18 sierpnia 2014
Ta procedura pokazuje, jak celować w interneurony w rozwijającym się przodomózgowiu myszy za pomocą elektroporacji in utero. Technika ta okazała się szczególnie skuteczna w osiąganiu selektywnej ekspresji genów w podtypach interneuronów przeznaczonych do powierzchownych warstw kory mózgowej.
Ogólnym celem niniejszej procedury jest ukierunkowanie na neurony pośrednie w rozwijającym się mózgu myszy za pomocą elektroporacji in utero. Jest to realizowane poprzez przygotowanie igieł do wstrzykiwania, a w kolejnym kroku poprzez usunięcie łańcucha zarodkowego od znieczulonego zwierzęcia.
Następnie w mózgu wykonuje się iniekcję DNA oraz elektroporację. Ostatnim krokiem jest umożliwienie zwierzęciu rekonwalescencji po zabiegu. W rezultacie elektroporacja in utero jest wykorzystywana w celu selektywnego targetowania podtypów neuronów pośredniczących.
Przewagą tych metod nad naszymi istniejącymi technikami, takimi jak nieswoista elektroporacja in utero, jest to, że umożliwiają one przeprowadzenie analizy autonomiczności komórkowej podzbioru neuronów interneuronów korowych. Wysoki poziom ekspresji GFP pozwala na wizualizację i analizę pojedynczych interneuronów. Metoda ta może pomóc w udzieleniu odpowiedzi na fundamentalne pytania w dziedzinie rozwoju neurologicznego, takie jak zasady rządzące integracją dojrzewających interneuronów.
Aby rozpocząć tę procedurę, należy przygotować pipetę do mikroiniekcji, wyciągając kapilarę szklaną za pomocą wyciągacza do pipet. Następnie ostrożnie wyjmij kapilarę i pobierz dolną igłę do mikroiniekcji. Teraz umieść znieczuloną mysz w ciąży na podkładce grzewczej stroną brzuszną do góry.
Załóż na pysk maskę, która będzie zapewniać stały dopływ izofluranu przez cały czas trwania operacji. Następnie zastosuj lubrykant do oczu w obu oczach. Ustaw podgrzewalną matę na 36 °C, aby zapobiec późniejszej hipotermii.
Sprawdź brak odruchów stopy i ogona, ściskając tylne łapy lub ogon. Następnie oczyść skórę na brzuchu 70% etanolem. Za pomocą pęsety odciągnij skórę do góry.
Następnie wykonaj niewielkie, dwucentymetrowe nacięcie pionowe wzdłuż linii środkowej, zaczynając w połowie drogi między trzecią a czwartą parą gruczołów mlekowych. Używając pęsety okrągłej, zachowaj ostrożność, aby nie uszkodzić ściany brzusznej. Delikatnie odsuń łańcuch embrionalny od jamy ciała.
Pozostaw łańcuch na wilgotnych chusteczkach. Rozpocznij od odsłonięcia jednej połowy macicy. Następnie przeprowadź elektroporację embrionów, zanim przejdziesz do drugiej połowy.
W tej procedurze należy przygotować roztwór DNA poprzez rozpuszczenie osadu otrzymanego z standardowego protokołu oczyszczania maxi prep w wodzie destylowanej. Następnie do roztworu DNA należy dodać fast green w stosunku 1:20, aby umożliwić wizualizację podczas wstrzykiwania. Następnie, za pomocą precyzyjnych pęset, należy odciąć końcówkę wcześniej przygotowanej mikropipety, tak aby od początku barku do końca końcówki pozostało sześć milimetrów.
Następnie nabierz do mikropipety 1 µL roztworu DNA z fast green do iniekcji. Przytrzymaj głowę embrionu za pomocą pęsety okrągłej. Wprowadź pipetę do mózgu pod kątem 45 stopni, celując w komorę boczną znajdującą się w pobliżu linii środkowej.
Jeśli igła przebije komorę, należy powoli wycofać pipetę. Komora powinna zmienić kolor na zielony w momencie, gdy roztwór zacznie ją wypełniać. W tym punkcie należy przestać poruszać pipetą i wstrzyknąć 1 µL DNA.
Następnie ostrożnie wyjmij pipetę. Ustaw elektroporator ECM na 5 impulsów o napięciu 45 V i czasie trwania 50 ms, z odstępem międzyimpulsowym wynoszącym 950 ms. Zanurz pięciomilimetrowe elektrody płytkowe w PBS, aby zapewnić efektywny przepływ prądu.
Następnie umieść elektrody wokół głowy zarodka, tak aby elektroda dodatnia znajdowała się na komorze zawierającej roztwór DNA. Umieść elektrodę dodatnią nieco niżej niż ujemną, aby wytworzyć prąd brzuszny przechodzący przez eminencje zwojowe. Pozwoli to zminimalizować ekspresję ektopową w komórkach parametalnych.
Następnie podaj impuls, naciskając raz pedał nożny, po czym wyjmij elektrody i przetrzyj je do czystości. Powtórz te kroki dla każdego z embrionów. Po przeprowadzeniu elektroporacji wszystkich embrionów.
Wlej trzy mililitry PBS do jamy brzusznej i umieść w niej ponownie embriony. Następnie zaszyj ścianę brzuszną za pomocą zakrzywionej igły i nici jedwabnej 5-0, a potem skórę. Na ranę nałóż lidokainę i w celu przeciwbólowego działania podaj początkowo 120 mg/kg aspiryny.
Odłącz zwierzę od przewodów anestezji i pozwól mu dojść do siebie na podkładce grzewczej wyłożonej ręcznikiem papierowym. Następnie przenieś zwierzę do klatki. Utrzymuj je na podkładce grzewczej w temperaturze 37 °C i monitoruj stan zdrowia.
W tym eksperymencie elektroporowane interneurony są wyznaczane poprzez ekspresję markerów podtypów pochodzących z CGE. Obraz ten pokazuje, że interneurony pochodzące z CGE zostały elektroporowane plazmidem DLX five six EGFP. Obraz ten przedstawia interneuron wykazujący ekspresję VIP w dniu P eight.
Ekspresja EGFP obrysowuje całe drzewo dendrytyczne i arboryzację aksonalną pojedynczych neuronów; tutaj przedstawiono neuron pośredniczący wykazujący ekspresję NPY w dniu P8. Ekspresja NPY wyznacza komórki glejowe o formie neuroglejowej. Na koniec, tutaj znajduje się neuron pośredniczący wykazujący ekspresję NPY w dniu P15.
Po opanowaniu techniki, przy prawidłowym wykonaniu, procedura ta zajmuje 20 minut. Dzięki połączeniu zastosowania specyficznego plazmidu i genetycznie zmodyfikowanych linii myszy możliwe jest uzyskanie czasowej i przestrzennej kontroli ekspresji interesujących genów. W niektórych eksperymentach stosujemy plazmid A-D-L-X-T-T-A w celu indukcji ekspresji transgenów zależnych od AU.
W niniejszych eksperymentach wyciszamy ekspresję transgenu poprzez podanie doksycykliny.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsza procedura przedstawia sposób celowania w interneurony w rozwijającym się przedmózgowiu myszy za pomocą elektroporacji in utero. Technika ta umożliwia selektywną ekspresję genów w podtypach interneuronów przeznaczonych do warstw powierzchownych kory.
Selektywne celowanie w podtypy interneuronów korowych umożliwia mechanistyczne ograniczanie ryzyka podczas walidacji celów neurorozwojowych. Podejście to zwiększa pewność predykcyjną we wczesnej fazie odkrywania poprzez powiązanie manipulacji genetycznych z określonymi populacjami neuronalnymi. Odnosi się ono do kluczowego punktu zwrotnego w selekcji portfela projektów, w którym specyficzność biologiczna redukuje ryzyko niepowodzeń na późnych etapach badań.
Metoda ta wpisuje się w ciąg procesów odkrywania leków – od walidacji celu, przez identyfikację związku wiodącego, aż po ocenę przedkliniczną, umożliwiając iteracyjne udoskonalanie modeli mechanistycznych.