13 stycznia 2014
Niedawno zidentyfikowaliśmy nową metodę rytmu preferencji temperatury (TPR) u Drosophila, w której preferowana temperatura u muszek wzrasta w ciągu dnia i spada w nocy. TPR jest regulowany niezależnie od innego okołodobowego wyjścia, aktywności lokomotorycznej. Tutaj opisujemy budowę i analizę TPR u Drosophila.
Ogólnym celem tej procedury jest określenie preferencji temperaturowej drosophila. Osiąga się to poprzez uprzednie przygotowanie much i aparatu, który jest zamontowany wokół aluminiowej podstawy o kontrolowanej temperaturze. Po ustaleniu temperatury w aparacie ładuje się kohortę much i po pół godzinie ocenia się ich preferencję temperaturową.
Ostatecznie test może być stosowany w wielu różnych warunkach eksperymentalnych. Na przykład rytmy okołodobowe preferencji temperatury. Ta metoda może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie docelowych rytmów.
Ponieważ ten docelowy rytm preferencji temperatury jest kontrolowany przez inne mechanizmy niż w przypadku aktywności lokomotywy, ten test zachowania doprowadzi do identyfikacji nowych mechanizmów molekularnych i komórkowych, które nie zostały wcześniej zidentyfikowane przy użyciu podejść do aktywności lokomotywy. Ta metoda może również pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie neurobiologii sensorycznej, takie jak temperatura i odczuwanie bólu. Ponieważ te testy behawioralne temperatury są bardzo solidne, ten test pozwoli nam zmapować obwód neuronalny od wykrywania temperatury do przetwarzania, co pozwoli nam uzyskać lepszy wgląd w integrację sensoryczną.
Hoduj muchy w nawilżanych inkubatorach z jasnym cyklem ciemnym 1212. Protokół ten wymaga dwóch takich inkubatorów ustawionych na przeciwstawne harmonogramy. Nocny inkubator powinien być ciemny w normalnych godzinach pracy.
Uzyskując dostęp do inkubatora w jego cyklu nocnym, użyj czerwonego światła, aby oświetlić inkubator. Zbierz kohorty od 20 do 30 nowo wyklutych much dowolnej płci i w dowolnym stosunku trzymaj je w inkubatorze przez dwa do trzech dni przed poddaniem ich testowi. Dla każdego badanego stanu wymaganych jest co najmniej pięć kohort.
Aby zbudować komorę do testowania preferencji temperatury, osłona z pleksiglasu musi być zaprojektowana tak, aby pasowała do aluminiowej płyty pod płytą. Umieść cztery przyrządy Peltiera. Każde z urządzeń Peltiera powinno być podłączone do regulatorów temperatury, które mogą generować niskie lub wysokie temperatury, aby zapobiec przegrzaniu pelterów.
Komputerowy system chłodzenia jest podłączony do rur wodnych, wentylatorów chłodzących powietrze i zasilaczy w celu monitorowania temperatury na aluminiowej płycie. Sondy temperatury są osadzone w krawędzi aluminiowej płyty i są podłączone do regulatorów temperatury. Ustaw zimną i gorącą stronę talerza odpowiednio na 12 i 36 stopni Celsjusza w pokrowcu.
Zamocuj sześć sond temperatury w różnych miejscach na jednym z pasów. Umieść urządzenie w pomieszczeniu o kontrolowanym poziomie 25 stopni Celsjusza i wilgotności względnej od 65 do 75%. Pamiętaj, aby monitorować te warunki.
Pomieszczenie musi mieć kontrolę światła i dobrą cyrkulację powietrza, aby powietrze krążące nie destabilizowało temperatury. Gradient osłaniaj obszar testowy zasłoną prysznicową. W aparacie należy stosować jednolite światło, ponieważ jasność może wpływać na preferencje temperaturowe.
Włącz urządzenie na co najmniej 30 minut. W celu ustalenia stabilnego gradientu temperatury na powierzchni płyty. Pokryj pokrywę aparatu behawioralnego środkiem hydrofobowym, aby zapobiec wspinaniu się much po ścianach lub suficie pokrowca.
Zetrzyj nadmiar środka hydrofobowego i w razie potrzeby pozostaw pokrywę na 25 do 30 minut, pół godziny później można użyć podwójnej taśmy klejącej. Zetrzyj kondensację z aluminiowej płyty. Następnie umieść osłonę z pleksi na aluminiowej płycie i zabezpiecz sześcioma zaciskami C.
Bardzo ważne jest, aby pokrywa była uszczelniona. Dobrze monitoruj temperaturę powietrza między płytą a pokrywą. Upewnij się, że sondy nie dotykają ani aluminiowej płyty, ani osłony z pleksiglasu.
Pozwól pokrywie wyrównać się na talerzu przez co najmniej 15 minut. Ostatecznie gradient temperatury powietrza między aluminiową płytą a pokrywą będzie wynosił od 18 do 32 stopni Celsjusza W przypadku dziennego eksperymentu behawioralnego wyjmij fiolki z muchami z dziennego inkubatora i przetestuj test behawioralny w świetle bezpośrednio przed nocnym eksperymentem behawioralnym. Wyjmij fiolki z muchami z nocnego inkubatora.
Zawiń je w folię i umieść w pudełku w ciemnym pomieszczeniu pod czerwoną lampą. W przypadku eksperymentów w okresach ciemności światła w pomieszczeniu muszą pozostać wyłączone przez cały czas, dopóki eksperymenty behawioralne nie zostaną zakończone. Jednak czerwone lampy mogą być używane do oświetlenia za pomocą aspiracji.
Obciążenie od 20 do 25 much w przestrzeń między aluminiową płytą. Następnie zakryj otwory szkiełkami nakrywkowymi, aby zapobiec ucieczce much. Pozwól muchom poruszać się przez 30 minut.
Po zakończeniu eksperymentu zrób co najmniej dwa zdjęcia do eksperymentów świetlnych. Do ciemnych eksperymentów należy użyć lampy błyskowej. Sprawdź temperaturę urządzenia.
Zwróć uwagę na temperaturę w pomieszczeniu, a także wilgotność, aby usunąć rurkę z dwutlenkiem węgla podłączoną do much w pobliżu otworu na górze aparatu, aby znieczulić muchy, wyrzuć muchy. Nie należy ich ponownie badać. Następnie zetrzyj kondensację lub wilgoć z płyty.
Załóż pokrywę na płytę i dokręć zaciskami w przygotowaniu Do następnego eksperymentu oblicz gradient temperatury w następujący sposób. Najpierw określ, gdzie znajdują się sondy temperatury za pomocą linijki na podstawie lokalizacji sond i ich zarejestrowanych temperatur. Narysuj proste linie reprezentujące każdy stopień temperatury w odpowiedniej pozycji na zdjęciu końcowej pozycji muchy.
Następnie policz liczbę much między każdym przedziałem jednego stopnia Celsjusza. Wyklucz wszelkie muchy na ścianach lub suficie pokrywy. Oblicz procent much w każdym zakresie temperatur na każdym torze, a następnie średnią preferowaną temperaturę dla każdego warunku.
Zbierz dane z co najmniej pięciu badań. Następnie użyj średnich wartości z każdej próby, aby określić średnią preferowaną temperaturę z błędami. Normalne muchy podniesione w temperaturze 25 stopni Celsjusza, preferują niższą temperaturę rano niż wieczorem.
Zmierzono wzrost preferencji temperatury o 1 do 1,5 stopnia w ciągu dnia i o 1,5 do dwóch stopni Celsjusza. Spadek zaobserwowano przy przejściu z dnia na noc. Test może być również wykorzystany do testowania zmutowanych much.
Na przykład stwierdzono, że preferencja temperaturowa much z wadliwą mutacją w podróży, jednym kanałem jonowym, jest wyższa niż w grupie kontrolnej. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak przeprowadzić test zachowania preferencji temperatury. Metoda ta pozwala na badanie mechanizmów molekularnych i obwodów neurologicznych, ofa i zegarów, a także tego, w jaki sposób mózg integruje różne sygnały środowiskowe i zegary biologiczne.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie identyfikuje nowy wyjściowy sygnał rytmu okołodobowego u Drosophila, znany jako rytm preferencji temperatury (TPR), który zmienia się w zależności od pory dnia. Badania analizują, w jaki sposób TPR jest regulowany niezależnie od aktywności lokomotorycznej.
Ilościowa analiza rytmów preferencji temperatury (TPR) u Drosophila umożliwia mechanistyczną weryfikację wyników okołodobowych wykraczających poza aktywność lokomotoryczną, co wspiera walidację celów w procesach badawczych z zakresu neurobiologii i chronobiologii. Ten test behawioralny zapewnia wiarygodność prognostyczną niezbędną do analizy obwodów neuronalnych i szlaków molekularnych leżących u podstaw integracji sygnałów środowiskowych, bezpośrednio wpływając na wczesne etapy odkryć oraz strategie badań translacyjnych. Solidny i powtarzalny schemat postępowania czyni analizę TPR narzędziem wielokrotnego użytku dla interdyscyplinarnych zespołów B&R badających integrację sensoryczną oraz regulację okołodobową.
Analiza TPR integruje się z kontinuum procesu odkrywania – od wczesnych badań mechanistycznych po opracowanie modeli przedklinicznych, umożliwiając weryfikację hipotez oraz wyjaśnienie szlaków sygnałowych dla celów okolodobowych i sensorycznych.