-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Advanced Biology
Pierwotne kultury neuronalne
Pierwotne kultury neuronalne
JoVE Science Education
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Neuroscience
Primary Neuronal Cultures

1.11: Pierwotne kultury neuronalne

68,032 Views
08:43 min
April 30, 2023
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Złożoność mózgu często wymaga od neurobiologów stosowania prostszego systemu do eksperymentalnych manipulacji i obserwacji. Jednym z potężnych podejść jest wygenerowanie pierwotnej kultury poprzez wypreparowanie tkanki układu nerwowego, dysocjację jej na pojedyncze komórki i wyhodowanie tych komórek in vitro. Hodowle pierwotne sprawiają, że neurony i komórki glejowe są łatwo dostępne dla narzędzi eksperymentalnych wymaganych do technik takich jak manipulacja genetyczna i obrazowanie poklatkowe. Co więcej, kultury te stanowią wysoce kontrolowane środowisko, w którym można badać złożone zjawiska, takie jak interakcje komórka-komórka.

Ten film zawiera przegląd głównych etapów produkcji pierwotnych kultur neuronalnych, które obejmują selekcję i preparację tkanki będącej przedmiotem zainteresowania, mechaniczne i chemiczne rozkładanie tkanki w celu wytworzenia zawiesiny pojedynczej komórki, powlekanie komórek i utrzymywanie kultur w odpowiednich podłożach. Przedstawiono również kilka przykładowych eksperymentów, aby pokazać, w jaki sposób hodowane komórki mogą być wykorzystywane do badania transportu białek, zmian morfologicznych i elektrofizjologii w żywych neuronach.

Procedure

Mózg jest jednym z najbardziej złożonych narządów w ciele, więc neuronaukowcy często potrzebują prostszego systemu do eksperymentalnych manipulacji i obserwacji. Hodowla komórkowa jest jednym z takich systemów, który umożliwia łatwy dostęp do żywych neuronów. Ogólnie rzecz biorąc, hodowla komórek polega na hodowaniu ich w specjalnych roztworach zwanych pożywkami hodowlanymi w sterylnym, kontrolowanym środowisku – zwykle w ciepłym inkubatorze. Kultura pierwotna to taka, która jest wytwarzana z tkanki wypreparowanej z organizmu. Różne typy pierwotnych kultur neuronalnych mogą być wytwarzane z różnych zwierząt, etapów rozwojowych i tkanek układu nerwowego.

Ten film będzie stanowił wprowadzenie do metody wytwarzania pierwotnych kultur neuronalnych i niektórych eksperymentów, w których powszechnie wykorzystuje się te komórki.

Wiele modeli zwierzęcych ważnych dla badań neurobiologicznych można wykorzystać do przygotowania pierwotnych kultur neuronalnych. W przypadku myszy i szczurów – dwóch najczęściej wykorzystywanych ssaków w badaniach biomedycznych – tkanka neuronalna z zarodków, nowonarodzonych szczeniąt i dorosłych osobników może być preparowana w celu hodowli. Zarodki i młode okołoporodowe są zazwyczaj preferowane, ponieważ komórki mózgowe są niedojrzałe i mniej podatne na uszkodzenia.

Różne tkanki układu nerwowego mogą być izolowane i wykorzystywane do produkcji różnych typów pierwotnych kultur neuronalnych. Na przykład można wypreparować określone części mózgu, takie jak móżdżek, kora mózgowa i hipokamp. Rdzeń kręgowy lub elementy obwodowego układu nerwowego, takie jak zwoje korzenia grzbietowego, można również wypreparować i wyhodować w celu wyhodowania określonych typów neuronów.

Niezależnie od źródła tkanki, ogólną metodę wytwarzania pierwotnych kultur neuronalnych można podsumować w kilku głównych krokach: rozwarstwienie, dysocjacja, posiew i utrzymanie.

Zacznijmy dogłębny przegląd tych kroków od pierwszego: Rozbioru. Przygotowując się do etapów sekcji i hodowli, sterylność ma kluczowe znaczenie, aby zapobiec zanieczyszczeniu kultur. Narzędzia należy sterylizować alkoholem, a do usuwania zanieczyszczeń unoszących się w powietrzu często używa się okapu z przepływem laminarnym.

W celu hodowli neuronów gryzoni tkanki świeżo uśpionych zwierząt powinny zostać usunięte do zimnego, buforowanego roztworu soli. Za pomocą mikroskopu preparacyjnego mniejsze części tkanki – takie jak hipokampy – mogą być starannie izolowane w celu dalszego przetwarzania.

Następnie konieczne jest rozbicie próbki na składniki komórkowe w procesie znanym jako dysocjacja. Wypreparowaną tkankę najpierw miele się za pomocą skalpela lub nożyczek. Powstałe w ten sposób fragmenty tkanek są następnie przenoszone do nowego pojemnika. Następnie dodaje się enzym proteolityczny, taki jak trypsyna lub papaina, w celu strawienia białek macierzy zewnątrzkomórkowej, które wiążą ze sobą komórki. Po krótkiej inkubacji w ciepłym inkubatorze lub łaźni wodnej kawałki tkanek delikatnie przemywa się buforem w celu usunięcia enzymów.

Zmiękczone fragmenty tkanki można teraz zdysocjować przez rozcieranie, które polega na wielokrotnym przepuszczeniu tkanki przez pipetę, tak aby komórki zostały uwolnione do pojedynczej zawiesiny komórkowej. W tym momencie komórki można policzyć pod kątem koncentracji i sprawdzić pod kątem żywotności za pomocą barwników, takich jak błękit trypanowy, który pomaga określić, ile zawiesiny należy rozcieńczyć, aby pomyślnie wzrosła.

Nareszcie neurony są gotowe do hodowli! Przyjrzyjmy się kilku ważnym środkom, które należy podjąć, aby utrzymać je przy życiu i zdrowiu. Bardzo ważny jest skład pożywki hodowlanej, która jest używana do hodowli neuronów. Do pożywek zwykle dodaje się specjalne suplementy, które wspomagają przeżycie i wzrost neuronów. Inne dodatki mogą obejmować leki, które hamują podział komórek nieneuronalnych, takich jak komórki glejowe.

Po zmieszaniu zawiesiny komórek neuronalnych z pożywką, komórki są gotowe do posiewu w żądanych pojemnikach. Mogą to być naczynia i talerze hodowlane lub szklane szkiełka nakrywkowe umieszczone wewnątrz tych pojemników. Ponieważ neurony nie mogą rosnąć bezpośrednio na szkle, szkiełka nakrywkowe są wcześniej poddawane obróbce, aby stworzyć lepsze powierzchnie do przyczepiania się i wzrostu komórek. Zabiegi te mogą obejmować powlekanie syntetycznymi białkami macierzy zewnątrzkomórkowej; na przykład polilizyna i laminina; lub trawienie kwasem w celu zszorstkowania powierzchni.

Po platerowaniu neurony są hodowane w ciepłym, nawilżonym inkubatorze. Wzrost procesów neuronalnych można zaobserwować w ciągu kilku godzin do kilku dni. Aby utrzymać kultury, część pożywek hodowlanych jest zastępowana świeżymi pożywkami mniej więcej raz w tygodniu. Zazwyczaj pierwotne hodowle neuronów są używane do eksperymentów w dowolnym miejscu od kilku dni do kilku tygodni po posiewaniu.

Teraz, gdy neurony rosną w kulturach, co możesz zrobić z tymi komórkami?

Jedną z podstawowych metod powszechnie stosowanych w hodowlach neuronów jest manipulacja genetyczna poprzez transfekcję lub transdukcję wirusa. Materiał genetyczny kodujący na przykład zmutowane białko może zostać wprowadzony do hodowanych neuronów w celu zmiany funkcji neuronów. Alternatywnie, transfekcja z dwuniciowym RNA jest skuteczną techniką blokowania ekspresji białek. Dostępność wielu metod i odczynników do manipulacji genetycznych sprawia, że jest to szczególnie cenne zastosowanie dla szerokiej gamy pytań badawczych.

Przykładowym pytaniem, na które można odpowiedzieć za pomocą transfekcji w kulturach neuronalnych, jest: W jaki sposób i gdzie pewne białka lub kompleksy białkowe są transportowane do różnych struktur morfologicznych neuronu? Aby uzyskać odpowiedź, neurony są transfekowane DNA kodującym interesujące nas białko, które można połączyć z białkiem fluorescencyjnym, takim jak białko zielonej fluorescencji lub GFP. Wzorce ruchu i lokalizacja białka znakowanego fluorescencyjnie mogą być następnie monitorowane za pomocą obrazowania na żywo. Metoda ta może być wykorzystana do badania np. transportu receptorów neuroprzekaźników na powierzchnię komórki.

Pierwotne hodowle neuronów są również bardzo przydatne w badaniach elektrofizjologicznych, w których aktywność elektryczną pojedynczych komórek można mierzyć za pomocą mikroelektrod. Pojedyncza warstwa neuronów w hodowli oznacza, że pojedyncze komórki są łatwe do namierzenia, a manipulacje, takie jak leczenie farmakologiczne, są szybko i równomiernie stosowane. Na przykład wpływ badanego związku na aktywność pojedynczego neuronu można zmierzyć za pomocą techniki patch clamp w hodowanych neuronach.

Właśnie obejrzałeś wprowadzenie JoVE do pierwotnych kultur neuronalnych. W tym filmie pokazaliśmy, w jaki sposób te kultury są przygotowywane i w jakich eksperymentach są powszechnie używane. Pierwotne hodowle neuronów można wytwarzać z wielu różnych źródeł tkankowych, zwykle przy użyciu metody obejmującej preparację, dysocjację do zawiesiny komórkowej i hodowlę w pożywkach hodowlanych w inkubatorach.

Dzięki za oglądanie!

Transcript

Mózg jest jednym z najbardziej złożonych narządów w ciele, więc neuronaukowcy często potrzebują prostszego systemu do eksperymentalnych manipulacji i obserwacji. Hodowla komórkowa jest jednym z takich systemów, który umożliwia łatwy dostęp do żywych neuronów. Ogólnie rzecz biorąc, hodowla komórek polega na hodowaniu ich w specjalnych roztworach zwanych pożywkami hodowlanymi w sterylnym, kontrolowanym środowisku ? zwykle ciepły inkubator. Kultura pierwotna to taka, która jest wytwarzana z tkanki wypreparowanej z organizmu. Różne typy pierwotnych kultur neuronalnych mogą być wytwarzane z różnych zwierząt, etapów rozwojowych i tkanek układu nerwowego.

Ten film będzie stanowił wprowadzenie do metody wytwarzania pierwotnych kultur neuronalnych i niektórych eksperymentów, w których powszechnie wykorzystuje się te komórki.

Wiele modeli zwierzęcych ważnych dla badań neurobiologicznych można wykorzystać do przygotowania pierwotnych kultur neuronalnych. Z myszami i szczurami ? Dwa z najczęściej wykorzystywanych ssaków w badaniach biomedycznych ? Tkanka neuronalna z zarodków, nowonarodzonych szczeniąt i dorosłych osobników może być preparowana w celu hodowli. Zarodki i młode okołoporodowe są zazwyczaj preferowane, ponieważ komórki mózgowe są niedojrzałe i mniej podatne na uszkodzenia.

Różne tkanki układu nerwowego mogą być izolowane i wykorzystywane do produkcji różnych typów pierwotnych kultur neuronalnych. Na przykład można wypreparować określone części mózgu, takie jak móżdżek, kora mózgowa i hipokamp. Rdzeń kręgowy lub elementy obwodowego układu nerwowego, takie jak zwoje korzenia grzbietowego, można również wypreparować i wyhodować w celu wyhodowania określonych typów neuronów.

Niezależnie od źródła tkanki, ogólną metodę wytwarzania pierwotnych kultur neuronalnych można podsumować w kilku głównych krokach: rozwarstwienie, dysocjacja, posiew i utrzymanie.

Zacznijmy dogłębny przegląd tych kroków od pierwszego: Sekcji. Przygotowując się do etapów sekcji i hodowli, sterylność ma kluczowe znaczenie, aby zapobiec zanieczyszczeniu kultur. Narzędzia należy sterylizować alkoholem, a do usuwania zanieczyszczeń unoszących się w powietrzu często używa się okapu z przepływem laminarnym.

W celu hodowli neuronów gryzoni tkanki świeżo uśpionych zwierząt powinny zostać usunięte do zimnego, buforowanego roztworu soli. Za pomocą mikroskopu preparacyjnego mniejsze części tkanki ? takich jak hipokampy ? można starannie odizolować w celu dalszej obróbki.

Następnie konieczne jest rozbicie próbki na składniki komórkowe w procesie znanym jako dysocjacja. Wypreparowaną tkankę najpierw miele się za pomocą skalpela lub nożyczek. Powstałe w ten sposób fragmenty tkanek są następnie przenoszone do nowego pojemnika. Następnie dodaje się enzym proteolityczny, taki jak trypsyna lub papaina, w celu strawienia białek macierzy zewnątrzkomórkowej, które wiążą ze sobą komórki. Po krótkiej inkubacji w ciepłym inkubatorze lub łaźni wodnej kawałki tkanek delikatnie przemywa się buforem w celu usunięcia enzymów.

Zmiękczone fragmenty tkanki można teraz zdysocjować przez rozcieranie, które polega na wielokrotnym przepuszczeniu tkanki przez pipetę, tak aby komórki zostały uwolnione do pojedynczej zawiesiny komórkowej. W tym momencie komórki można policzyć pod kątem koncentracji i sprawdzić pod kątem żywotności za pomocą barwników, takich jak błękit trypanowy, który pomaga określić, ile zawiesiny należy rozcieńczyć, aby pomyślnie wzrosła.

Nareszcie neurony są gotowe do hodowli! Przyjrzyjmy się kilku ważnym środkom, które należy podjąć, aby utrzymać je przy życiu i zdrowiu. Bardzo ważny jest skład pożywki hodowlanej, która jest używana do hodowli neuronów. Do pożywek zwykle dodaje się specjalne suplementy, które wspomagają przeżycie i wzrost neuronów. Inne dodatki mogą obejmować leki, które hamują podział komórek nieneuronalnych, takich jak komórki glejowe.

Po zmieszaniu zawiesiny komórek neuronalnych z pożywką, komórki są gotowe do posiewu w żądanych pojemnikach. Mogą to być naczynia i talerze hodowlane lub szklane szkiełka nakrywkowe umieszczone wewnątrz tych pojemników. Ponieważ neurony nie mogą rosnąć bezpośrednio na szkle, szkiełka nakrywkowe są wcześniej poddawane obróbce, aby stworzyć lepsze powierzchnie do przyczepiania się i wzrostu komórek. Zabiegi te mogą obejmować powlekanie syntetycznymi białkami macierzy zewnątrzkomórkowej; na przykład polilizyna i laminina; lub trawienie kwasem w celu zszorstkowania powierzchni.

Po platerowaniu neurony są hodowane w ciepłym, nawilżonym inkubatorze. Wzrost procesów neuronalnych można zaobserwować w ciągu kilku godzin do kilku dni. Aby utrzymać kultury, część pożywek hodowlanych jest zastępowana świeżymi pożywkami mniej więcej raz w tygodniu. Zazwyczaj pierwotne hodowle neuronów są używane do eksperymentów w dowolnym miejscu od kilku dni do kilku tygodni po posiewaniu.

Teraz, gdy neurony rosną w kulturach, co możesz zrobić z tymi komórkami?

Jedną z podstawowych metod powszechnie stosowanych w hodowlach neuronów jest manipulacja genetyczna poprzez transfekcję lub transdukcję wirusa. Materiał genetyczny kodujący na przykład zmutowane białko może zostać wprowadzony do hodowanych neuronów w celu zmiany funkcji neuronów. Alternatywnie, transfekcja z dwuniciowym RNA jest skuteczną techniką blokowania ekspresji białek. Dostępność wielu metod i odczynników do manipulacji genetycznych sprawia, że jest to szczególnie cenne zastosowanie dla szerokiej gamy pytań badawczych.

Przykładowym pytaniem, na które można odpowiedzieć za pomocą transfekcji w kulturach neuronalnych, jest: W jaki sposób i gdzie pewne białka lub kompleksy białkowe są transportowane do różnych struktur morfologicznych neuronu? Aby uzyskać odpowiedź, neurony są transfekowane DNA kodującym interesujące nas białko, które można połączyć z białkiem fluorescencyjnym, takim jak białko zielonej fluorescencji lub GFP. Wzorce ruchu i lokalizacja białka znakowanego fluorescencyjnie mogą być następnie monitorowane za pomocą obrazowania na żywo. Metoda ta może być wykorzystana do badania np. transportu receptorów neuroprzekaźników na powierzchnię komórki.

Pierwotne hodowle neuronów są również bardzo przydatne w badaniach elektrofizjologicznych, w których aktywność elektryczną pojedynczych komórek można mierzyć za pomocą mikroelektrod. Pojedyncza warstwa neuronów w hodowli oznacza, że pojedyncze komórki są łatwe do namierzenia, a manipulacje, takie jak leczenie farmakologiczne, są szybko i równomiernie stosowane. Na przykład wpływ badanego związku na aktywność pojedynczego neuronu można zmierzyć za pomocą techniki zacisku krosowego w hodowanych neuronach.

Właśnie obejrzałeś wprowadzenie JoVE do pierwotnych kultur neuronalnych. W tym filmie pokazaliśmy, w jaki sposób te kultury są przygotowywane i jakie są rodzaje eksperymentów, w których są powszechnie używane. Pierwotne hodowle neuronów można wytwarzać z wielu różnych źródeł tkankowych, zwykle przy użyciu metody obejmującej preparację, dysocjację do zawiesiny komórkowej i hodowlę w pożywkach hodowlanych w inkubatorach.

Dzięki za oglądanie!

Explore More Videos

Pierwotne hodowle neuronów neurobiolodzy manipulacje eksperymentalne hodowla komórek pożywki hodowlane sterylne środowisko ciepły inkubator wypreparowane tkanki modele zwierzęce myszy szczury zarodki nowonarodzone szczenięta dorośli tkanki układu nerwowego móżdżek kora mózgowa hipokamp rdzeń kręgowy obwodowy układ nerwowy

Related Videos

Wprowadzenie do neurofizjologii

09:16

Wprowadzenie do neurofizjologii

Neuroscience

96.8K Wyświetlenia

Elektrofizjologia zacisku krosowego

09:43

Elektrofizjologia zacisku krosowego

Neuroscience

96.9K Wyświetlenia

Obrazowanie wapnia w neuronach

08:43

Obrazowanie wapnia w neuronach

Neuroscience

96.0K Wyświetlenia

Wprowadzenie do neuroanatomii

10:15

Wprowadzenie do neuroanatomii

Neuroscience

63.5K Wyświetlenia

Chirurgia stereotaktyczna gryzoni

08:28

Chirurgia stereotaktyczna gryzoni

Neuroscience

152.3K Wyświetlenia

Barwienie histologiczne tkanki nerwowej

08:55

Barwienie histologiczne tkanki nerwowej

Neuroscience

158.8K Wyświetlenia

Wprowadzenie do neuronauki behawioralnej

08:45

Wprowadzenie do neuronauki behawioralnej

Neuroscience

47.3K Wyświetlenia

Wodny labirynt Morrisa

07:42

Wodny labirynt Morrisa

Neuroscience

53.0K Wyświetlenia

fMRI: Funkcjonalny rezonans magnetyczny

09:15

fMRI: Funkcjonalny rezonans magnetyczny

Neuroscience

59.5K Wyświetlenia

Wprowadzenie do neuronauki komórkowej i molekularnej

11:25

Wprowadzenie do neuronauki komórkowej i molekularnej

Neuroscience

73.0K Wyświetlenia

Metody transfekcji neuronalnej

08:04

Metody transfekcji neuronalnej

Neuroscience

16.4K Wyświetlenia

Hodowla eksplantatów tkanki nerwowej

07:45

Hodowla eksplantatów tkanki nerwowej

Neuroscience

23.5K Wyświetlenia

Mysia elektroporacja <i>w macicy</i>

08:05

Mysia elektroporacja <i>w macicy</i>

Neuroscience

21.3K Wyświetlenia

Wprowadzenie do neurobiologii rozwojowej

09:24

Wprowadzenie do neurobiologii rozwojowej

Neuroscience

40.0K Wyświetlenia

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code