-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Przewodnik po jednojednostkowym zapisie in vivo z optogenetycznie zidentyfikowanych koro...
Przewodnik po jednojednostkowym zapisie in vivo z optogenetycznie zidentyfikowanych koro...
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
A Guide to In vivo Single-unit Recording from Optogenetically Identified Cortical Inhibitory Interneurons

Przewodnik po jednojednostkowym zapisie in vivo z optogenetycznie zidentyfikowanych korowych interneuronów hamujących

Full Text
19,804 Views
10:32 min
November 7, 2014

DOI: 10.3791/51757-v

Alexandra K. Moore1, Michael Wehr1

1Institute of Neuroscience,University of Oregon

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a method for obtaining stable, well-isolated single-unit recordings from identified inhibitory interneurons in the anesthetized mouse cortex. The technique utilizes neurons expressing ChR2, identified by their response to blue light, and offers a cost-effective alternative to more complex imaging methods.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Electrophysiology
  • Neuronal signaling

Background

  • Single-unit recordings are essential for understanding neuronal behavior.
  • Identifying specific neuron types can enhance the accuracy of recordings.
  • Channelrhodopsin-2 (ChR2) allows for optogenetic control of neurons.
  • Standard extracellular recording techniques are widely used in neuroscience.

Purpose of Study

  • To develop a reliable method for recording from cortical interneurons.
  • To utilize optogenetics for identifying light-responsive neurons.
  • To provide an accessible approach for researchers in electrophysiology.

Methods Used

  • Advancing a high impedance recording electrode through cortical tissue.
  • Monitoring electrical signals in response to blue light pulses.
  • Assessing the stability and isolation of single-unit recordings.
  • Replacing electrodes if stable recordings are not achieved.

Main Results

  • Demonstrated reliability of light-evoked responses from identified interneurons.
  • Achieved a typical signal-to-noise ratio indicative of successful recordings.
  • Validated the effectiveness of the method for targeting genetically identified cell types.
  • Provided evidence for the accessibility of the technique using standard equipment.

Conclusions

  • The described method is a viable alternative to more expensive techniques.
  • Optogenetic identification enhances the precision of electrophysiological recordings.
  • This approach can facilitate further research into neuronal function and behavior.

Frequently Asked Questions

What is the significance of using ChR2 in this study?
ChR2 allows for the optogenetic identification of specific neuron types, enhancing the accuracy of recordings.
How does this method compare to calcium imaging?
This method is more cost-effective and simpler, using standard extracellular recording equipment.
What challenges might arise during the recording process?
Challenges include achieving stable recordings and encountering light-responsive neurons.
Can this method be applied to other types of neurons?
While focused on interneurons, the method may be adapted for other genetically identified neuron types.
What equipment is necessary for this technique?
Standard extracellular recording equipment and a light source for blue light stimulation are required.
What are the implications of this research?
This research provides a foundation for further studies on neuronal behavior and interactions in the cortex.

Tutaj opisujemy naszą strategię uzyskiwania stabilnych, dobrze izolowanych pojedynczych nagrań jednostkowych ze zidentyfikowanych interneuronów hamujących w znieczulonej korze myszy. Neurony wyrażające ChR2 są identyfikowane na podstawie ich reakcji na niebieskie światło. Metoda wykorzystuje standardowy zewnątrzkomórkowy sprzęt rejestrujący i służy jako niedroga alternatywa dla obrazowania wapnia lub wizualnie sterowanego łatania.

Ogólnym celem poniższego eksperymentu jest uzyskanie wysokiej jakości zewnątrzkomórkowych nagrań pojedynczych jednostek z neuronów korowych u myszy z ekspresją korzenia kanału w drugim. Osiąga się to poprzez przepuszczenie elektrody rejestrującej o wysokiej impedancji przez tkankę w celu identyfikacji neuronów między neuronami w wyniku gwałtownych reakcji na impulsy światła niebieskiego. Sygnał elektryczny jest monitorowany pod kątem zmian, które wskazują na odpowiednią szybkość wyprzedzenia i prawdopodobieństwo uzyskania stabilnego, dobrze izolowanego zapisu.

Jeśli nie można osiągnąć dobrej izolacji pojedynczej jednostki lub odwrotnie, rzadko spotyka się neurony reagujące na światło, wymień elektrodę rejestrującą. Wyniki pokazują niezawodność światła wywołującego reakcje od optycznie zidentyfikowanych neuronów oraz typowy stosunek sygnału do szumu uzyskany za pomocą tej strategii. Podejście oparte na fotostymulacji jest dostępnym i niedrogim sposobem celowania w genetycznie zidentyfikowane typy komórek przy użyciu standardowego wzmacniacza zewnątrzkomórkowego i niebieskiego światła.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Słowa kluczowe: Zapis pojedynczej jednostki in vivo optogenetyka korowe interneurony hamujące PINP identyfikacja wspomagana fotostymulacją parwalbumino-dodatnia ekspresja somatostatyny ekspresja kalretyniny zapis zewnątrzkomórkowy neurofizjologia kora mózgowa

Related Videos

Jednoczęściowe nagrania in vivo z skrzyżowania wzrokowego szczura

11:00

Jednoczęściowe nagrania in vivo z skrzyżowania wzrokowego szczura

Related Videos

12.2K Views

Mapowanie hamujących obwodów neuronalnych za pomocą fotostymulacji skaningowej laserowej

09:50

Mapowanie hamujących obwodów neuronalnych za pomocą fotostymulacji skaningowej laserowej

Related Videos

17.8K Views

Hamowanie aktywności neuronalnej i jej wykrywanie za pomocą elektrofizjologii u szczura

06:36

Hamowanie aktywności neuronalnej i jej wykrywanie za pomocą elektrofizjologii u szczura

Related Videos

456 Views

Metoda wysokiej wierności optogenetycznej kontroli pojedynczych neuronów piramidowych in vivo

13:44

Metoda wysokiej wierności optogenetycznej kontroli pojedynczych neuronów piramidowych in vivo

Related Videos

19.6K Views

Nagrania całokomórkowych klamry krosowej z morfologicznie i neurochemicznie zidentyfikowanych interneuronów hipokampa

14:37

Nagrania całokomórkowych klamry krosowej z morfologicznie i neurochemicznie zidentyfikowanych interneuronów hipokampa

Related Videos

25.4K Views

Ex vivo Optogenetyczna analiza obwodów strachu w wycinkach mózgu

11:13

Ex vivo Optogenetyczna analiza obwodów strachu w wycinkach mózgu

Related Videos

16.9K Views

Optogenetyka Identyfikacja typu neuronalnego za pomocą szklanej optrody u obudzonych myszy

07:51

Optogenetyka Identyfikacja typu neuronalnego za pomocą szklanej optrody u obudzonych myszy

Related Videos

7.2K Views

Wewnątrzmózgowe zastrzyki stereotaktyczne in vivo do optogenetycznej stymulacji sygnałów wejściowych dalekiego zasięgu w wycinkach mózgu myszy

09:07

Wewnątrzmózgowe zastrzyki stereotaktyczne in vivo do optogenetycznej stymulacji sygnałów wejściowych dalekiego zasięgu w wycinkach mózgu myszy

Related Videos

12.3K Views

Optogenetyczna aktywacja szlaków aferentnych w wycinkach mózgu i modulacja odpowiedzi za pomocą lotnych środków znieczulających

08:16

Optogenetyczna aktywacja szlaków aferentnych w wycinkach mózgu i modulacja odpowiedzi za pomocą lotnych środków znieczulających

Related Videos

2.7K Views

Ex vivo Badanie optogenetyczne transmisji synaptycznej dalekiego zasięgu i plastyczności od przyśrodkowej kory przedczołowej do bocznej kory śródwęchowej

11:31

Ex vivo Badanie optogenetyczne transmisji synaptycznej dalekiego zasięgu i plastyczności od przyśrodkowej kory przedczołowej do bocznej kory śródwęchowej

Related Videos

2.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code