NaCl</td><td></td><td></td><td>Przechowywać w RT</td></tr><tr><td>0,5 M EDTA</td><td></td><td></td><td>Przechowywać w RT</td></tr><tr><td>1 M Tris-HCl, pH 6,5</td><td></td><td></td><td>Przechowywać w RT</td></tr><tr><td colspan="4">Tabela specyficznych odczynników</td></tr><tr><td>Clay Adams Brand Nutator</td><td>Becton Dickinson</td><td>Model: 421105</td><td></td></tr><tr><td>Stojak magnetyczny</td><td>Promega</td><td>Z5342</td><td></td></tr><tr><td>Zestaw do oczyszczania Qiaquick PCR</td><td>Qiagen</td><td>28106</td><td></td></tr><tr><td>Masonix Sonicator 3000</td><td>QSonica</td><td>Model: S3000</td><td></td></tr><tr><td>Spektrofotometr UV</td><td>NanoDrop Technologies</td><td>ND-1000</td><td></td></tr><tr><td>Blok grzewczy</td><td>VWR</td><td>13259-030</td><td></td></tr><tr><td>Rotator</td><td>VWR</td><td>80085-692</td><td></td></tr><tr><td>Wirówka stołowa z chłodzeniem</td><td>Beckman Coulter</td><td>Model: Mikrowirówka Allegra X-12R</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Eppendorf</td><td>5415 D</td><td></td></tr><tr><td colspan="4"><silny>Tabela wyposażenia</mocny> </td></tr></tbody></table>

wydajna immunoprecypitacja chromatyny przy użyciu ograniczonych ilości biomasy

Efficient Chromatin Immunoprecipitation using Limiting Amounts of Biomass

Immunoprecypitacja chromatyny (ChIP) jest powszechnie stosowaną metodą określania interakcji różnych białek z DNA w chromatynie żywych komórek. Przykłady obejmują specyficzne dla sekwencji czynniki transkrypcyjne wiążące DNA, histony i ich różne stany modyfikacji, enzymy, takie jak polimerazy RNA i czynniki pomocnicze oraz komponenty naprawy DNA. Pomimo jego wszechobecności brakuje aktualnych, szczegółowych metodologii zarówno do przygotowywania materiału na ławce rezerwowych, jak i do dokładnej analizy umożliwiającej ilościowe wskaźniki interakcji. Z powodu tego braku informacji, a także dlatego, że podobnie jak w przypadku każdej immunoprecypitacji, warunki muszą być ponownie zoptymalizowane pod kątem nowych zestawów warunków eksperymentalnych, test ChIP jest podatny na niedokładne lub słabo ilościowe wyniki.
Nasz protokół ostatecznie wywodzi się z przełomowych prac nad czynnikiem transkrypcyjnym:interakcje DNA1,2 , ale zawiera szereg ulepszeń czułości i odtwarzalności dla trudnych do uzyskania typów komórek. Protokół był z powodzeniem stosowany3,4 , zarówno przy użyciu qPCR do ilościowego oznaczania wzbogacenia DNA, jak i przy użyciu półilościowego wariantu poniższego protokołu.
Ta analiza ilościowa materiału amplifikowanego PCR jest wykonywana obliczeniowo i stanowi czynnik ograniczający w teście. Ważne kontrole i inne względy obejmują użycie przeciwciała dopasowanego do izotypu, a także ocenę regionu kontrolnego genomowego DNA, takiego jak region międzygenowy, co do którego przewiduje się, że nie zostanie związany przez badane białko (lub przewiduje się, że nie wykaże zmian w warunkach eksperymentalnych). Ponadto standardowa krzywa materiału wejściowego dla każdej próbki ChIP jest używana do wyprowadzenia bezwzględnych poziomów wzbogacenia w materiale doświadczalnym. Zastosowanie krzywych standardowych pomaga uwzględnić różnice między zestawami podkładów, niezależnie od tego, jak starannie zostały zaprojektowane, a także różnice w wydajności w całym zakresie stężeń matrycy dla pojedynczego zestawu podkładów. Nasz protokół różni się od innych, które są dostępne5-8 tym, że obszernie omawiamy późniejszą fazę analizy.

Przedstawiony tutaj protokół immunoprecypitacji chromatyny (ChIP) kontroluje różnice, jeśli takie występują, w ilości DNA użytego w reakcji PCR poprzez zastosowanie pary starterów amplifikujących region genomu, z którym białko nie wiąże się, co służy jako „kontrola załadunku”. W przykładzie pokazanym na Rysunku 3 zastosowano region kodujący gen Actb myszy jako region niewiązany z badanym białkiem oraz miejsce wiązania czynnika transkrypcyjnego NFAT w promotorze genu Il2 myszy jako regio...

Opisujemy solidną metodę immunoprecypitacji chromatyny przy użyciu pierwotnych limfocytów T. Metoda opiera się na standardowych podejściach, ale wykorzystuje określony zestaw warunków i odczynników, które poprawiają wydajność dla ograniczonej liczby komórek. Co ważne, przedstawiono szczegółowy opis fazy analizy danych.

Wydajna immunoprecypitacja chromatyny przy użyciu ograniczonych ilości biomasy

Chromatin immunoprecipitation (ChIP) is a  widely-used method for determining the interactions of different proteins with  DNA in chromatin of living ...

Ogólnym celem następującego eksperymentu jest wykrycie wiązania białek wiążących DNA, takich jak czynniki transkrypcyjne, lub modyfikacji histonów. Jest to osiągane poprzez przygotowanie chromatyny w pierwszym kroku, a w drugim kroku przeprowadzenie reakcji immunoprecypitacji chromatyny w celu wyizolowania fragmentów DNA związanych z badanym białkiem.Następnie fragment DNA związany z białkiem zainteresowania jest powielany metodą PCR. Wyniki analizy QPCR pozwalają określić krotność wzbogacenia fragmentu DNA związanego z białkiem zainteresowania w porównaniu z regionem niezwiązanym. Metoda ta może pomóc w udzieleniu odpowiedzi na kluczowe pytania w dziedzinach transkrypcji, chromatyny i epigenetyki, na przykład w kwestii czasu i miejsca występowania różnych białek modyfikowanych lub niemodyfikowanych.W odniesieniu do DNA: choć ta metoda może dostarczyć informacji o regulacji genów w limfocytach T, można ją również zastosować do innych układów, takich jak limfocyty B, próbki białaczki oraz unieśmiertelnione linie komórkowe. Chromatyna do niniejszego eksperymentu zostanie przygotowana z naiwnych limfocytów T CD4 śledziony myszy.Aby rozpocząć tę procedurę, należy dodać 37% formaldehyd do zawiesiny limfocytów T CD4 w DMEM do stężenia końcowego 1% i delikatnie mieszać na wytrząsarce w temperaturze pokojowej przez 15 minut. Spowoduje to sieciowanie kompleksów białko-DNA. Proces sieciowania należy przerwać, dodając jednomolową glicynę do stężenia końcowego 125 mM.Kontynuuj inkubację na kołysarce przez pięć minut w temperaturze pokojowej. Zbierz komórki poprzez wirowanie przy 200 G przez pięć minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Usuń supernatant i ponownie zawieś komórki w pięciu mililitrach lodowatego PBS zawierającego inhibitory proteaz; odwiruj ponownie. W ten sposób przemyj komórki łącznie trzy razy. Po ostatnim płukaniu odlej supernatant i zawieś komórki w jednym mililitrze lodowatego buforu do lizy komórek zawierającego inhibitory proteaz.Przenieś zawiesinę komórkową do probówki do mikrocentryfugi o pojemności 1,7 ml i inkubuj na lodzie przez 15 minut. Zbierz jądra komórkowe poprzez wirowanie przy 200 G przez pięć minut w temperaturze 4 °C. Ostrożnie odlej nadsącz i resuspenduj jądra w 500 µl buforu do lizy jąder.Bufor zawierający inhibitory proteaz inkubować w lodzie przez 15 minut. Następnie poddać komórki sonikacji przy użyciu sondy o średnicy 1,6 millimeter i poziomie mocy cztery przez 15 sekund. Schłodzić próbkę w lodzie przez jedną do dwóch minut, aby zapobiec przegrzaniu, i ponownie sonikować przez 15 sekund.Powtórz sonikację i chłodzenie łącznie cztery razy, a następnie odwiruj soniczną chromatynę przy 16,000 G przez pięć minut w temperaturze 4°C. Zbierz przejrzysty nadsad z probówki do mikrocentryfugi do nowej probówki.Pobierz 20 µL aliquotu klarownego supernatantu. Dodaj barwnik do ładowania DNA i sprawdź sonikowane DNA za pomocą elektroforezy na żelu agro 2%. Idealny rozmiar sonikowanego DNA dla większości zastosowań wynosi od 200 do 500 par zasad.Na koniec wyznacz stężenie DNA za pomocą spektrofotometru UV. Rozdrobnioną chromatynę można wykorzystać niezwłocznie do przeprowadzenia reakcji immunoprecypitacji chromatyny lub przechowywać w temperaturze -80°C do późniejszej immunoprecypitacji chromatyny (ChIP). Rozcieńcz sonikowaną chromatynę do stężenia DNA od 5 do 10 µg/mL w całkowitej objętości 2 mL w buforze do rozcieńczania ChIP z inhibitorami proteaz. Wszystkie etapy tej procedury muszą być przeprowadzane w temperaturze od 0 do 4°C.Odstaw 10%, co w tym przykładzie stanowi 200 µL rozcieńczonej sonikowanej chromatyny jako materiał wejściowy (input) i przechowuj na lodzie. Pozostałą porcję próbki podziel, przenosząc 450 µL do każdej z czterech probówek typu microview o pojemności 1,7 ml, podpisując je jako kontrolę izotypową oraz przeciwciało docelowe. W przypadku użycia wielu przeciwciał tego samego izotypu wystarczy jedna kontrola izotypowa. Aby przeprowadzić tę analizę, dodaj do odpowiednich probówek od 2 do 5 µg specyficznego przeciwciała, zależnie od jego specyficzności, lub kontroli izotypowej. Inkubuj probówki przez noc w temperaturze 4 °C w wytrząsarce, aby umożliwić tworzenie się kompleksów chromatyna-przeciwciało do następnego dnia rano.Dodaj 25 µL magnetycznych kulek z białkiem G do każdej mieszaniny i inkubuj w wytrząsarce przez co najmniej dwie godziny w temperaturze 4 °C. Następnie umieść probówki w wirówce na statywie magnetycznym na 15 do 20 sekund, aby kuleczki zebrały się po namagnesowanej stronie. Ostrożnie usuń roztwór poprzez aspirację, nie naruszając kuleczek.Dodaj 1 mL roztworu do płukania o niskim zasoleniu i delikatnie mieszaj przez pięć minut na mutatorze. Zbierz kuleczki za pomocą statywu magnetycznego i usuń roztwór do płukania. Ponownie dodaj 1 mL roztworu do płukania o niskim zasoleniu i delikatnie mieszaj przez pięć minut.Po usunięciu roztworu do płukania z niską zawartością soli, należy dodać jeden mililitr roztworu do płukania z wysoką zawartością soli i inkubować przez pięć minut w kołysarce. Kuleczki należy zebrać za pomocą statywu magnetycznego i usunąć roztwór do płukania. Płukanie roztworem z wysoką zawartością soli należy powtórzyć.Po usunięciu roztworu do płukania z wysokim stężeniem soli, należy dodać jeden mililitr roztworu do płukania z chlorkiem litu i inkubować w wytrząsarce przez pięć minut. Następnie należy zebrać kuleczki za pomocą statywu magnetycznego i usunąć roztwór do płukania. Proces płukania chlorkiem litu należy powtórzyć raz.Dodaj jeden mililitr roztworu TE i inkubuj w wytrząsaniu przez pięć minut. Zbierz kuleczki za pomocą statywu magnetycznego i usuń roztwór płuczący. Eluuj DNA z kuleczek, dodając 250 µL buforu do elucji, a następnie inkubuj w wytrząsaniu przez 15 minut w temperaturze pokojowej.Odpipetuj EIT i przechowuj ten materiał w nowej probówce wirówkowej o pojemności 1,7 ml. Powtórz czynność jeszcze raz i połącz oba eluaty, a następnie odrzuć kuleczki, aby odwrócić wiązania krzyżowe. Do wyeluowanego DNA dodaj 5 M NaCl do stężenia końcowego 0,3 M oraz 1 µl RNAs.Do wcześniej zachowanych próbek wejściowych dodać 400 µL buforu elucyjnego. Aby uzyskać objętość 500 µL dla każdej próbki, dodać 1 µL RNA w 0,3 M NaCl, 10 µL 0,5 M EDTA, 20 µL 1 M Tris-HCl pH 6,5 oraz 1 µL proteinazy K. Zamknąć probówki i inkubować przez noc w temperaturze 65 °C w suchym bloku grzewczym; następnego dnia rano pozwolić probówkom ostygnąć do temperatury pokojowej. Następnie dodać 1 mL 100% etanolu i inkubować od dwóch godzin do całej nocy w temperaturze -80 °C.Aby wytrącić DNA, odwiruj probówki przy 16 000 G przez 15 minut. Aby zgranulować DNA, przemyj osad DNA raz 70% etanolem i wysusz go na powietrzu, a następnie resuspenduj osad DNA w 100 µL autoklawowanej wody destylowanej, oczyść DNA za pomocą kolumn QuickSpin firmy Qiagen i eluuj w całkowitej objętości 50 µL buforu elucyjnego. Tak przygotowane DNA jest gotowe do amplifikacji PCR.Kluczowym aspektem niniejszego protokołu jest analiza qPCR w celu uzyskania pełnego wzbogacenia w stosunku do kontrolnego regionu nie związanego. Korzystając z oprogramowania do qPCR, przejdź do edytora i przypisz studniom zawierającym próbki wejściowe o różnych rozcieńczeniach odpowiadające im wartości krzywej standardowej. Oznacz również studnie z nieznanymi próbkami z chipa zgodnie z układem płytki PCR.Zastosowanie krzywej wzorcowej do interpolacji ilości DNA w nieznanych próbkach specyficznych i izotypowych pozwala na ocenę i dopasowanie jakości oraz wydajności wszystkich zestawów starterów w zakresie stężeń występujących w próbkach. Przejdź do edytora podzbiorów i zaznacz podzbiory, obejmujące dołki z próbkami wejściowymi oraz próbki z chipa o nieznanym stężeniu. Próbki nieznane zostaną ilościowo określone przy użyciu krzywej wzorcowej wygenerowanej z znanych stężeń próbek wejściowych przeznaczonych do analizy.Po zakończeniu amplifikacji PCR przeprowadź analizę za pomocą funkcji ABS quant. Second derivative max. Wybierz podzbiór do analizy i naciśnij Okay.Naciśnij przycisk oblicz, co wygeneruje krzywą standardową na podstawie znanych stężeń próbek wejściowych i wyświetli bezwzględną ilość DNA obecną w próbkach nieznanych. Jeśli jakość DNA jest dobra i jeśli primery wiążą się specyficznie z docelowym regionem, wydajność PCR powinna być bliska wartości dwóch. Wykonaj analizę krzywej topnienia z wyznaczeniem TM dla tego samego podzbioru, jeśli jest dostępna. Pojedynczy szczyt wskazuje, że amplifikowano tylko jeden specyficzny produkt.Amplifikację specyficznego DNA można również zweryfikować poprzez elektroforezę produktu PCR wraz z drabiną DNA w żelu agarozowym. Uzyskane dane są następnie eksportowane do pliku tekstowego z separatorami tabulacyjnymi, który można otworzyć w programie Microsoft Excel w celu dalszej analizy. Oblicz stosunek ilości DNA dla specyficznego przeciwciała do kontroli izotypowej dla starterów celowanych.Powtórz ten krok dla starterów regionu kontrolnego. Jeśli do różnych immunoprecypitacji użyto wielu przeciwciał tego samego izotypu, znormalizuj każde z nich wartościami z tej samej kontroli izotypowej. Ponadto, w przypadku użycia wielu docelowych par starterów, ilości DNA z jednego zestawu starterów kontrolnych powinny zostać użyte do normalizacji każdego celu.Wartości wynikowe reprezentują krotność wzbogacenia specyficznej immunoprecypitacji przeciwciał w każdym miejscu w stosunku do tła immunoprecypitacji niespecyficznej. Aby uzyskać wzbogacenie w stosunku do kontrolnego regionu niezwiązanego, należy podzielić krotność wzbogacenia dla starterów celowanych przez krotność wzbogacenia dla starterów regionu kontrolnego. Należy pamiętać, że dzięki wygenerowaniu krzywych wzorcowych dla całkowitej ilości wejściowego DNA dla każdej próbki, każda z wartości immunoprecypitacji interpolowanych z krzywej wzorcowej jest już znormalizowana i wyrażona przez oprogramowanie urządzenia jako ułamek całkowitej ilości wejściowej. Protokół immunoprecypitacji chromatyny przedstawiony w niniejszym materiale kontroluje różnice, jeśli takie występują, w ilości DNA użytego w PCR poprzez zastosowanie pary starterów amplifikującej niezwiązany region genomu, co służy zatem jako kontrola załadunku.W tym przykładzie region kodujący gen beta aktyny myszy został wykorzystany jako region niezwiązany z białkiem zainteresowania, natomiast miejsce wiązania czynnika transkrypcyjnego i wiążącego tłuszcze w promotorze IL 2 myszy posłużyło jako region docelowy. Ten zrzut ekranu arkusza kalkulacyjnego Excel przedstawia zastosowanie protokołu obliczeniowego opisanego w analizie danych z trzech powtórzeń eksperymentalnych w polach o kolorach żółtym, zielonym i fioletowym, z trzema powtórzeniami technicznymi. Każde z nich zostało wykorzystane do obliczenia krotności wzbogacenia.Względne wzbogacenie białka związanego z różnymi regionami genomu można porównać, jeśli zostanie wybrany ten sam zestaw przeciwciał kontrolnych izotypowych oraz przeciwciał specyficznych. Jeśli swoistość przeciwciała jest wysoka, zazwyczaj obserwuje się dwu- do dziesiokrotne wzbogacenie w stosunku do niezwiązanego regionu kontrolnego. Rysunek ten przedstawia wyniki eksperymentu ChIP z zastosowaniem konwencjonalnych limfocytów T CD4 oraz regulatorowych limfocytów T CD4 wyizolowanych od myszy.Niewielka frakcja konwencjonalnych limfocytów T została stymulowana PMA i jonomycyną przez 30 minut. Zaobserwowano relatywne wzbogacenie czynników transkrypcyjnych NFAT, NFAT1 i NFAT2 w obrębie promotora IL2, co przedstawiono tutaj jako krotność wzbogacenia w stosunku do regionu niewiążącego po wykonaniu tej procedury. W celu zbadania globalnego rozmieszczenia czynników transkrypcyjnych lub globalnych zmian w znacznikach epigenetycznych w odpowiedzi na bodziec można zastosować inne metody, takie jak ChIP-seq.Po obejrzeniu tego filmu powinni Państwo posiadać dobrą wiedzę na temat przeprowadzania immunoprecypitacji chromatyny z wykorzystaniem ograniczonej liczby komórek oraz analizy danych QPCI w celu określenia wiązania czynników transkrypcyjnych w porównaniu z kontrolnym regionem niewiążącym.

efficient-chromatin-immunoprecipitation-using-limiting-amounts

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Skuteczne immunoprecypitacja chromatyny z ograniczonymi ilościami biomasy

Różnicowanie ESC zbiega się z charakterystycznymi dla danego typu komórek zmianami w strukturze i składzie chromatyny. Wykrycie tych zmian dostarcza cennych informacji na temat mechanizmów definiujących pluripotencję oraz różnicowanie komórek. Immunoprecypitacja chromatyny (ChIP) stanowi wartościową metodę analizy mechanizmów molekularnych leżących u podstaw różnicowania komórek macierzystych. <br...

Immunoprecypitacja chromatyny z ludzkich embrionalnych komórek macierzystych

Ten film opisuje protokół testu immunoprecypitacji chromatyny (ChIP), który jest klasyczną techniką demonstracji interakcji białko-DNA. Technika ta służy do identyfikacji docelowych genów w ludzkich komórkach przewlekłej białaczki limfocytowej.

Test immunoprecypitacji chromatyny: technika badania interakcji białko-DNA w komórkach

Połączenie immunoprecypitacji chromatyny i sekwencjonowania ultra-wysokoprzepustowego (ChIP-seq) może zidentyfikować i zmapować interakcje białko-DNA w danej tkance lub linii komórkowej. Przedstawiono sposób generowania wysokiej jakości szablonu ChIP do późniejszego sekwencjonowania, na przykładzie doświadczenia z czynnikiem transkrypcyjnym TCF7L2.

Generowanie wysokiej jakości matrycy DNA do immunoprecypitacji chromatyny do sekwencjonowania wysokoprzepustowego (ChIP-seq)

Interakcje DNA-białko są niezbędne dla wielu procesów biologicznych. Podczas oceny funkcji komórkowych analiza interakcji DNA-białko jest niezbędna do zrozumienia regulacji genów. Immunoprecypitacja chromatyny (ChIP) jest potężnym narzędziem do analizy takich interakcji in vivo.

Analiza promotora ligandu c-KIT z wykorzystaniem immunoprecypitacji chromatyny

Prezentujemy protokół oparty na filtracji do izolowania wysokiej jakości jąder z usieciowanych mięśni szkieletowych myszy, w którym usunęliśmy potrzebę ultrawirowania, dzięki czemu jest to łatwe do zastosowania. Pokazujemy, że chromatyna przygotowana z jąder nadaje się do badań immunoprecypitacji chromatyny i prawdopodobnego sekwencjonowania immunoprecypitacji chromatyny.

Oparta na filtracji metoda przygotowania wysokiej jakości jąder z usieciowanych mięśni szkieletowych do immunoprecypitacji chromatyny

Tutaj opisujemy protokół immunoprecypitacji chromatyny (ChIP) i przygotowania biblioteki ChIP-seq do generowania globalnych profili epigenomicznych z próbek embrionalnych kurczaków o niskiej liczebności.

Protokół immunoprecypitacji chromatyny (ChIP) dla próbek embrionalnych o niskiej liczebności

Przedstawiono nowy protokół przygotowania chromatyny z mięśni szkieletowych dorosłej myszy, przystosowany do badania regulacji genów we włóknach mięśniowych przez immunoprecypitację chromatyny.

Ulepszony protokół immunoprecypitacji chromatyny z mięśni szkieletowych myszy

To jest metoda identyfikacji nowych białek oddziałujących z DNA w określonych docelowych loci, polegająca na specyficznym dla sekwencji wychwytywaniu usieciowanej chromatyny do kolejnych analiz proteomicznych. Nie jest wymagana żadna wcześniejsza wiedza na temat potencjalnych białek wiążących ani modyfikacji komórek. Początkowo opracowana dla drożdży, technologia została obecnie zaadaptowana do komórek ssaków.

Adaptacja wychwytywania hybrydyzacji białek związanych z chromatyną do proteomiki komórek ssaków

Tutaj opisujemy protokół efektywnej immunoprecypitacji chromatyny (ChIP), a następnie wysokoprzepustowego sekwencjonowania DNA (ChIP-seq) brunatnej tkanki tłuszczowej (BAT) wyizolowanej od myszy. Protokół ten nadaje się zarówno do mapowania modyfikacji histonów, jak i badania lokalizacji w całym genomie białek niehistonowych będących przedmiotem zainteresowania in vivo.

Immunoprecypitacja chromatyny mysiej brunatnej tkanki tłuszczowej

Immunoprecypitacja chromatyny (ChIP) jest potężnym narzędziem do zrozumienia molekularnych mechanizmów regulacji genów. Metoda ta wiąże się jednak z trudnościami w uzyskaniu powtarzalnej fragmentacji chromatyny przez mechaniczne ścinanie. W tym miejscu przedstawiamy ulepszony protokół testu ChIP z wykorzystaniem trawienia enzymatycznego.

Test immunoprecypitacji chromatyny z wykorzystaniem nukleaz mikrokokowych w komórkach ssaków

Ten protokół skupia się na przygotowaniu chromatyny z zamrożonych tkanek i nadaje się do sieciowania immunoprecypitacji chromatyny (X-ChIP), a następnie analizy ilościowej PCR (X-ChIP-qPCR) lub sekwencjonowania nowej generacji (X-ChIP-seq).

Ekstrakcja chromatyny z zamrożonej chimerycznej tkanki wątroby do analizy immunoprecypitacji chromatyny

Poznaj efektywną metodę immunoprecypitacji chromatyny dla komórek T przy użyciu ograniczonych ilości biomasy. Technika ta umożliwia badanie interakcji białko-DNA oraz modyfikacji histonowych w immunologii.

Wydajna immunoprecypitacja chromatyny przy użyciu ograniczonych ilości biomasy

Przeglądaj więcej filmów