-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Lateralizowany model uczenia się zapachu u nowonarodzonych szczurów do analizy obwodów neuronalny...
Lateralizowany model uczenia się zapachu u nowonarodzonych szczurów do analizy obwodów neuronalny...
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
A Lateralized Odor Learning Model in Neonatal Rats for Dissecting Neural Circuitry Underpinning Memory Formation

Lateralizowany model uczenia się zapachu u nowonarodzonych szczurów do analizy obwodów neuronalnych leżących u podstaw tworzenia pamięci

Full Text
9,329 Views
10:42 min
August 18, 2014

DOI: 10.3791/51808-v

Christine J. Fontaine*1,2, Bandhan Mukherjee*1, Gillian L. Morrison1, Qi Yuan1

1Division of Biomedical Sciences,Faculty of Medicine, Memorial University, 2Division of Medical Sciences,University of Victoria

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Ten protokół wprowadza lateralizowane wczesne uczenie się preferencji zapachowych u szczurów za pomocą ostrej pojedynczej okluzji naris. Lateralizowane uczenie się pozwala na badanie wyników behawioralnych i leżących u podstaw mechanizmów biologicznych u tych samych zwierząt, zmniejszając wariancję wywołaną przez projekty międzyzwierzęce. Protokół ten może być wykorzystany do zbadania mechanizmów molekularnych leżących u podstaw wczesnego uczenia się zapachów.

Protokół ten wprowadza zlateralizowane wczesne uczenie się preferencji zapachowych u szczurów przy użyciu ostrych pojedynczych nieokluzji. Osiąga się to poprzez skonstruowanie najpierw wyjmowanych zatyczek na nos z polietylenu. Drugim krokiem jest zamknięcie pożądanego Barana przed treningiem behawioralnym.

Następnie przygotuj pachnącą ściółkę, a następnie trenuj zwierzę w pachnącej pościeli, głaszcząc je pędzlem. Ostatnim krokiem jest przetestowanie preferencji zapachowych lateralizowanych za pomocą aparatury testowej do wyboru dwóch wyborów. Ostatecznie immunohistochemia fosforylowanego białka wiążącego element odpowiedzi C amp lub P crib jest wykorzystywana do wykazania jednostronnego wyciszenia aktywności neuronalnej z powodu pojedynczego odosobnienia i odwracalności metody.

Główną zaletą tej techniki naszych istniejących metod kontroli zwierząt jest to, że jesteśmy w stanie zmniejszyć zmienność i liczbę zwierząt dzięki charakterowi naszego projektu eksperymentalnego kontroli wewnątrzzwierzęcej przed warstwą poporodową 11, ze względu na brak projekcji MA dojrzałych przednich węzłów, że dwie półkule węchowe nie są połączone. To pozwala nam manipulować jedną półkulą niezależnie od drugiej poprzez pojedynczą okluzję odżywczą. Okluzyjne półkule służą jako kontrola wewnątrzzwierzęca.

Chociaż technika ta koncentruje się na uczeniu się węchu u nowonarodzonych szczurów, jej implikacje pozwolą nam odpowiedzieć na podstawowe pytania dotyczące procesów neuronalnych podczas uczenia się i pamięci, takich jak plastyczność synaptyczna, metaplastyczność i leżące u ich podstaw mechanizmy molekularne. Wnioski płynące z badań z wykorzystaniem tej metody można uogólnić na podstawowe zasady uczenia się i pamięci oraz ssaki, zwłaszcza w krytycznych okresach poporodowych. Pomoże nam to stworzyć obiecujące podstawy dla potencjalnych terapii utraty pamięci związanej ze stanami patofizjologicznymi.

Metoda ta jest również wysoce odpowiednia dla innych procesów związanych z węchem, takich jak percepcja zapachu i powlekanie zapachowe. Zatyczka do nosa jest wykonana z rurki polietylenowej 20 i trzech zerowych nici do szwów jedwabnych. Najpierw wytnij mały kawałek polietylenu 22 na około 0,8 centymetra.

Następnie przeciągnij jedwabny szew przez przygotowaną rurkę tak, aby po obu stronach odcinka rurki znajdowała się nić. Na jednym końcu nici na zewnątrz wtyczki zawiąż węzeł. Przeciągnij odcinek rurki w dół nad węzłem w gwincie.

Węzeł powinien utkwić w rurce. Przytnij oba końce gwintu tak, aby około dwóch milimetrów gwintu wystawało z jednego końca rurki. Aby rozpocząć tę procedurę, wyjmij szczenię z tamy i umieść je w bezpiecznym naczyniu pokrytym zwykłą ściółką.

Za pomocą aplikatora z bawełnianą końcówką nanieś galaretkę znieczulającą miejscowo, 2% Xylocaine na Barana, który ma być okludowany. Pozwól szczeniakowi odpocząć w naczyniu przez około trzy minuty. Lucin w szczenię jest najbardziej krytycznym krokiem w tej procedurze.

Lekarstwo powinno być przyjmowane podczas zakładania zatyczki do nosa, aby zapobiec krwawieniu i uszkodzeniu tkanek. Następnie podnieś szczeniaka i delikatnie ale pewnie trzymaj go w ręce niedominującej ręką dominującą, podnieś nos, zatkaj i nałóż tę samą galaretkę znieczulenia miejscowego wokół końcówki, z której nitka nie wystaje. Będzie to działać zarówno jako środek znieczulający na każdy drobny ból związany z włożeniem korka, jak i jako lubrykant wewnątrz nes.

Delikatnie włóż zatyczkę na nos, mocno trzymając szczeniaka i powoli obracając zatyczkę bardzo delikatnymi naciśnięciami, aż wtyczka zostanie całkowicie włożona i tylko dwumilimetrowy gwint będzie wystawał z Barana. Podczas tego procesu nie powinno być krwawienia z żadnego z Baranów. Szczenięta z krwawieniem podczas zakładania zatyczki do nosa nie mogą być wykorzystywane w eksperymencie.

Pozwól zwierzęciu odpocząć w naczyniu przez pięć minut, aby przyzwyczaić się do wtyczki Przed rozpoczęciem treningu, aby zapobiec zanieczyszczeniu zapachem, przygotuj pachnącą ściółkę w dygestoriach i nosząc nowe rękawice, umieść 500 mililitrów ściółki z wiórów drzewnych w plastikowej torbie. Za pomocą strzykawki nabierz 0,3 mililitra ekstraktu z mięty pieprzowej i spryskaj nim pościel w plastikowej torbie. Zawiąż worek, energicznie potrząśnij workiem i pozwól pościeli spoczywać w torbie przez pięć minut, a przed użyciem umieść pachnącą pościel w przezroczystym, płytkim akrylowym pudełku treningowym o wymiarach 20 na 20 na 20 na pięć centymetrów odkrytym w dygestorium.

Po przygotowaniu pościeli wyrzuć zużyte rękawiczki. Nie dopuszczaj do kontaktu rękawic ze zwierzętami. Umieść 500 mililitrów bezzapachowej pościeli w innym czystym akrylowym pudełku treningowym i upewnij się, że nie ma ona kontaktu z pachnącą pościelą lub zużytymi rękawiczkami.

Rozpocznij paradygmat kondycjonowania zapachu, umieszczając przyzwyczajonego szczeniaka na pachnącej pościeli w celu uzyskania eksperymentalnego zapachu. Plus szczenięta z dodatnim wynikiem udaru OS. Głaszcz szczeniaka przez 30 sekund.

Używając małego pędzla, wykonuj szybkie ruchy okrężne, głównie wokół tylnej części szczeniaka. Głaskanie indukuje uwalnianie noradrenaliny do opuszki węchowej i kory węchowej. Służy to jako bodziec bezwarunkowy.

Pozwól szczeniakowi odpocząć przez 30 sekund. Powtórz 30-sekundowe głaskanie, a następnie 30 sekund odpoczynku, w sumie 10 minut. Kiedy 10 par głaskania i zapachu zostanie zakończonych, wyjmij szczeniaka z pudełka kondycjonującego.

Wyjmij zatyczkę na nos i zwróć szczenię do zapory w celu kontroli. Zapach tylko OS ujemne szczenięta. Połóż przyzwyczajonego szczeniaka na pachnącej pościeli na 10 minut bez głaskania.

Po 10 minutach wyjmij szczeniaka z pudełka kondycjonującego. Wyjmij zatyczkę na nos i załóż szczenię z powrotem do zapory. Lateralizowane badanie preferencji zapachowych jest przeprowadzane w różnych punktach czasowych po końcowej sesji treningowej.

Testowanie odbywa się w komorze testowej ze stali nierdzewnej o wymiarach 30 na 20 na 18 centymetrów, która jest umieszczona na dwóch akrylowych pudełkach treningowych oddzielonych dwucentymetrową strefą neutralną. Jedno pudełko treningowe zawiera pachnącą pościel, podczas gdy drugie pudełko zawiera czystą, bezzapachową pościel. Przygotuj jedną pościel o zapachu mięty pieprzowej i jedną pościel bezzapachową, jak pokazano wcześniej, i umieść każde pudełko po przeciwnych stronach komory testowej.

Dwa centymetry od siebie. Umieść plastikową siatkę na metalowej siatce na podłodze komory testowej. Usuń P z zapory i umieść mocną warstwę bezwonnego smaru silikonowego na zablokowanym Baranie.

Podczas treningu smar może być ponownie nakładany podczas pierwszej procedury testowej, jeśli zajdzie taka potrzeba. Umieść szczeniaka w neutralnej strefie komory testowej. Pozwól szczeniakowi eksplorować komorę przez minutę, rejestrując, ile czasu szczeniak spędził po obu stronach komory, tj. nad miętą pieprzową lub neutralnie pachnącą pościelą.

Przenieś szczeniaka do zakrytej plastikowej komory trzymania i pozwól mu odpocząć przez minutę. Powtórz próby testowe przez łącznie 10 minut, zmieniając początkową orientację szczeniaka w komorze w celu kontrolowania preferencji kierunkowych. Natychmiast po badaniu zetrzyj smar z Barana.

Włóż polietylenową zatyczkę do nosa do przeciwległego Barana, postępując zgodnie z tą samą procedurą odosobnienia RY, którą pokazano wcześniej, i pozwól zwierzęciu odpocząć przez 10 minut. Następnie na szczeniaku przeprowadza się lateralizowane badanie preferencji zapachowych. Znów. Po zakończeniu testów wyjmij wtyczkę i zwróć szczenię do zapory.

Pojedyncze wąskie odosobnienie podczas treningu zapachu plus głaskanie prowadzi do zlateralizowanej pamięci zapachu, która jest ograniczona do oszczędzonych NRI. Kiedy szczenięta są testowane pod kątem preferencji zapachowych z takim samym odosobnieniem, jak podczas treningu, wykazują preferencję dla zapachu kondycjonowanego. Nie zaobserwowano tego, gdy testy przeprowadzono z przeciwległym nie odosobnionym miejscem.

W przeciwieństwie do tego, grupy kontrolne tylko zapachowe nie wykazują preferencji zapachowych, niezależnie od tego, który zapach jest zamknięty. Podczas testów, lateralizowany trening zapachu skutkuje lateralizowaną aktywacją układu węchowego podczas ekspozycji na zapach, immunohistochemia opuszki węchowej lub OB i przedniej kory gruszkowatej lub PC wykazała znacznie mniej ufosforylowanego Creb w okluzowanej półkuli po ekspozycji na zapach w porównaniu z przeciwległą oszczędzoną półkulą. Barwienie Nissela wykazuje porównywalne ciała komórkowe w warstwie komórek mitralnych OB i w warstwie komórek piramidalnych PC obu półkul.

24 godziny po usunięciu czopa nosowego Ekspresja kraba grochowego Po ekspozycji na zapach w komórkach mitralnych OB i komórkach piramidalnych w PC są porównywalne między półkulami okludowanymi i oszczędzonymi. Wskazuje to, że efekt pojedynczego badania bez odosobnienia jest przejściowy i odwracalny i nie powoduje widocznych długoterminowych uszkodzeń neuronów, które mogłyby wpływać na percepcję zapachu i aktywację neuronów na zapachy podczas testów. Po opanowaniu okluzji NA można ją wykonać w mniej niż pięć minut, jeśli zostanie wykonana prawidłowo.

Podczas wykonywania tej procedury ważne jest, aby zachować szczególną ostrożność podczas zatykania nozdrza. Każda nadmierna siła lub niewłaściwa technika może spowodować krwawienie, a tym samym uszkodzenie nozdrza Zgodnie z tą procedurą. Inne metody, takie jak elektrofizjologia ex vivo i techniki molekularne, mogą być wykorzystane do udzielenia odpowiedzi na dodatkowe pytania dotyczące plastyczności synaptycznej.

Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak używać tymczasowych jednostronnych wąskich okluzji w celu lateralizacji uczenia się zapachów i przeanalizowania obwodów neuronalnych leżących u podstaw tworzenia pamięci.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Słowa kluczowe: lateralizowane uczenie się zapachów noworodki szczurów obwody węchowe tworzenie pamięci okluzja Naris porównanie wewnątrzzwierzęce układ węchowy pamięć zapachów

Related Videos

Apetytywne asocjacyjne uczenie węchowe u larw Drosophila

09:22

Apetytywne asocjacyjne uczenie węchowe u larw Drosophila

Related Videos

19.6K Views

Labirynt Double-H: solidny test behawioralny do uczenia się i pamięci u gryzoni

09:01

Labirynt Double-H: solidny test behawioralny do uczenia się i pamięci u gryzoni

Related Videos

13.1K Views

Metoda zdalnego wyciszania aktywności neuronalnej u gryzoni podczas dyskretnych faz uczenia się

09:22

Metoda zdalnego wyciszania aktywności neuronalnej u gryzoni podczas dyskretnych faz uczenia się

Related Videos

15K Views

Obiektywny i powtarzalny test uczenia się węchu i dyskryminacji u myszy

09:33

Obiektywny i powtarzalny test uczenia się węchu i dyskryminacji u myszy

Related Videos

9.1K Views

Optyczne obrazowanie wapnia in vivo plastyczności synaptycznej indukowanej uczeniem się u Drosophila melanogaster

06:35

Optyczne obrazowanie wapnia in vivo plastyczności synaptycznej indukowanej uczeniem się u Drosophila melanogaster

Related Videos

9.6K Views

System eksplantatów do badań obrazowania poklatkowego zespołu obwodów węchowych u Drosophila

07:06

System eksplantatów do badań obrazowania poklatkowego zespołu obwodów węchowych u Drosophila

Related Videos

2.5K Views

Zależna od doświadczenia przebudowa połączeń synaptycznych neuronów czuciowych młodzieńczych neuronów czuciowych we wczesnym okresie życia

07:13

Zależna od doświadczenia przebudowa połączeń synaptycznych neuronów czuciowych młodzieńczych neuronów czuciowych we wczesnym okresie życia

Related Videos

1K Views

Miniskop rejestrujący sygnały wapnia w hipokampie myszy poruszających się po pióropuszu zapachowym

06:21

Miniskop rejestrujący sygnały wapnia w hipokampie myszy poruszających się po pióropuszu zapachowym

Related Videos

1.4K Views

Konstruowanie olfaktometru do badań zachowań węchowych gryzoni

08:36

Konstruowanie olfaktometru do badań zachowań węchowych gryzoni

Related Videos

819 Views

C. elegans (C. elegans) Pozytywne uczenie się butanonu, krótkotrwałe i długoterminowe testy pamięci asocjacyjnej

09:58

C. elegans (C. elegans) Pozytywne uczenie się butanonu, krótkotrwałe i długoterminowe testy pamięci asocjacyjnej

Related Videos

30.3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code