21 listopada 2014
Brakuje dostępu do wiarygodnych modeli do badania interakcji naczyniowych krwi u ludzi. Przedstawiamy model in vitro hodowanych pierwotnych ludzkich komórek śródbłonka w połączeniu z ludzką krwią pełną w celu zbadania interakcji komórkowych zarówno we krwi (ELISA), jak i w przedziale naczyniowym (mikroskopia).
Ogólnym celem tej procedury jest zbadanie interakcji między krwią a komórkami śródbłonka przy użyciu nowego testu komory śródbłonka krwi. Osiąga się to poprzez pobranie krwi od zdrowego ochotnika za pomocą nakłucia żyły w systemie otwartym. W drugim etapie krew jest ostrożnie nakładana na komory krwionośne pokryte powierzchnią heparyny w połączeniu z szkiełkami posianymi do hodowli komórek śródbłonka.
Następnie te komory komórek śródbłonka krwi są delikatnie obracane, aby ułatwić interakcję między krwią a komórkami śródbłonka. Ostatecznie interakcje międzykomórkowe między krwią a komórkami śródbłonka i wynikającą z tego produkcję kompleksu trombiny antytrombinowej można ocenić odpowiednio za pomocą mikroskopii immunofluorescencyjnej i Elizy. Główną zaletą tej techniki w porównaniu z istniejącymi metodami, takimi jak te wykorzystujące modele zwierzęce, jest to, że tutaj system modelu ludzkiego może być wykorzystany do zbadania choroby naczyniowej przed rozpoczęciem eksperymentu.
Połącz igłę podskórną o rozmiarze 18 z kawałkiem silikonowej rurki pokrytej heparyną o średnicy wewnętrznej o średnicy wewnętrznej. Powierzchnie z tworzywa sztucznego są pokryte heparyną, aby zapobiec niespecyficznej aktywacji krzepnięcia. Na przykład na tym zdjęciu w tej niepokrytej komorze wyraźnie widać skrzep.
Po 30 minutach kontaktu z krwią, potraktowanie komory powierzchnią heparyny chroni krew przed niekontrolowaną aktywacją, zapewniając, że wyniki są spowodowane interakcjami komórek śródbłonka z krwią. Dopiero po podłączeniu rurki ostrożnie pobrać próbkę krwi od zdrowego dawcy przez nakłucie dożylne w systemie otwartym do 50-mililitrowej probówki pokrytej powierzchniowo heparyną. Uzupełnij pobraną krew niefrakcjonowaną heparyną, aby osiągnąć końcowe stężenie 0,75 IU na mililitr i odwróć probówkę dwa do trzech razy w celu delikatnego wymieszania.
W celu analizy początkowego stężenia białka we krwi, ostrożnie wymieszaj jeden mililitr krwi na probówkę w mikroprobówkach wirówkowych zawierających 30 mikrolitrów 10 milimolowych K trzy EDTA i umieść probówki na lodzie. Następnie użyj końcówki pipety pokrytej powierzchniowo heparyną, aby przenieść 1,5 mililitra krwi do każdej komory komórek śródbłonka krwi pokrytej heparyną, uważając, aby krew płynęła powoli i bez tworzenia pęcherzyków, aby uniknąć aktywacji. Następnie usuń plastikowe ścianki ze szkiełek do hodowli komórek śródbłonka zgodnie z instrukcjami producenta i delikatnie umyj komórki śródbłonka.
W przypadku PBS usuwamy jak najwięcej popłuczyny z komórek, nie dopuszczając do wyschnięcia kultur i umieszczamy szkiełka na komorach krwionośnych tak, aby komórki były skierowane w stronę krwi. Następnie za pomocą plastikowych zjeżdżalni dla dodatkowego wsparcia. Aby uniknąć pęknięcia szkiełek do hodowli komórkowych, umieść zacisk wokół każdej komory komórek śródbłonka krwi, aby zabezpieczyć szkiełka.
Teraz obracaj komory na obracającym się kole w łaźni wodnej o temperaturze 37 stopni Celsjusza o temperaturze 0,5 G przez 30 minut. Po obróceniu zdemontuj komory komórek śródbłonka krwi, umyj szkiełka hodowli komórkowych w PBS i utrwal komórki w lodowatym 1% paraldehydzie przez 10 minut. Na koniec, w celu oceny stężenia aktywowanego białka krwi, wymieszaj jeden mililitr krwi z każdej komory w mikroprobówkach wirówkowych zawierających 30 mikrolitrów 0,34 mola K trzy EDTA i umieść probówki na lodzie na maksymalnie jedną godzinę.
Następnie, po odwirowaniu komórek, przechowuj osocze w nowych mikroprobówkach wirówkowych w temperaturze minus 70 stopni Celsjusza do czasu dalszej analizy. Aktywacja czynników krzepnięcia jest bardziej prawdopodobna w przypadku zastoju krwi, ponieważ zwiększa się prawdopodobieństwo interakcji między aktywowanymi czynnikami. Rzeczywiście, objętość krwi bez ruchu pęcherzyków powietrza jest dwa i pół razy większa.
Gdy do komory dodaje się 1,75 mililitra krwi w porównaniu do 1,5 mililitra krwi, zmierzone wartości antytrombiny trombiny sugerują zwiększone tworzenie antytrombiny przy zwiększonej objętości krwi. Co ciekawe, gdy ve są inkubowane z dowolną objętością krwi pełnej, nie zauważa się różnic między obiema grupami, co sugeruje, że komórki śródbłonka mogą modulować aktywację krzepnięcia w celu zbadania wpływu TNF alfa na rekrutację leukocytów. W tym eksperymencie qve traktowano 20 nanogramami na mililitr TT NF alfa na cztery godziny przed kontaktem z krwią, po czym określono ilościowo liczbę komórek CD 16 dodatnich.
Rekrutacja komórek CD 16 dodatnich znacznie wzrosła po leczeniu TNF alfa ze 100 do 256 komórek CD 16 dodatnich na milimetr kwadratowy i 1,5 litra krwi oraz ze 172 do 378 i 1,75 mililitra krwi. Tworzenie kompleksów trombinowo-antytrombinowych mierzono następnie w odpowiednich próbkach osocza z krwi inkubowanej z komórkami traktowanymi TNF alfa lub nietraktowanymi. Zgodnie z oczekiwaniami, komórki stymulowane TNF alfa indukowały przybliżone podwojenie kompleksów trombiny antytrombiny w porównaniu z nieleczonymi kontrolami po jego rozwojeniu.
Technika ta umożliwi naukowcom z dziedziny immunologii badanie, uzupełnianie i koagulację w modelu in vitro z wykorzystaniem ludzkich komórek pierwotnych i ludzkiej krwi pełnej.
Niniejsze badanie przedstawia nowy model in vitro do badania interakcji między ludzką krwią a komórkami śródbłonka. Wykorzystując test z komorą śródbłonka naczyniowego, badacze mogą ocenić interakcje komórkowe oraz czynniki krzepnięcia w ludzkim systemie modelowym.
Ten model in vitro wypełnia krytyczną lukę w badaniach nad chorobami naczyniowymi, umożliwiając bezpośrednie badanie interakcji między ludzką krwią a śródbłonkiem w warunkach fizjologicznych. Dzięki zastosowaniu natywnej krwi pełnej z minimalną ilością antykoagulantu oraz pierwotnych ludzkich komórek śródbłonka, test zapewnia system istotny dla człowieka do mechanistycznej minimalizacji ryzyka w odniesieniu do celów naczyniowych. Podejście to zwiększa pewność predykcyjną w walidacji celów poprzez kwantyfikację modulacji krzepnięcia oraz rekrutacji leukocytów w systemie odpowiadającym stanom chorobowym.
Analiza ta wpisuje się w kontinuum odkryć – od walidacji celu po ocenę przedkliniczną – oferując platformę istotną dla człowieka do oceny modulacji celu naczyniowego przed optymalizacją związku wiodącego.