-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Advanced Biology
Mysia elektroporacja w macicy
Mysia elektroporacja w macicy
JoVE Science Education
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Neuroscience
Murine In Utero Electroporation

1.14: Mysia elektroporacja w macicy

21,475 Views
08:05 min
April 30, 2023
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Elektroporacja in utero jest ważną techniką do badania mechanizmów molekularnych, które kierują proliferacją, różnicowaniem, migracją i dojrzewaniem komórek podczas rozwoju neuronalnego. Elektroporacja umożliwia szybkie i ukierunkowane dostarczanie materiału do komórek poprzez wykorzystanie impulsów elektrycznych do tworzenia przejściowych porów w błonach komórkowych. Chociaż elektroporacja była tradycyjnie stosowana w badaniach in vitro, postęp naukowy rozszerzył jej zastosowanie na nienaruszone narządy, takie jak te znajdujące się w zarodkach myszy rozwijających się w macicy.

Ten film przedstawi kluczowe zasady elektroporacji in utero, a także przejrzy podstawowe techniki chirurgiczne wymagane do uzyskania dostępu do rozwijających się zarodków u ciężarnego gryzonia. Szczegółowe informacje na temat etapów iniekcji i elektroporacji znajdują się wraz z ważnymi kwestiami dotyczącymi kierowania dostarczania genów do określonych regionów mózgu. Na koniec przedstawiono neurobiologiczne zastosowania elektroporacji in utero, takie jak badanie, w jaki sposób określone geny przyczyniają się do rozwoju neuronów i jak tworzą się połączenia między rozwijającymi się neuronami.

Procedure

Elektroporacja in utero jest kluczową techniką badania mechanizmów molekularnych, które kierują rozwojem neurologicznym. Poprzez wstrzykiwanie DNA w celu zmiany ekspresji genów w określonych regionach rozwijającego się mózgu gryzonia, naukowcy mogą badać proliferację, różnicowanie, migrację i dojrzewanie komórek nerwowych w kontekście ich naturalnego środowiska.

W tym filmie przedstawimy kluczowe zasady elektroporacji in utero, podstawowe informacje o tym, jak wykonywać tę technikę i jej zastosowania w badaniach neurobiologicznych.

Zanim zagłębimy się w to, jak wykonać tę procedurę, przyjrzyjmy się najpierw kilku zasadom elektroporacji. Ta procedura wykorzystuje impulsy elektryczne, które tworzą przejściowe pory w błonach komórkowych, umożliwiając DNA wejście do komórki. Ponieważ ujemnie naładowane DNA będzie przemieszczać się w kierunku elektrody dodatniej, różne populacje komórek mogą być celowane w zależności od położenia pola elektrycznego.

Chociaż elektroporacja była tradycyjnie stosowana w badaniach in vitro, postęp naukowy rozszerzył jej zastosowanie na nienaruszone narządy, w tym te znajdujące się w zarodkach myszy rozwijających się w macicy.

Elektroporacja in utero, w przeciwieństwie do hodowli komórkowych lub technik ex vivo, ma tę zaletę, że transfekowane komórki będą nadal narażone na wszystkie sygnały fizjologiczne, które kierują normalnym rozwojem. Jest to szczególnie ważne w mózgu, gdzie struktury takie jak aksony wymagają wskazówek od innych typów komórek, aby prawidłowo się rozwijać.

Rozwój mózgu w szczególności obejmuje zaprogramowaną serię zdarzeń proliferacji i migracji, co oznacza, że różne warstwy tkanki mogą być celowane w oparciu o czas elektroporacji.

Wreszcie, dostępność różnych typów elektrod umożliwia naukowcom dostęp zarówno do obszarów w pobliżu powierzchni mózgu, jak i do głębszych obszarów. Elektrody łopatkowe są używane do celowania w powierzchowne części mózgu, takie jak kora mózgowa i hipokamp, podczas gdy mniejsze elektrody igłowe są używane do celowania w głębokie struktury, takie jak wzgórze i podwzgórze.

Teraz, gdy omówiliśmy kilka podstawowych zasad tej techniki, usuńmy nasze przygotowania z drogi, abyśmy mogli zagłębić się w procedurę chirurgiczną i elektroporację in utero.

Najpierw wysterylizuj wszystkie narzędzia i przetrzyj obszar operacyjny 70% etanolem. Następnie przygotuj roztwór do wstrzykiwań, rozpuszczając plazmidowe DNA w sterylnym PBS zawierającym 0,1% Fast Green. Fast Green dodaje się, aby umożliwić wizualizację roztworu do wstrzykiwań w zarodku. Wreszcie, za pomocą ściągacza do igieł, należy stworzyć ultracienką igłę, aby zmniejszyć utratę płynu owodniowego i wynikającą z tego śmiertelność płodu.

Teraz, gdy mamy już wszystko przygotowane, przejdźmy do podstawowych kroków elektroporacji tkanki mózgowej u rozwijających się gryzoni. Zacznij od znieczulenia ciężarnej matki za pomocą 5% izofluranu, a następnie przenieś go do rurki respiratora, dostarczając 2,25% izofluranu przez cały zabieg. Następnie, w celu złagodzenia bólu pooperacyjnego, podaj podskórnie środek przeciwbólowy, taki jak buprenorfina. Następnie ogol brzuch i wysterylizuj miejsce nacięcia.

Aby chirurgicznie odsłonić macicę, wykonaj pionowe nacięcie wzdłuż linii środkowej skóry i za pomocą nożyczek przetnij otrzewną. Aby zapobiec wysychaniu zarodków, przykryj otwór sterylną gazą nasączoną solą fizjologiczną. Następnie delikatnie wyciągnij łańcuch embrionalny z jamy brzusznej, upewniając się, że zarodki są mokre, przykrywając sterylną, wstępnie podgrzaną solą fizjologiczną.

Za pomocą mikroskopu preparacyjnego zidentyfikuj zarodki odpowiednio ustawione, aby zapewnić łatwy dostęp do mózgu. Za pomocą palców lub kleszczy ustabilizuj głowę zarodka i wstrzyknij roztwór DNA przez ścianę macicy do mózgu. Umieść elektrodę po obu stronach głowy, tak aby elektroda dodatnia była skierowana w kierunku, w którym chcesz elektroporować DNA. Gdy wszystkie odpowiednio ustawione zarodki zostaną poddane elektroporacji, ostrożnie umieść róg macicy z powrotem w jamie brzusznej.

Przed zamknięciem nacięcia dodaj do jamy 2-3 ml ciepłej soli fizjologicznej. Zszyj otrzewną za pomocą wchłanialnych szwów, a następnie zamknij skórę za pomocą zszywek. Na koniec przenieś mysz do klatki z poduszką grzewczą i monitorem.

Teraz, gdy omówiliśmy, jak wykonywać elektroporację in utero, przyjrzyjmy się niektórym dalszym zastosowaniom tej techniki.

Elektroporacja in utero jest użytecznym narzędziem do badania, w jaki sposób określone geny przyczyniają się do rozwoju neuronów. Konstrukty elektroporowane mogą kierować nadekspresją białek typu dzikiego lub zmutowanego lub całkowicie blokować ekspresję białek. Fenotypy neurologiczne można następnie ocenić na poziomie mikroskopowym lub organizmu. Na przykład, ci eksperymentatorzy ustalili, że przejściowa nadekspresja genu związanego ze schizofrenią, DISC-1 w rozwijającym się mózgu myszy, powodowała nadwrażliwość na amfetaminę w późniejszym życiu.

Elektroporacja in utero może być również przydatna do wizualizacji określonych populacji komórek i połączeń, które tworzą, dostarczając sekwencje kodujące białka fluorescencyjne do tkanki nerwowej. Na przykład, eksperymentatorzy ci elektropowalili gen białka zielonej fluorescencji do siatkówki E13,5, aby zbadać komórki zwojowe siatkówki lub RGC, które przekazują informacje wizualne z oka do mózgu. Badanie siatkówki w E18.5 pokazuje, w jaki sposób ta technika może być wykorzystana do śledzenia ścieżki aksonu RGC przez nerw wzrokowy, skrzyżowanie wzrokowe i przewód wzrokowy.

Wreszcie, wiele ważnych wydarzeń w rozwoju neuronalnym ma miejsce po urodzeniu, inspirując naukowców do opracowania zmodyfikowanej techniki zwanej elektroporacją in vivo. Procedura ta przebiega zgodnie z tymi samymi podstawowymi krokami, co elektroporacja macicy, ale zwykle jest wykonywana w ciągu pierwszych kilku dni po porodzie. Poporodowa manipulacja genetyczna jest szczególnie przydatna do badania typów komórek urodzonych później, takich jak te znajdujące się w pokazanej tutaj opuszce węchowej.

Właśnie obejrzałeś film JoVE na temat elektroporacji w macicy. Ten film zawierał kluczowe zasady i podstawowy przegląd tego, jak wykonywać elektroporację w macicy, a także kilka dalszych zastosowań, które pozwalają naukowcom badać mechanizmy molekularne, które kierują rozwojem neurologicznym.

Dzięki za oglądanie!

Transcript

Elektroporacja in utero jest kluczową techniką badania mechanizmów molekularnych, które kierują rozwojem neurologicznym. Poprzez wstrzykiwanie DNA w celu zmiany ekspresji genów w określonych regionach rozwijającego się mózgu gryzonia, naukowcy mogą badać proliferację, różnicowanie, migrację i dojrzewanie komórek nerwowych w kontekście ich naturalnego środowiska.

W tym filmie przedstawimy kluczowe zasady elektroporacji in utero, podstawowe informacje o tym, jak wykonywać tę technikę i jej zastosowania w badaniach neurobiologicznych.

Zanim zagłębimy się w to, jak wykonać tę procedurę, przyjrzyjmy się najpierw kilku zasadom elektroporacji. Ta procedura wykorzystuje impulsy elektryczne, które tworzą przejściowe pory w błonach komórkowych, umożliwiając DNA wejście do komórki. Ponieważ ujemnie naładowane DNA będzie przemieszczać się w kierunku elektrody dodatniej, różne populacje komórek mogą być celowane w zależności od położenia pola elektrycznego.

Chociaż elektroporacja była tradycyjnie stosowana w badaniach in vitro, postęp naukowy rozszerzył jej zastosowanie na nienaruszone narządy, w tym te znajdujące się w zarodkach myszy rozwijających się w macicy.

Elektroporacja in utero, w przeciwieństwie do hodowli komórkowych lub technik ex vivo, ma tę zaletę, że transfekowane komórki będą nadal narażone na wszystkie sygnały fizjologiczne, które kierują normalnym rozwojem. Jest to szczególnie ważne w mózgu, gdzie struktury takie jak aksony wymagają wskazówek od innych typów komórek, aby prawidłowo się rozwijać.

Rozwój mózgu w szczególności obejmuje zaprogramowaną serię zdarzeń proliferacji i migracji, co oznacza, że różne warstwy tkanki mogą być celowane w oparciu o czas elektroporacji.

Wreszcie, dostępność różnych typów elektrod umożliwia naukowcom dostęp zarówno do obszarów w pobliżu powierzchni mózgu, jak i do głębszych obszarów. Elektrody łopatkowe są używane do celowania w powierzchowne części mózgu, takie jak kora mózgowa i hipokamp, podczas gdy mniejsze elektrody igłowe są używane do celowania w głębokie struktury, takie jak wzgórze i podwzgórze.

Teraz, gdy omówiliśmy kilka podstawowych zasad tej techniki, usuńmy nasze przygotowania z drogi, abyśmy mogli zagłębić się w procedurę chirurgiczną i elektroporację in utero.

Najpierw wysterylizuj wszystkie narzędzia i przetrzyj obszar operacyjny 70% etanolem. Następnie przygotuj roztwór do wstrzykiwań, rozpuszczając plazmidowe DNA w sterylnym PBS zawierającym 0,1% Fast Green. Fast Green dodaje się, aby umożliwić wizualizację roztworu do wstrzykiwań w zarodku. Wreszcie, za pomocą ściągacza do igieł, należy stworzyć ultracienką igłę, aby zmniejszyć utratę płynu owodniowego i wynikającą z tego śmiertelność płodu.

Teraz, gdy mamy już wszystko przygotowane, przejdźmy do podstawowych kroków elektroporacji tkanki mózgowej u rozwijających się gryzoni. Zacznij od znieczulenia ciężarnej matki za pomocą 5% izofluranu, a następnie przenieś go do rurki respiratora, dostarczając 2,25% izofluranu przez cały zabieg. Następnie, w celu złagodzenia bólu pooperacyjnego, podaj podskórnie środek przeciwbólowy, taki jak buprenorfina. Następnie ogol brzuch i wysterylizuj miejsce nacięcia.

Aby chirurgicznie odsłonić macicę, wykonaj pionowe nacięcie wzdłuż linii środkowej skóry i za pomocą nożyczek przetnij otrzewną. Aby zapobiec wysychaniu zarodków, przykryj otwór sterylną gazą nasączoną solą fizjologiczną. Następnie delikatnie wyciągnij łańcuch embrionalny z jamy brzusznej, upewniając się, że zarodki są mokre, przykrywając sterylną, wstępnie podgrzaną solą fizjologiczną.

Za pomocą mikroskopu preparacyjnego zidentyfikuj zarodki odpowiednio ustawione, aby zapewnić łatwy dostęp do mózgu. Za pomocą palców lub kleszczy ustabilizuj głowę zarodka i wstrzyknij roztwór DNA przez ścianę macicy do mózgu. Umieść elektrodę po obu stronach głowy, tak aby elektroda dodatnia była skierowana w kierunku, w którym chcesz elektroporować DNA. Gdy wszystkie odpowiednio ustawione zarodki zostaną poddane elektroporacji, ostrożnie umieść róg macicy z powrotem w jamie brzusznej.

Przed zamknięciem nacięcia dodaj do jamy 2-3 ml ciepłej soli fizjologicznej. Zszyj otrzewną za pomocą wchłanialnych szwów, a następnie zamknij skórę za pomocą zszywek. Na koniec przenieś mysz do klatki z poduszką grzewczą i monitorem.

Teraz, gdy omówiliśmy, jak wykonywać elektroporację in utero, przyjrzyjmy się niektórym dalszym zastosowaniom tej techniki.

Elektroporacja in utero jest użytecznym narzędziem do badania, w jaki sposób określone geny przyczyniają się do rozwoju neuronów. Konstrukty elektroporowane mogą kierować nadekspresją białek typu dzikiego lub zmutowanego lub całkowicie blokować ekspresję białek. Fenotypy neurologiczne można następnie ocenić na poziomie mikroskopowym lub organizmu. Na przykład, ci eksperymentatorzy ustalili, że przejściowa nadekspresja genu związanego ze schizofrenią, DISC-1 w rozwijającym się mózgu myszy, powodowała nadwrażliwość na amfetaminę w późniejszym życiu.

Elektroporacja in utero może być również przydatna do wizualizacji określonych populacji komórek i połączeń, które tworzą, dostarczając sekwencje kodujące białka fluorescencyjne do tkanki nerwowej. Na przykład, eksperymentatorzy ci elektropowalili gen białka zielonej fluorescencji do siatkówki E13,5, aby zbadać komórki zwojowe siatkówki lub RGC, które przekazują informacje wizualne z oka do mózgu. Badanie siatkówki w E18.5 pokazuje, w jaki sposób ta technika może być wykorzystana do śledzenia ścieżki aksonu RGC przez nerw wzrokowy, skrzyżowanie wzrokowe i przewód wzrokowy.

Wreszcie, wiele ważnych wydarzeń w rozwoju neuronalnym ma miejsce po urodzeniu, inspirując naukowców do opracowania zmodyfikowanej techniki zwanej elektroporacją in vivo. Procedura ta przebiega zgodnie z tymi samymi podstawowymi krokami, co elektroporacja macicy, ale zwykle jest wykonywana w ciągu pierwszych kilku dni po porodzie. Poporodowa manipulacja genetyczna jest szczególnie przydatna do badania typów komórek urodzonych później, takich jak te znajdujące się w pokazanej tutaj opuszce węchowej.

Właśnie obejrzałeś film JoVE na temat elektroporacji w macicy. Ten film zawierał kluczowe zasady i podstawowy przegląd tego, jak wykonywać elektroporację w macicy, a także kilka dalszych zastosowań, które pozwalają naukowcom badać mechanizmy molekularne, które kierują rozwojem neurologicznym.

Dzięki za oglądanie!

Explore More Videos

Myszy elektroporacja in utero neurorozwój mechanizmy molekularne ekspresja genów mózg gryzoni proliferacja różnicowanie migracja dojrzewanie komórki nerwowe środowisko naturalne zasady elektroporacji iniekcja DNA błony komórkowe pozycjonowanie pola elektrycznego nienaruszone narządy zarodki myszy sygnały fizjologiczne rozwój aksonów

Related Videos

Wprowadzenie do neurofizjologii

Wprowadzenie do neurofizjologii

Neuroscience

97.7K Wyświetlenia

Elektrofizjologia zacisku krosowego

Elektrofizjologia zacisku krosowego

Neuroscience

97.5K Wyświetlenia

Obrazowanie wapnia w neuronach

Obrazowanie wapnia w neuronach

Neuroscience

96.6K Wyświetlenia

Wprowadzenie do neuroanatomii

Wprowadzenie do neuroanatomii

Neuroscience

63.9K Wyświetlenia

Chirurgia stereotaktyczna gryzoni

Chirurgia stereotaktyczna gryzoni

Neuroscience

153.4K Wyświetlenia

Barwienie histologiczne tkanki nerwowej

Barwienie histologiczne tkanki nerwowej

Neuroscience

159.5K Wyświetlenia

Wprowadzenie do neuronauki behawioralnej

Wprowadzenie do neuronauki behawioralnej

Neuroscience

47.9K Wyświetlenia

Wodny labirynt Morrisa

Wodny labirynt Morrisa

Neuroscience

53.2K Wyświetlenia

fMRI: Funkcjonalny rezonans magnetyczny

fMRI: Funkcjonalny rezonans magnetyczny

Neuroscience

60.0K Wyświetlenia

Wprowadzenie do neuronauki komórkowej i molekularnej

Wprowadzenie do neuronauki komórkowej i molekularnej

Neuroscience

74.2K Wyświetlenia

Pierwotne kultury neuronalne

Pierwotne kultury neuronalne

Neuroscience

68.2K Wyświetlenia

Metody transfekcji neuronalnej

Metody transfekcji neuronalnej

Neuroscience

16.6K Wyświetlenia

Hodowla eksplantatów tkanki nerwowej

Hodowla eksplantatów tkanki nerwowej

Neuroscience

23.7K Wyświetlenia

Wprowadzenie do neurobiologii rozwojowej

Wprowadzenie do neurobiologii rozwojowej

Neuroscience

40.8K Wyświetlenia

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code