Name: Prosty test do ilościowego oznaczania unikania społecznego u Drosophila melanogaster (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-12-13T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 8 s
Description: Poznaj prosty test ilościowego oznaczania unikania społecznego u Drosophila melanogaster za pomocą labiryntu T. Ta metoda pozwala badać wpływ czynników genetycznych i środowiskowych na zachowanie.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dziękujemy Rachelle Kanippayoor za pomoc w zidentyfikowaniu nowego dzikiego szczepu jako należącego do gatunku melanogaster. R.W.F., O.F. i A.F.S byli odpowiedzialni za projektowanie badań; Eksperymenty przeprowadzili R.W.F., M.N. i O.F. R.W.F., M.N., O.F. i A.F.S. przeanalizowali dane; Rękopis napisali R.W.F., I.S.M. i A.F.S. 
Ta praca była wspierana przez nagrody badawcze PSC-CUNY, wspólnie finansowane przez Kongres Profesjonalnego Personelu i The City University of New York dla A.F.S.; przez wewnętrzne finansowanie z Western University dla A.F.S. i I.S.M.; przez wsparcie szkoleniowe z National Alliance for Hispanic Health's Alliance/Merck Ciencia (Science) Hispanic Scholars Program oraz stypendium uniwersyteckie z Yale Graduate School of Arts and Sciences dla R.W.F.

1. Sprzęt i odczynniki stworzone we własnym zakresie (zobacz listę materiałów dla innych)
<ol>
	<li>Przygotuj aparat do znieczulenia zimnem Drosophila do pracy w locie.
	<ol>
		<li>Wytnij porowaty arkusz polietylenu, aby przykryć małe plastikowe pudełko (12,7 cm długości, 10,2 cm szerokości), zwykle górną pokrywę pudełka na końcówki do pipet (12,7 cm długości, 10,2 cm szerokości, 3,8 cm głębokości).</li>
		<li>Napełnij pudełko pokruszonym lodem, przykryj porowatym arkuszem polietylenu. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Przygotować aparaturę do labiryntu T; dostosować aparaturę opisaną wcześniej szczegółowo w punktach 28-31.</li>
	<li>Przygotuj aspirator muchowy zgodnie z opisem 32.</li>
	<li>Przygotuj aparat do reagowania na fototaksję, aby bezstresowo wprowadzać i wyjmować muchy z fiolek testowych:
	<ol>
		<li>Użyć aparatury przeciwprądowej, jak opisano w29,33.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
UWAGA: Labirynt T może być również używany do innych celów, jak opisano przez28.
<ol start="5">
	<li>Zadbaj o jednorodne warunki oświetleniowe: eksperyment należy przeprowadzić na ławce przykrytej białym pokrowcem na ławkę oraz przed białą tablicą. 
	UWAGA: Do tych eksperymentów użyto szczepów much Drosophila melanogaster dzikich typów: muchy Canton-S, Oregon i Samarkand z naszych zasobów laboratoryjnych34; Muchy Elwood zostały zebrane jesienią 2011 roku w dzielnicy Elwood w Huntington, na Long Island, Nowy Jork, USA.</li>
</ol>
2. Przygotowanie much przed eksperymentem
1-2 dni przed przeprowadzeniem eksperymentu: 
<ol>
	<li>Utrzymywać muchy na standardowym podłożu z mąki kukurydzianej, agaru i melasy i drożdży w temperaturze 25 °C w 12-godzinnym cyklu światło/ciemność.</li>
	<li>Zbierz muchy respondenta w zimnym znieczuleniu 1-2 dni przed wykonaniem eksperymentu
	<ol>
		<li>Przenieść muchy z butelek, w których zostały wyhodowane, do probówek Falcon o pojemności 50 ml za pomocą lejka.</li>
		<li>Umieść rurkę sokoła z muchami pod poziomem lodu w izolowanym wiadrze na lód.</li>
		<li>Umieścić zimny aparat anestezjologiczny z kruszonym lodem w temperaturze -4 °C do schłodzenia.</li>
		<li>Odczekaj 5 minut, aż muchy zapadną w śpiączkę chłodną.</li>
		<li>Przenieś muchy na porowaty arkusz polietylenu aparatu do znieczulenia na zimno.</li>
		<li>Zbierz muchy ratownika na zimny aparat anestezjologiczny. W RT, pod mikroskopem stereoskopowym, oddziel 3-7 dniowych samców od samic much i utrzymuj te muchy w grupach po 40 sztuk.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Zbierz muchy emitera 1-2 dni przed wykonaniem eksperymentu.
	<ol>
		<li>Delikatnie zbieraj muchy mieszanej płci Canton-S z butelek, używając aspiratora do ust, kontrolując ich liczbę.</li>
		<li>Utrzymuj te muchy w grupie 60-100 sztuk, ponieważ to one będą emiterami.</li>
		<li>Przygotuj tyle próbek emiterów, ile potrzebnych punktów danych.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Odczekaj co najmniej noc na regenerację po pobraniu substancji reagujących i emiterów, aby zminimalizować zakłócający wpływ zimnego znieczulenia i pobierania aspiratorów doustnych na zachowanie.</li>
	<li>Otwórz torebkę z fiolkami testowymi, aby umożliwić zastąpienie świeżego powietrza o zapachu stęchłego plastiku w worku świeżym powietrzem, co najmniej 1 dzień przed eksperymentem.</li>
</ol>
2 godziny przed przeprowadzeniem eksperymentu:
<ol start="6">
	<li>Upewnij się, że temperatura w pomieszczeniu, w którym przeprowadzany jest eksperyment, wynosi około 23-25 °C, przy równomiernym świetle i wilgotności powyżej 30%.</li>
	<li>Przenieś muszki owocowe reagujące i emitujące do fiolek ze świeżą żywnością, aby upewnić się, że muchy te nie są głodzone.</li>
	<li>Pozwól muszkom owocowym dostosować się do środowiska przez 2 godziny, na ławce, na której zostanie przeprowadzony eksperyment.</li>
</ol>
3. Przeprowadzanie eksperymentu z unikaniem społecznym
<ol>
	<li>Wykonuj każdy eksperyment o tej samej porze dnia, w czasie 3–4 godzin po południu między czasem Zeitgeber ZT5 a ZT9.</li>
	<li>Umieść labirynt w kształcie litery T na podkładce do i dokręć zacisk śrubowy, aby winda była stabilna.</li>
	<li>Przenieść muchy reagujące na leczenie do nowej fiolki testowej. Zatrzaśnij tę fiolkę zawierającą muchy ratownika na górną część labiryntu T.</li>
	<li>Pochyl urządzenie do labiryntu w kształcie litery T i postukaj nim o matę do, aby muszki owocówki wpadły do windy.</li>
	<li>Przesuń górną część windy w dół, tak aby muchy znalazły się między górną a dolną częścią labiryntu T, ale zwróć uwagę, aby winda znajdowała się powyżej wybranego punktu – aby zapobiec ucieczce much.</li>
	<li>Zaopatrzyć się w fiolki z dSO (patrz punkt 5 w celu wytworzenia fiolek wolnych od dSO, które wcześniej były zajmowane przez muchy).
	<ol>
		<li>Podczas gdy muchy reagujące dostosowują się do tego nowego środowiska, umieść muchy emitujące w fiolce testowej.</li>
		<li>Umieść kawałek bawełny, aby zamknąć fiolkę, aby muszki owocówki nie uciekły.</li>
		<li>Mechanicznie mieszać tę fiolkę na mini-wirze w następujący sposób: wirować przez 15 sekund, wyjąć fiolkę z wiru na 5 sekund. Powtórzyć 3 razy, w sumie przez 55 sekund.</li>
		<li>Usunąć muchy emitera ze świeżej fiolki - przenosząc je do fiolki z jedzeniem - i szybko umieścić tę fiolkę wypełnioną dSO w jednej z dwóch stron aparatu T-labirynt.</li>
		<li>Naprzemiennie zmieniać stronę umieszczania fiolki wypełnionej dSO w każdym nowym przebiegu.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Umieść świeżą fiolkę testową po drugiej stronie labiryntu T.</li>
	<li>Całkowicie opuść windę, aby muszki owocówki mogły wybrać między świeżą fiolką testową a fiolką testową z dSO i uruchomić stoper.</li>
	<li>Pozwól muchom wybrać między świeżą fiolką a fiolką dSO, przez 1 minutę, chyba że zaznaczono inaczej.</li>
	<li>Po 1 minutach przesuń windę w górę, aby oddzielić muchy w świeżej fiolce, fiolce dSO i te, które utknęły w windzie.</li>
	<li>Policz liczbę much w każdej fiolce i w windzie.</li>
	<li>Powtórz to dla każdego genotypu/stanu.</li>
</ol>
4. Analiza danych dotyczących unikania kontaktów społecznych
<ol>
	<li>Policz liczbę muszek owocowych w każdej fiolce dla każdego genotypu i przenieś dane do arkusza kalkulacyjnego.</li>
	<li>Korzystając z arkusza kalkulacyjnego, oblicz wskaźnik wydajności (PI) dla każdego genotypu, odejmując liczbę much w fiolce dSO od liczby much w fiolce wolnej od dSO, a następnie dzieląc przez całkowitą liczbę much.</li>
	<li>Porównaj średnie PI za pomocą oprogramowania do analizy statystycznej do analizy wyników.
	<ol>
		<li>Najlepiej przygotować 2-3 powtórzenia wewnętrzne dla każdego eksperymentu i 3 niezależne powtórzenia, wykonywane w różnych dniach, z różnymi butelkami lub krzyżami30.</li>
		<li>Użyj testów statystycznych rozkładu Gaussa, ponieważ dane są zgodne z rozkładem normalnym.</li>
		<li>Podczas badania jednego efektu (tj. gęstości – rysunek 2) należy użyć jednoczynnikowej analizy analizy danych z testem końcowym do wielokrotnego porównania (kolumna po kolumnie) lub prostego testu t, aby porównać każdy wynik z kontrolą.</li>
		<li>Kiedy przeprowadzane są eksperymenty grupowe, należy przetestować zarówno warunki, jak i płeć (puste fiolki, zestresowane i niezestresowane muchy; oraz efekt płci - Ryc. 1), używając dwukierunkowej ANOVA.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
5. Generuj fiolki poprzednio zajęte przez niezestresowane muchy — Wykonaj zamiast 3,5 do 3,6
<ol>
	<li>Użyj fototaksówek, aby przygotować fiolki zajęte przez muchy, które nie zostały zestresowane, jako kontrolę.</li>
	<li>Przenieś muchy do fiolki testowej i zatrzaśnij ją w aparacie przeciwprądowym, ze świeżymi pustymi fiolkami w przeciwległym miejscu.</li>
	<li>Ułóż aparat poziomo z dystalną fiolką bezpośrednio przed fluorescencyjnym światłem o mocy 15 W i przykryj czarną szmatką.</li>
	<li>Pozwól muchom delikatnie poruszać się w świeżej fiolce. Może to potrwać kilka minut. Gdy większość much będzie iść w kierunku światła w dystalnej fiolce, uruchom minutnik na 1 minutę.</li>
	<li>Delikatnie zdejmij czarną szmatkę, zmień położenie światła, odzyskaj za pomocą czarnej szmatki i pozwól muchom opuścić fiolkę testową.</li>
	<li>W tym czasie rozpocznij eksperyment wyboru, jak w 3.2 do 3.5. Pomiń 3.6 i 3.7.</li>
	<li>Przesunąć suwak aparatu, aby oddzielić muchy, które opuściły fiolkę testową z drugiej strony.</li>
	<li>Do eksperymentu wyboru należy natychmiast użyć opuszczonej fiolki testowej w labiryncie T, jak w ppkt 3.7.</li>
</ol>

<ol><li>Fry, S. N., Rohrseitz, N., Straw, A. D., Dickinson, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TrackFly%3A+virtual+reality+for+a+behavioral+system+analysis+in+free-flying+fruit+flies%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">TrackFly: virtual reality for a behavioral system analysis in free-flying fruit flies.</a> J Neurosci Methods. 171, 110-117 (2008).</li>
<li>Slawson, J. B., Kim, E. Z., Griffith, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution+video+tracking+of+locomotion+in+adult+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">High-resolution video tracking of locomotion in adult Drosophila melanogaster.</a> J Vis Exp. 24, 1096(2009).</li>
<li>Dankert, H., Wang, L., Hoopfer, E. D., Anderson, D. J., Perona, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+monitoring+and+analysis+of+social+behavior+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Automated monitoring and analysis of social behavior in Drosophila.</a> Nat Methods. 6, 297-303 (2009).</li>
<li>Branson, K., Robie, A. A., Bender, J., Perona, P., Dickinson, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+ethomics+in+large+groups+of+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">High-throughput ethomics in large groups of Drosophila.</a> Nat Methods. 6, 451-457 (2009).</li>
<li>Simon, J. C., Dickinson, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+chamber+for+studying+the+behavior+of+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">A new chamber for studying the behavior of Drosophila.</a> PLoS One. 5, 8793(2010).</li>
<li>Wang, L., Dankert, H., Perona, P., Anderson, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inaugural+Article%3A+A+common+genetic+target+for+environmental+and+heritable+influences+on+aggressiveness%5BTitle%5D)+AND+%22in+Drosophila.+Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Inaugural Article: A common genetic target for environmental and heritable influences on aggressiveness.</a> in Drosophila. Proceedings of the National Academy of Sciences. 105, 5657-5663 (2008).</li>
<li>Schneider, J., Dickinson, M. H., Levine, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Social+structures+depend+on+innate+determinants+and+chemosensory+processing+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Social structures depend on innate determinants and chemosensory processing in Drosophila.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 2, 17174-17179 (2012).</li>
<li>Miyamoto, T., Amrein, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Suppression+of+male+courtship+by+a+Drosophila+pheromone+receptor%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Suppression of male courtship by a Drosophila pheromone receptor.</a> Nat Neurosci. 11, 874-876 (2008).</li>
<li>Villella, A., Hall, J. C., Jeffrey, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chapter+3+Neurogenetics+of+Courtship+and+Mating+in+Drosophila.+%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+Genetics%22%5BJournal%5D)">Chapter 3 Neurogenetics of Courtship and Mating in Drosophila. </a> Advances in Genetics. 62, 67-184 (2008).</li>
<li>Ejima, A., Griffith, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Courtship+Initiation+Is+Stimulated+by+Acoustic+Signals+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Courtship Initiation Is Stimulated by Acoustic Signals in Drosophila melanogaster.</a> PLoS ONE. 3, 3246(2008).</li>
<li>Mery, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Public+Versus+Personal+Information+for+Mate+Copying+in+an+Invertebrate%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">Public Versus Personal Information for Mate Copying in an Invertebrate.</a> Current Biology. 19, 730-734 (2009).</li>
<li>Montell, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+taste+of+the+Drosophila+gustatory+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">A taste of the Drosophila gustatory receptors.</a> Curr. Opin. Neurobiol. 19, 345-353 (2009).</li>
<li>Billeter, J. -C., Atallah, J., Krupp, J. J., Millar, J. G., Levine, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specialized+cells+tag+sexual+and+species+identity+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Specialized cells tag sexual and species identity in Drosophila melanogaster.</a> Nature. 461, 987-991 (2009).</li>
<li>Krupp, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Social+experience+modifies+pheromone+expression+and+mating+behavior+in+male+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Social experience modifies pheromone expression and mating behavior in male Drosophila melanogaster.</a> Curr Biol. 18, 1373-1383 (2008).</li>
<li>Kent, C., Azanchi, R., Smith, B., Formosa, A., Levine, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Social+context+influences+chemical+communication+in+D.+melanogaster+males%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Social context influences chemical communication in D. melanogaster males.</a> Curr Biol. 18, 1384-1389 (2008).</li>
<li>Levine, J. D., Funes, P., Dowse, H. B., Hall, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resetting+the+Circadian+Clock+by+Social+Experience+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Resetting the Circadian Clock by Social Experience in Drosophila melanogaster.</a> Science. 298, 2010-2012 (2002).</li>
<li>Ganguly-Fitzgerald, I., Donlea, J., Shaw, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Waking+Experience+Affects+Sleep+Need+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Waking Experience Affects Sleep Need in Drosophila.</a> Science. 313, 1775-1781 (2006).</li>
<li>Billeter, J. -C., Levine, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Who+is+he+and+what+is+he+to+you%3F+Recognition+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Who is he and what is he to you? Recognition in Drosophila melanogaster.</a> Curr. Opin. Neurobiol. 23, 17-23 (2013).</li>
<li>Suh, G. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+single+population+of+olfactory+sensory+neurons+mediates+an+innate+avoidance+behaviour+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">A single population of olfactory sensory neurons mediates an innate avoidance behaviour in Drosophila.</a> Nature. 431, 854-859 (2004).</li>
<li>Bonini, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Tribute+to+Seymour+Benzer+1921-2007%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">A Tribute to Seymour Benzer 1921-2007.</a> 180, 1265-1273 (2008).</li>
<li>Castermans, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+neurobeachin+gene+is+disrupted+by+a+translocation+in+a+patient+with+idiopathic+autism%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Medical+Genetics%22%5BJournal%5D)">The neurobeachin gene is disrupted by a translocation in a patient with idiopathic autism.</a> Journal of Medical Genetics. 40, 352-356 (2003).</li>
<li>Medrihan, L., et al. Neurobeachin, a protein implicated in membrane protein traffic and autism, is required for the formation and functioning of central synapses. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMedrihan%2C+L+%22J+Physiol%22">J Physiol</a>. 587, 5095-5106 (2009).</li>
<li>Simon, A. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+assay+to+study+social+behavior+in+Drosophila%3A+measurement+of+social+space+within+a+group%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Brain+Behav%22%5BJournal%5D)">A simple assay to study social behavior in Drosophila: measurement of social space within a group.</a> Genes Brain Behav. 11, 243-252 (2012).</li>
<li>Venkatesh, T., et al. Cold Spring Harbor Meeting: From Molecules to Circuit Behavior. , Cold Spring Harbor Laboratories. Cold Spring Harbor, NY. (2013).</li>
<li>Hamilton, P. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((De+novo+mutation+in+the+dopamine+transporter+gene+associates+dopamine+dysfunction+with+autism+spectrum+disorder%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Psychiatry%22%5BJournal%5D)">De novo mutation in the dopamine transporter gene associates dopamine dysfunction with autism spectrum disorder.</a> Mol Psychiatry. 18, 1315-1323 (2013).</li>
<li>Gadow, K. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Association+of+dopamine+gene+variants%2C+emotion+dysregulation+and+ADHD+in+autism+spectrum+disorder%5BTitle%5D)+AND+%22Research+in+Developmental+Disabilities%22%5BJournal%5D)">Association of dopamine gene variants, emotion dysregulation and ADHD in autism spectrum disorder.</a> Research in Developmental Disabilities. 35, 1658-1665 (2014).</li>
<li>Fernandez, R. W., Akinleye, A. A., Nurilov, M., Rouzyi, Z., Simon, A. F. 54th Annual Drosophila Research Conference, , (2014).</li>
<li>Ali, Y. O., Escala, W., Ruan, K., Zhai, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assaying+Locomotor%2C+Learning%2C+and+Memory+Deficits+in+Drosophila+Models+of+Neurodegeneration%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Assaying Locomotor, Learning, and Memory Deficits in Drosophila Models of Neurodegeneration.</a> J Vis Exp. , 2504(2011).</li>
<li>Connolly, J. B., Tully, T. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aConnolly%2C+JB+%22Drosophila%3A+A+Practical+Approach%22">Drosophila: A Practical Approach</a>. Roberts, D. B. 1, IRL. New York, NY. 265-317 (1998).</li>
<li>Tully, T., Quinn, W. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Classical-conditioning+and+retention+in+normal+and+mutant+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22J+Comp+Physiol+%5BA%5D%22%5BJournal%5D)">Classical-conditioning and retention in normal and mutant Drosophila melanogaster.</a> J Comp Physiol [A]. 157, 263-277 (1985).</li>
<li>Krashes, M. J., Waddell, S. Drosophila Aversive Olfactory Conditioning. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKrashes%2C+MJ+%22Cold+Spring+Harbor+Protocols%22">Cold Spring Harbor Protocols</a>. 2011, (2011).</li>
<li>Ejima, A., Griffith, L. C. Ch. 30. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aEjima%2C+A+%22Drosophila+Neurobiology%2C+A+Laboratory+Manual%22">Drosophila Neurobiology, A Laboratory Manual</a>. Zhang, B., Freeman, M. R., Waddell, S. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring, NY. 475-481 (2010).</li>
<li>Benzer, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioral+mutants+of+Drosophila+melanogaster+isolated+by+countercurrent+distribution%5BTitle%5D)+AND+%22PNAS%22%5BJournal%5D)">Behavioral mutants of Drosophila melanogaster isolated by countercurrent distribution.</a> PNAS. 58, 1112-1119 (1967).</li>
<li>Simon, A. F., Shih, C., Mack, A., Benzer, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Steroid+control+of+longevity+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Steroid control of longevity in Drosophila melanogaster.</a> Science. 299, 1407-1410 (2003).</li>
<li>Vaux, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Research+methods%3A+Know+when+your+numbers+are+significant%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Research methods: Know when your numbers are significant.</a> Nature. 492, 180-181 (2012).</li>
<li>Stowers, L., Logan, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sexual+dimorphism+in+olfactory+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Sexual dimorphism in olfactory signaling.</a> Curr. Opin. Neurobiol. 20, 770-775 (2010).</li>
<li>Simon, A. F., Liang, D. T., Krantz, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+decline+in+behavioral+performance+of+Drosophila+melanogaster+with+age%5BTitle%5D)+AND+%22Mechanisms+of+Ageing+and+Development%22%5BJournal%5D)">Differential decline in behavioral performance of Drosophila melanogaster with age.</a> Mechanisms of Ageing and Development. , 127-647 (2006).</li>
</ol>

Autorzy oświadczają, że nie mają konkurencyjnych interesów finansowych.

Protokół ten opisuje szczegółową procedurę testu unikania kontaktów społecznych. Canton-S pozwoli uniknąć tylko fiolki, w której muchy były wcześniej mechanicznie zestresowane, a płeć i liczba respondentów nie wpływa na skuteczność unikania społecznego. Jednak duży wpływ ma pochodzenie genetyczne respondentów.
Oto kilka kluczowych kroków do pomyślnego przeprowadzenia tego eksperymentu: 1) zawsze przenoś muchy na 2 godziny przed eksperymentem i upewnij się, że nie zakłócasz ich otoczenia; 2) pr...

Celem tej metody jest łatwe określenie ilościowe nowego aspektu prostych zachowań społecznych u Drosophila melanogaster, niezależnych od zalotów i agresji.
Interakcje społeczne są kluczowe dla prawidłowego rozwoju i zdrowia jednostek w społeczeństwie, a także dla funkcjonalności grupy społecznej jako całości. Wysoka złożoność tych interakcji wymaga dużych rozmiarów prób i systemu, który pozwala na uproszczenie zachowania, ponieważ genetyczne i neuronalne podstawy zachowań społecznych są nadal słabo poznane. Drosophila melanogaster to potężny model genetyczny, który można wykorzystać do identyfikacji genetycznych i neuronalnych podstaw interakcji społecznych. Rzeczywiście, D. melanogaster ma repertuar złożonych zachowań społecznych, a niektóre bezpośrednie pomiary socjalizacji zostały już wykonane1-7. Jednak większość tych wysiłków koncentrowała się na stosunkowo złożonych zachowaniach społecznych, takich jak agresywneinterakcje3,6, różne aspekty zalotów3,8-12 oraz jak doświadczenie społeczne wpływa na inne zachowania, takie jak uczenie się lub rytm okołodobowy13-17. Ponadto wiele z tych testów opiera się na analizie złożonych wzorców interakcji grup much, wykorzystując śledzenie wideo i oprogramowanie komputerowe do analizy wynikającej z tego obfitości danych. Takie analizy są nieocenione i prowadzą do ważnych nowych spostrzeżeń, takich jak dynamika interakcji mucha-mucha w grupach7. Jednym z ograniczeń jest jednak niedostępność tych testów dla ogółu społeczeństwa oraz ograniczona wiedza na temat mechanizmów leżących u podstaw rozpoznawania innych. Innymi słowy, podstawa emisji sygnału przez jedną osobę i jej rozpoznania przez inną osobę jest nadal słabo poznana18.
Przeciwnie, muchy wykazują również proste zachowanie, unikanie kontaktów społecznych, gdzie osobniki oddalają się od sygnału emitowanego przez zestresowane muchy: D. melanogaster Stress Odorant lub dSO19. W teście wysokoprzepustowym zachowanie to można określić ilościowo jako unikanie sygnału stresu emitowanego przez inne muchy lub unikanie społeczne19. Muchy umieszcza się w aparacie T-labirynt i daje się im wybór, aby uniknąć fiolki zawierającej dSO. Za pomocą tego testu wykazano, że CO2 jest składnikiem dSO, a część obwodów nerwowych niezbędnych do odpowiedzi na CO2 została wypreparowana19.
Prezentowany tutaj test unikania społecznego jest koncepcyjnie podobny do prostych testów behawioralnych opracowanych w laboratorium Seymoura Benzera, które umożliwiły pokoleniom badaczy analizowanie złożonych zachowań20. Analizę unikania społecznego można przeprowadzić w sposób opłacalny przy użyciu testu T-labirynt, co pozwala na szersze badanie zachowań społecznych. Na przykład, korzystając z tego testu, wykazaliśmy niedawno, że różne genetyczne ryzyka autyzmu mają kontrastujące skutki w testach zachowań społecznych. Mutanty genu kandydującego na autyzm – neurobeachin21,22 – wykazują braki zarówno w przestrzeni społecznej (opisanej w innymmiejscu23), jak i w unikaniu kontaktów społecznych24. Sugeruje się również, że nieprawidłowa sygnalizacja dopaminergiczna odgrywa rolę w etiologii autyzmu u ludzi25,26. W przeciwieństwie do wyników uzyskanych za pomocą neurobeachiny, stwierdziliśmy, że na skuteczność unikania społecznego nie miał wpływu zwiększony lub obniżony poziom transportera monoaminy pęcherzykowej Drosophila (VMAT) w komórkach dopaminergicznych, chociaż przestrzeń społeczna była bezpośrednio skorelowana z tymi poziomami VMAT27. Kontrastujące wyniki uzyskane za pomocą neurobeachiny i VMAT podkreślają możliwość identyfikacji różnych form zachowań aspołecznych, a tym samym różnych podstawowych obwodów neuronalnych modulujących odpowiedź na inne.

<table><tbody><tr><td>Mikroskop stereoskopowy z zoomem&nbsp;</td><td>Nikon&nbsp; &nbsp;</td><td>SMZ-645</td><td>Każdy inny standardowy zakres do obsługi muchy będzie działał</td></tr><tr><td>Małe pędzle&nbsp;</td><td></td><td></td><td>do pchania much</td></tr><tr><td>Porowaty polietylen, 12" x 12" Arkusz</td><td>muchówek - Genesee</td><td>46-100</td><td>http://www.flystuff.com/ProductInfo.php?productID=46-100 Porowaty plastikowy arkusz do zimnego pudełka anestezjologicznego</td></tr><tr><td>Mini-alarm Timer/Stoper</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Długopisy</td><td></td><td></td><td></td>Sharpie</tr><tr><td>Taśma</td><td></td><td></td><td></td>klejąca</tr><tr><td>Mini vortex</td><td>Fisher</td><td>14-955-151&nbsp;</td><td>http://www.fishersci.com/ecomm/servlet/itemdetail Do mechanicznego mieszania much - każdy wir by zadziałał.</td></tr><tr><td>Corning Life Sciences DL No.:352017, Probówka Falcon; okrągłe dno; jednorazowe; bez zamknięcia, 14 ml; 17 x 100 mm</td><td>Fisher</td><td>14-959-8 &nbsp; &nbsp;</td><td>http://www.fishersci.com/ecomm/servlet/itemdetail?storeId=10652&langId=-1&catalogId=29104&productId=2771811&distype=0&highlightProductsItemsFlag=Y&fromSearch=1&searchType=PROD&hasPromo=0 Zatrzaskują się one na miejscu w wykonanym przez nas labiryncie T-labirynt i aparacie przeciwprądowym (patrz tekst),</td></tr> <tr><td>wacikach</td><td></td><td></td><td>, aby zamknąć fiolki po eksperymencie.</td></tr><tr><td>Potrójna deska i biała osłona</td><td></td><td></td><td>ławki zapewniają białe tło i jednorodne światło.</td></tr>biała <tr><td>podkładka</td><td></td><td></td> pod <td></td></tr> <tr><td></td><td></td><td></td><td>ławkę</td></tr> do dowolna podkładka pod mysz działa.<tr><td>Duża tkanina</td><td></td><td></td><td>do zakrycia aparatu przeciwprądowego w odpowiedzi fototaksji.</td></tr><tr><td>Światło zimne białe&nbsp;</td><td>Home Depot</td><td>1000516563</td><td>http://www.homedepot.ca/product/illume-26-fluorescent-plug-in-linear/911423 każde podobne światło liniowe z żarówką fluorescencyjną o chłodnej bieli o mocy 13-15 W będzie działać</td></tr></tbody></table>

prosty test do ilościowego oznaczania unikania społecznego u drosophila melanogaster

Straightforward Assay for Quantification of Social Avoidance in Drosophila melanogaster

Drosophila melanogaster to wyłaniający się model do badania różnych aspektów interakcji społecznych. Na przykład muchy unikają obszarów wcześniej zajmowanych przez zestresowane osobniki tego samego gatunku z powodu substancji zapachowej uwalnianej podczas stresu, znanej jako nagły zapach Drosophila (dSO). Dzięki zastosowaniu aparatu T-maze można określić ilościowo unikanie dSO przez muchy reagujące w bardzo przystępnym i solidnym teście. Warunki niezbędne do uzyskania dobrych wyników przedstawiono tutaj. Stresujące doświadczenie jest konieczne, aby muchy wyemitowały dSO, a także wystarczająca ilość much emitujących, aby wywołać silną reakcję unikania obecności dSO. Podłoże genetyczne, ale nie wielkość grupy, silnie zmieniło unikanie dSO przez muchy reagujące. Canton-S i Elwood wykazują wyższą wydajność w unikaniu dSO niż szczepy Oregon i Samarkanda. Ten test behawioralny pozwoli na identyfikację mechanizmów leżących u podstaw tego zachowania społecznego oraz ocenę wpływu genów i warunków środowiskowych zarówno na emisję, jak i unikanie dSO. Taki test może być włączony do baterii prostych testów diagnostycznych stosowanych do identyfikacji braków społecznych mutantów lub warunków środowiskowych będących przedmiotem zainteresowania.

Test unikania społecznego jest wiarygodnym badaniem ilościowo określającym zdolność Drosophila melanogaster do rozpoznawania sygnału stresu (dSO) emitowanego przez inne muchy, co pozwala na ocenę jednego z aspektów interakcji społecznych. Badanie przeprowadza się przy użyciu aparatury powszechnie stosowanej w różnych testach behawioralnych, znanej jako labirynt w kształcie litery T (T-maze), która stawia przed muchami wybór między dwiema różnymi opcjami — lewą lub prawą19,28-31. W tym przypadku efekty...

Tutaj prezentujemy protokół do ilościowego określenia unikania osób zestresowanych. Ten paradygmat jest potężny, ale przyjazny dla użytkownika i może być wykorzystany do oceny wpływu genów i środowiska na jeden rodzaj interakcji społecznych u Drosophila melanogaster.

Prosty test do ilościowego oznaczania unikania społecznego u Drosophila melanogaster

Drosophila melanogaster is an emerging model to study different aspects of social interactions. For example, flies avoid areas previously occupied by ...

Celem tej procedury jest ilościowe określenie reakcji much na sygnał społeczny emitowany przez zestresowane osobniki. Osiąga się to poprzez pierwsze zebranie, reakcję i emiter muchy nie później niż dwa dni przed eksperymentem. Drugim krokiem jest przeniesienie zarówno muchy emitera, jak i respondenta do świeżych fiolek na dwie godziny przed eksperymentem i pozwolenie im przyzwyczaić się do kontrolowanego środowiskowo pomieszczenia, w którym zostanie przeprowadzony test.Następnie muchy reagujące są umieszczane w TMA i mają wybór między fiolką, w której muchy zostały wcześniej zestresowane, zawierającą w ten sposób środek zapachowy Drosophila stress odor, a świeżą fiolką, ostatnim krokiem jest policzenie liczby much reagujących w świeżej fiolce w fiolce DSO i w windzie w celu ilościowego określenia ich reakcji na DSO. Ostatecznie labirynt T służy do pomiaru unikania przez muchy sygnału stresu społecznego, w szczególności zapachu stresu gilo. Po raz pierwszy wpadłem na pomysł tej metody, gdy byłem na stażu podoktorskim w Caltech.W tym czasie Greg Sue i jego adiunkt David Anderson zajmowali się badaniem strachu lub unikania kontaktów społecznych w Phyla, ale nie istniał żaden test na to. Skontaktowali się ze mną, ponieważ wykonywałem wiele testów behawioralnych w laboratorium marki S i podczas wykonywania eksperymentów z taksówką fotograficzną i uczeniem węchowym zauważyłem, że muchy były przyciągane do fiolek, w których inne muchy spędziły trochę niezakłóconego czasu, unikając fiolek, w których muchy były w tym czasie zestresowane porażeniem prądem. Biskup. Demonstracja tej metody ma kluczowe znaczenie, ponieważ eksperymentalny proces testu unikania społecznego wymaga pewnej praktyki, aby być szybkim i skutecznym w przenoszeniu biosu bez utraty much lub DSL.Główną zaletą tej techniki badania interakcji społecznych w porównaniu z istniejącymi metodami, takimi jak wspomagane komputerowo śledzenie wideo, jest to, że jest to test łatwy do opanowania i wdrożenia, ale bardzo skuteczny w ilościowym określaniu unikania społecznego przez osoby zestresowane. Aby rozpocząć eksperyment, wytnij porowaty arkusz polietylenu, aby pokryć pudełko o wymiarach 12,7 cm na 10,2 cm. Napełnij pudełko pokruszonym lodem i przykryj je arkuszem, aby uzupełnić aparat do znieczulenia na zimno Drosophila.Eksperyment przeprowadź na ławce przykrytej białym pokrowcem na ławkę i tablicą suchościeralną z przodu, aby zapewnić jednorodne warunki oświetleniowe. Następnie przygotuj aparat kolegów z drużyny aspiratora muchy wirowej, termometr i minutnik. Jeden do dwóch dni przed eksperymentem znieczulenie jelita grubego muchy.Przenieś muchy za pomocą lejka do 50-mililitrowej rurki i umieść rurkę w izolowanym wiadrze na lód pod poziomem lodu. Poczekaj pięć minut, aż muchy zapadną w chłodną śpiączkę. Następnie przenieś muchy na porowaty arkusz polietylenu w temperaturze pokojowej i posortuj muchy ratownicze pod mikroskopem stereoskopowym.Oddziel trzy- do siedmiodniowych samców much od samic much i utrzymuj je w grupie 40 delikatnie zbierających muchy emiterowe Canton o mieszanej płci. Za pomocą aspiratora do ust pozwól muchom. Jedna noc rekonwalescencji, aby zminimalizować mylący wpływ kolekcji na zachowanie.Następnie otwórz torbę z fiolkami testowymi, aby zastąpić stęchłe plastikowe powietrze w torbie świeżym powietrzem. Przed eksperymentem upewnij się, że temperatura w pomieszczeniu testowym wynosi 25 stopni Celsjusza, że w pomieszczeniu jest równomiernie oświetlone, a wilgotność jest większa niż 30%Dwie godziny przed eksperymentem przenieś muchy odpowiadające i emitujące do fiolek ze świeżą żywnością i pozwól muchom dostosować się do środowiska na stole, na którym zostanie przeprowadzony eksperyment. Umieść labirynt herbaciany na podkładce do ubijania i dokręć zacisk śrubowy, aby winda była stabilna.Następnie przenieś muchy z odpowiedzią na test do świeżej fiolki testowej i zatrzaśnij fiolkę zawierającą muchy z odpowiedzią na labirynt herbaty. Następnie pochyl urządzenie do labiryntu herbacianego i postukaj nim w matę do, aby muszki owocówki wpadły do windy. Przesuń górną część windy w dół, aby umieścić muchy między górną a dolną sekcją TMA i upewnij się, że winda znajduje się powyżej wybranego punktu, aby zapobiec ucieczce much, podczas gdy muchy reagujące dostosowują się do nowego środowiska.Umieść muchy emiterowe w świeżej fiolce testowej i przykryj ją kawałkiem bawełny. W ten sposób należy zamieszać fiolkę na mini wirze. Muchy będą emitować DSO, przenoszą muchy do fiolki z jedzeniem i szybko umieszczają fiolkę wypełnioną DSO po jednej z dwóch stron zespołu.Alternatywna strona umieszczenia dla fiolki wypełnionej DSO. W każdym nowym przebiegu umieść świeżą fiolkę testową po drugiej stronie zespołu A, a następnie całkowicie opuść windę, aby muszki owocówki mogły wybrać między świeżą fiolką testową a fiolką wypełnioną DSO. Natychmiast uruchom timer.Po jednej minucie przesuń windę w górę, aby oddzielić muchy w świeżej fiolce i fiolce DSO od much utkniętych w windzie. Policz liczbę much w każdej fiolce i w windzie. Powtórz to.Dla każdego genotypu i/lub schorzenia, wielkość grupy muchówek reagujących nie ma wpływu na unikanie przez nie DSO. Po przeprowadzeniu eksperymentu na zakresie od 10 do 80 much, test T nie wykazał istotności statystycznej wśród wskaźników wydajności lub PI muszek odpowiadających. Liczba much emitujących wpływa na unikanie much przez DSO, jak pokazano na tym wykresie, który przedstawia różne próby.Używając od 10 do 160 emiterów każdy. Nadal wykrywano znaczne unikanie tylko u 10 zestresowanych much. Wybór, czas i tło genetyczne muszek owocowych wpływają na odpowiedź na DSO, jak pokazano na tym wykresie, który ilustruje reakcję szczepów Canton i Elwood.Oba genotypy wykazują silniejsze unikanie DSO niż Oregon i niektóre szczepy markin po jego rozwoju. Technika ta utorowała drogę naukowcom z dziedziny neurobiologii do zidentyfikowania obwodu nerwowego leżącego u podstaw percepcji i unikania CO2, jednego ze składników DSO. Wykorzystano go również do badania roli genów kandydujących na autyzm w wpływaniu na zachowania społeczne.W Joseph Ano Gaster. Po opanowaniu technikę tę można wykonać w czasie krótszym niż pięć minut na powtórzenie. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak przeprowadzić test unikania kontaktów społecznych, począwszy od przygotowania emitera i muchy reagującego przed ich przetestowaniem, aż po wygenerowanie biografii pola DSL i manipulację kolegami z drużyny, aby zapewnić ratownikom wybór binarny.

straightforward-assay-for-quantification-social-avoidance-drosophila

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neuronauka

W niniejszym artykule wideo opisujemy nową metodę umożliwiającą tworzenie gradientów substancji zapachowych o stabilnych i kontrolowalnych geometriach. Krótko ilustrujemy, w jaki sposób gradienty te mogą być wykorzystane do wykrywania wad węchu (całkowitej i częściowej anosmii) oraz do badania bardziej subtelnych cech zachowań chemotaktycznych.

Wysokorozdzielczy pomiar zachowań sterowanych węchem u larw Drosophila

Testy behawioralne służące do pomiaru funkcji lokomocyjnych, zdolności uczenia się i pamięci u Drosophila.

Ocena deficytów motorycznych, uczenia się i pamięci w modelach neurodegeneracji u Drosophila

Drosophila melanogaster to genetycznie i behawioralnie podatny system modelowy, który od ponad wieku jest wykorzystywany do zrozumienia molekularnych i komórkowych podstaw wielu ważnych procesów biologicznych 1. Drosophila została szeroko wykorzystana w celu uzyskania wglądu w genetyczne podstawy zachowania much.

Metody oceny zachowania Drosophila

Ten film opisuje prostą metodę ilościowego oznaczania lokomocji muchy i pokazuje przeprowadzony test wspinaczki. Test wspinaczki muchowej jest ogólnym testem funkcji motorycznych, który opiera się na negatywnej odpowiedzi geotaksji.

Test wspinaczki muchowej: metoda testowania ogólnej lokomocji u Drosophila melanogaster

W tym artykule wideo opisujemy zautomatyzowany test do pomiaru wpływu głodu lub sytości na zależne od węchu zachowanie związane z poszukiwaniem pokarmu u dorosłej muszki owocowej Drosophila melanogaster.

Test pojedynczej muchy na zachowania żerowe u Drosophila

Wpływ genów i środowiska na przestrzeń społeczną Drosophila melanogaster można określić ilościowo za pomocą potężnego, ale prostego paradygmatu analitycznego. Pokazujemy tutaj różne czynniki, które mogą wpływać na tę przestrzeń społeczną, a zatem muszą być brane pod uwagę przy projektowaniu eksperymentów w tym paradygmacie.

Warunki wpływające na przestrzeń społeczną u Drosophila melanogaster

Ten protokół opisuje test o wysokiej przepustowości do testowania preferencji składania jaj przez Drosophila melanogaster w rozdzielczości pojedynczego zwierzęcia.  Ten test zapewnia prostą, wydajną i skalowalną platformę do identyfikacji genów i składników obwodów, które kontrolują prosty proces podejmowania decyzji.

Wysokoprzepustowy test do badania preferencji składania jaj u poszczególnych Drosophila melanogaster

Ten protokół wprowadza test plamki świetlnej do zbadania fototaktycznego zachowania larw Drosophila. W tym teście plamka świetlna jest generowana jako stymulacja światłem, a proces unikania światła larwalnego jest rejestrowany przez system obrazowania oparty na świetle podczerwonym.

Test punktowy świetlny do analizy fototaksji larw Drosophila

Ta praca opisuje prosty paradygmat behawioralny, który pozwala na analizę awersyjnego uczenia się asocjacyjnego u dorosłych muszek owocowych. Metoda opiera się na tłumieniu wrodzonego negatywnego zachowania geotaksji ze względu na związek powstały między określonym kontekstem środowiskowym a porażeniem prądem.

Drosophila Pasywne zachowanie unikające jako nowy paradygmat badania awersyjnego uczenia się awersyjnego

Obecny protokół ocenia aktywność lokomotoryczną Drosophila poprzez śledzenie i analizowanie ruchu much na ręcznie wykonanej arenie za pomocą oprogramowania typu open source Fiji, kompatybilnego z wtyczkami do segmentacji pikseli każdej klatki na podstawie nagrania wideo w wysokiej rozdzielczości w celu obliczenia parametrów prędkości, odległości itp.

Prosta technika oznaczania aktywności lokomotorycznej u Drosophila

Zaburzenie ze spektrum autyzmu (ASD) wiąże się z zaburzeniami zachowań społecznych i komunikacyjnych oraz pojawieniem się powtarzających się zachowań. W celu zbadania wzajemnych relacji między genami ASD a deficytami behawioralnymi w modelu Drosophila, w tym artykule opisano pięć paradygmatów behawioralnych do oceny odstępów społecznych, agresji, zalotów, pielęgnacji i zachowań habituacyjnych.

Paradygmaty oceny behawioralnej w modelu zaburzenia ze spektrum autyzmu Drosophila

Poznaj prosty test ilościowego oznaczania unikania społecznego u Drosophila melanogaster za pomocą labiryntu T. Ta metoda pozwala badać wpływ czynników genetycznych i środowiskowych na zachowanie.

Prosty test do ilościowego oznaczania unikania społecznego u Drosophila melanogaster

Przeglądaj więcej filmów