-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Procedura wszczepienia komory rdzeniowej do podłużnego obrazowania in vivo rdzenia kręgo...
Procedura wszczepienia komory rdzeniowej do podłużnego obrazowania in vivo rdzenia kręgo...
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
A Procedure for Implanting a Spinal Chamber for Longitudinal In Vivo Imaging of the Mouse Spinal Cord

Procedura wszczepienia komory rdzeniowej do podłużnego obrazowania in vivo rdzenia kręgowego myszy

Full Text
14,543 Views
11:20 min
December 3, 2014

DOI: 10.3791/52196-v

Matthew J. Farrar1,2, Chris B. Schaffer2

1Department of Neurobiology and Behavior,Cornell University, 2Department of Biomedical Engineering,Cornell University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

W tym filmie opisujemy procedurę wszczepienia przewlekłej komory obrazowania optycznego do grzbietowego rdzenia kręgowego żywej myszy. Komora, zabieg chirurgiczny i przewlekłe obrazowanie są oceniane i demonstrowane.

Transcript

Ogólnym celem tej procedury jest wszczepienie komory obrazowania nad grzbietowym rdzeniem kręgowym myszy, aby umożliwić wzdłużne obrazowanie optyczne bez konieczności powtarzania napadów chirurgicznych. Osiąga się to poprzez najpierw odsłonięcie trzech kręgów piersiowych i usunięcie tkanki miękkiej powyżej kręgosłupa. Drugim krokiem jest zaciśnięcie odsłoniętych kręgów za pomocą bocznych części komory i wykonanie laminektomii grzbietowej.

Następnie górna płyta komory jest mocno przymocowana do odsłoniętego rdzenia kręgowego i uszczelniona za pomocą elastomeru silikonowego i szkła nakrywkowego. Ostatnim krokiem jest uszczelnienie skóry wokół implantu za pomocą klejów i umożliwienie zwierzęciu powrotu do zdrowia. Ostatecznie wielofotonowa mikroskopia fluorescencyjna służy do obrazowania zachowania komórek i struktury tkanek w rdzeniu kręgowym z rozdzielczością subkomórkową w czasie.

Główną przewagą naszej nowej metodologii nad istniejącymi metodami, takimi jak wielokrotne chirurgiczne otwieranie rdzenia kręgowego, jest możliwość uzyskania niemal dowolnej liczby punktów czasowych obrazowania rozłożonych w długim okresie czasu bez powikłań związanych z powtarzaną operacją, takich jak potencjalna infekcja, uraz chirurgiczny lub stres zwierząt. Po raz pierwszy wpadliśmy na pomysł tej metody, gdy zastanawialiśmy się nad wcześniejszym sukcesem obrazowania podłużnego po urazie rdzenia kręgowego u przezroczystej ryby danio pręgowanej. Następnie zdecydowaliśmy się rozszerzyć ten paradygmat na model ssaków.

Rozpocznij tę procedurę od ogolenia obszaru łuku piersiowego myszy znieczulonej za pomocą izofluoru. Następnie usuń przycięte włosy. Następnie podaj myszowi podskórnie mieszaninę soli fizjologicznej, ketoprofenu i deksametazonu.

Za pomocą bawełnianych wacików. Wykonaj trzy naprzemienne płukania jodem i 70% etanolem i odczekaj minutę między praniami. Następnie podaj podskórnie 100 mikrolitrów 0,125% bupiwakainy na środek ogolonego plastra, aby zmniejszyć ból w miejscu nacięcia.

Następnie przenieś mysz do niestandardowych ataków stereo. Włożyć termometr doodbytniczy i odczekać około 10 minut, aż bupiwakaina zacznie działać pod mikroskopem. Wykonaj pięciomilimetrowe nacięcie nad kręgami za pomocą ostrza skalpela.

Następnie zwiększ rozmiar otworu w skórze przez rozwarstwienie. Następnie delikatnie odłącz powięź łączną między skórą a leżącym pod nią mięśniem. Przytrzymaj skórę z tyłu, aby uzyskać większy obszar roboczy za pomocą zwijaczy i uważaj, aby nie zwiększyć ciężaru na klatce piersiowej i nie utrudnić oddychania.

Następnie chwyć za nerwy rostralne, najbardziej wysunięty kręg, który będzie odsłonięty przez leżący nad nim mięsień, za pomocą kleszczy. Odetnij tkankę po obu stronach wyrostka grzbietowego z dala od trzech kręgów. Następnie usuń całą leżącą na wierzchu tkankę z laminatu grzbietowego.

Następnie ostrożnie odetnij ścięgna przyczepione do kręgów na obu bocznych krawędziach kręgosłupa. Delikatnie usuń jak najwięcej tkanki z bocznych krawędzi kolumny kręgowej, aby zapewnić czystą powierzchnię zaciskową. Następnie delikatnie oczyść kręgi z pozostałych tkanek miękkich.

Za pomocą skrobaka do kości i wacika odetnij wszelkie niepasujące tkanki za pomocą nożyczek chirurgicznych. Następnie wyreguluj zwijacze, aby utrzymać tkankę otaczającą kolumnę kręgową. Wraz ze skórą przymocuj pręty boczne implantu do zębów na słupkach porodowych i umieść je w uchwytach wkładu.

Następnie zaciśnij trzy kręgi. Korzystanie z prętów bocznych, wywierając nacisk wystarczający do ich bezpiecznego trzymania. Następnie użyj kleszczy, aby zapewnić wypoziomowane zaciśnięcie trzech kręgów.

Upewnij się, że pręty boczne są zarówno wypoziomowane, jak i równoległe przed wykonaniem laminektomii. Następnie dokładnie oczyść i osusz grzbietową powierzchnię zaciśniętych kręgów za pomocą bawełnianych wacików. W tej procedurze włóż końcówki nożyczek Vana do przestrzeni zewnątrzoponowej przyśrodkowego zaciśniętego kręgu i lekko ściśnij uchwyty.

Jeśli kość jest sucha, powinna pęknąć wzdłuż blaszki grzbietowej. Powtórz tę procedurę po stronie przeciwległej, aby uwolnić blaszkę, jednocześnie chwytając luźną blaszkę Delikatnie wyrostkiem grzbietowym za pomocą kleszczy, ostrożnie odetnij tkankę łączną na końcach rostralnych i rozpieszczonych blaszki. Następnie dokładnie zmyj krew pokrywającą rdzeń kręgowy 0,9% solą fizjologiczną lub sztucznym mózgowym rdzeniem rdzeniowym, wchłonij nadmiar płynu bawełnianymi wacikami.

Następnie przytnij boczne krawędzie kości i przejdź do bocznych prętów implantu. Następnie zatamuj krwawienie za pomocą wacików i soli fizjologicznej. W przypadku, gdy część okostnej oderwała się i pokrywa rdzeń kręgowy, delikatnie usuń tkankę za pomocą bawełnianych wacików i igły o rozmiarze od 29 do 30.

Uważaj, aby nie uszkodzić rdzenia kręgowego i nie myl luźnej okostnej z ciasno owiniętym datorem. Na końcu. Uszczelnij pozostałe odsłonięte krawędzie kości za pomocą środka dentystycznego, akrylowego i cyjanoakrylu.

Zachowaj szczególną ostrożność, aby klej nie dostał się na odsłonięty rdzeń kręgowy. Teraz ostrożnie umieść górną płytkę na zwierzęciu, tak aby cztery szczeliny pokrywały się z czterema otworami w prętach bocznych, a otwór pokrywał się z odsłoniętym rdzeniem kręgowym. Za pomocą śrubokręta jubilerskiego ostrożnie zacznij od pierwszej, stabilizując trzonek śrubokręta kolejną parą kleszczyków.

Nie dokręcaj na tym etapie, ale włóż ją tak, aby kilka pierwszych gwintów było zazębionych. Powtórz ten proces dla pozostałych trzech. Po wkręceniu wszystkich czterech dokręcaj każdą naprzemiennie w tych samych małych odstępach, aż wszystkie zostaną mocno dokręcone.

Następnie użyj elastomeru silikonowego marki quick sill, aby wypełnić przestrzeń między rdzeniem kręgowym a szklanym okienkiem i nałóż go na odsłonięty rdzeń kręgowy. Pamiętaj, aby pozbyć się wszelkich pęcherzyków powietrza zawierających silikon z końcówki mieszającej przed jej nałożeniem. Następnie szybko umieść pięciomilimetrową szkiełko nakrywkowe we wkładce w górnej płycie.

Zastosuj wystarczający nacisk, aby stopniowo ścisnąć płynny elastomer, aby otoczyć rdzeń kręgowy, ale nie powodując ucisku rdzenia kręgowego. Następnie pokryj krawędzie wysiękowego elastomeru zębowym, akrylowym i cyjanoakrylowym, a następnie użyj klejów, aby jak najbardziej przykleić elastomer do otaczającej kości, aby zapobiec przesuwaniu się elastomeru po powierzchni rdzenia kręgowego. Następnie wyjmij retraktory i pociągnij skórę do góry wokół krawędzi implantu.

Użyj cyjanoakrylanu, aby przykleić skórę do krawędzi implantu. Następnie włóż w skrzydła górnej płyty. Następnie uszczelnij szczeliny w otworach na górnej płyty za pomocą akrylu dentystycznego przed umieszczeniem zwierzęcia z powrotem w klatce w celu odzyskania.

Przed sesjami obrazowania należy ponownie znieczulić mysz i przymocować odsłonięte implantu do gwintowanych słupków w celu stabilizacji. Rysunek ten pokazuje, że przewlekła komora kręgosłupa pozostaje optycznie przezroczysta przez wiele tygodni. Są to obrazy rdzenia kręgowego od białego do jasnego od kilku minut do trzech tygodni po operacji.

Naczyniowe punkty orientacyjne są rozpoznawalne we wszystkich punktach czasowych. Niewielka zmiana jest widoczna w ciągu jednego dnia po operacji. Gęsty włóknisty przerost występuje w części okna już po trzech dniach i powoduje częściowe zaciemnienie obszaru obrazowania.

Łagodna neowaskularyzacja jest również obecna, ale nie przesłania pierwotnego układu naczyniowego w świetle białym lub dwóch obrazach PEF. Przewlekła komora kręgosłupa umożliwia wielokrotne obrazowanie wielofotonowe bez konieczności wielokrotnych operacji. Oto obrazy transgenicznej myszy wykazującej ekspresję YFP w podzbiorze aksonów DRG w grzbietowym fii rdzenia kręgowego.

Układ naczyniowy został oznaczony przez donaczyniowe wstrzyknięcie barwnika pokazane na czerwono. Aktywność mikrogleju można również śledzić w czasie u myszy podwójnie transgenicznych uda, YFP, CX, trzech CR, jednej GFP, podczas gdy aksony i mikroglej pozostają widoczne. Kontrast i rozdzielczość nieznacznie spadają z czasem.

Raz opanowane. Tę technikę można wykonać w około godzinę, jeśli zostanie wykonana prawidłowo po jej opracowaniu. Ta technika utorowała nam drogę do zbadania czasowej i przestrzennej niejednorodności zamierania aksonów po urazie rdzenia kręgowego.

I myszy.

Explore More Videos

Słowa kluczowe: Obrazowanie in vivo rdzeń kręgowy myszy zabieg chirurgiczny dostęp optyczny mikroskopia nieliniowa urazy neurodegeneracyjne obrazowanie przewlekłe zaciskanie kręgów oczyszczanie tkanek implant chirurgiczny opieka pooperacyjna stabilność obrazowania

Related Videos

In vivo (in vivo) Obrazowanie rdzenia kręgowego myszy za pomocą mikroskopii dwufotonowej

10:24

In vivo (in vivo) Obrazowanie rdzenia kręgowego myszy za pomocą mikroskopii dwufotonowej

Related Videos

24.4K Views

Stereotaktyczne wstrzyknięcie wektora wirusowego w celu warunkowej manipulacji genami w rdzeniu kręgowym myszy

08:39

Stereotaktyczne wstrzyknięcie wektora wirusowego w celu warunkowej manipulacji genami w rdzeniu kręgowym myszy

Related Videos

31.2K Views

Model uszkodzenia rdzenia kręgowego indukowany laserem ex vivo do oceny mechanizmów zwyrodnienia aksonów w czasie rzeczywistym

11:18

Model uszkodzenia rdzenia kręgowego indukowany laserem ex vivo do oceny mechanizmów zwyrodnienia aksonów w czasie rzeczywistym

Related Videos

11.1K Views

Obrazowanie dyfuzyjne w szyjnym rdzeniu kręgowym szczura

10:46

Obrazowanie dyfuzyjne w szyjnym rdzeniu kręgowym szczura

Related Videos

11.9K Views

Dwufotonowe obrazowanie dynamiki komórkowej w rdzeniu kręgowym myszy

10:44

Dwufotonowe obrazowanie dynamiki komórkowej w rdzeniu kręgowym myszy

Related Videos

10.6K Views

Obrazowanie włókien serotoninergicznych w rdzeniu kręgowym myszy techniką CLARITY/CUBIC

09:54

Obrazowanie włókien serotoninergicznych w rdzeniu kręgowym myszy techniką CLARITY/CUBIC

Related Videos

10.7K Views

Obrazowanie aktywności neuronalnej w pierwotnej korze somatosensorycznej przy użyciu transgenicznych myszy Thy1-GCaMP6s

07:04

Obrazowanie aktywności neuronalnej w pierwotnej korze somatosensorycznej przy użyciu transgenicznych myszy Thy1-GCaMP6s

Related Videos

11.3K Views

Badanie in vivo Dwukolorowa metoda obrazowania dynamiki naczyń krwionośnych po kontuzyjnym urazie rdzenia kręgowego

09:25

Badanie in vivo Dwukolorowa metoda obrazowania dynamiki naczyń krwionośnych po kontuzyjnym urazie rdzenia kręgowego

Related Videos

9.7K Views

Laminektomia i implantacja okienka rdzenia kręgowego u myszy

06:59

Laminektomia i implantacja okienka rdzenia kręgowego u myszy

Related Videos

12.6K Views

Przygotowanie rytmicznie aktywnego in vitro noworodka gryzonia pień-rdzeń kręgowy i cienki plasterek

06:32

Przygotowanie rytmicznie aktywnego in vitro noworodka gryzonia pień-rdzeń kręgowy i cienki plasterek

Related Videos

11.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code