26 lutego 2019
Ten manuskrypt opisuje metodę ilościowego określania akumulacji komórek nowotworowych w płucach w zwierzęcym modelu przerzutów nowotworowych.
Metoda ta może pomóc w udzieleniu odpowiedzi na kluczowe pytania w dziedzinie biologii nowotworów dotyczące molekularnych mechanizmów przerzutowania. Główną zaletą tej techniki jest możliwość ilościowego określenia rekrutacji komórek nowotworowych w odległym narządzie. Należy rozpocząć od użycia nieenzymatycznego odczynnika do dysocjacji komórek w celu usunięcia komórek raka płuc Lewisa (LLC) wykazujących ekspresję białka fluorescencyjnego z naczynia hodowlanego, zgodnie ze standardowymi protokołami.
Przenieś otrzymaną zawiesinę komórkową do 15-mililitrowej probówki stożkowej przed wirowaniem, a następnie wypłucz osady poprzez dwukrotne wirowanie w 5 ml PBS podczas każdego płukania. Po drugim płukaniu przefiltruj komórki przez sitko komórkowe o rozmiarze porów 40 µm i rozcieńcz zawiesinę do stężenia 1 × 10⁶ komórek/ml. Następnie pobierz komórki do strzykawki o pojemności 1 ml wyposażonej w igłę o rozmiarze 29G i wstrzyknij 100 µl komórek do żyły ogonowej każdego samca myszy szczepu C57-Black-6 w wieku od 8 do 10 tygodni.
W odpowiednim punkcie końcowym eksperymentu, za pomocą nożyczek usunąć skórę z powierzchni brzusznej każdej myszy, a następnie przeciąć żebra i przeponę, aby odsłonić jamę klatki piersiowej. Używając motylkowej igły 25G i drenu, przepłukać prawą komorę serca 15 mililitrami PBS, a następnie usunąć serce i grasicę. Chwytając tchawicę pęsetą, pociągnąć ją w górę, oddzielając tkanki łączną wokół tchawicy, aby pobrać płuca.
Następnie należy przemyć płuca w PBS i odciąć jeden płat w celu wizualizacji komórek fluorescencyjnych in situ pod mikroskopem fluorescencyjnym. Aby poddać tkankę płucną trawieniu, najpierw należy posiekać płat caudalny nożyczkami i umieścić fragmenty płuc w strzykawce o pojemności 10 ml. Należy zamknąć strzykawkę tłokiem, a następnie zassać do niej 5 ml roztworu trawiącego, przesuwając tłok w przód i w tył w cylindrze strzykawki, aż tkanka płucna zostanie rozproszona w całym roztworze.
Przenieś zawiesinę płucną do probówki o pojemności 50 ml i traw tkankę na wstrząsarce recyprokalnej przez 15 minut w temperaturze 37 °C i przy 150 rpm. Po zakończeniu inkubacji utrzyturuj pozostałą tkankę do całkowitego rozproszenia komórek płuc, a następnie umieść probówkę ponownie na wstrząsarce na kolejne 30 minut. Następnie przefiltruj komórki przez sito o rozmiarze oczek 40 µm i odzyskaj je poprzez wirowanie.
Aby przeanalizować wyizolowane komórki płuc za pomocą cytometrii przepływowej, resuspender osad w dwóch mililitrach buforu do lizy erytrocytów przez jedną minutę w temperaturze pokojowej, a następnie zebrać komórki poprzez wirowanie. Następnie wirować osad dwa razy w pięciu mililitrach świeżego PBS uzupełnionego o 1% bovine serum albumin na każde przemycie. Po drugim wirowaniu resuspender osad w jednym mililitrze świeżego PBS z BSA i przefiltrować komórki przez nowe sito o rozmiarze porów 40-micrometer w celu ilościowego oznaczenia komórek nowotworowych za pomocą cytometrii przepływowej.
W płucach obecnych jest wiele komórek GFP-LLC dwie godziny po iniekcji, przy czym zdecydowana większość komórek znika z płuc w ciągu 24 godzin. Należy pamiętać, że wszelkie plamki fluorescencyjne wykryte przy użyciu filtra czerwonego powinny zostać wykluczone z obliczeń liczby komórek. W celu potwierdzenia liczby komórek GFP-LLC w płucach, jeden z płatów można wykorzystać do analizy cytometrycznej, zgodnie z przedstawionym sposobem.
Podczas wykonywania tej procedury należy pamiętać, że metoda zamrożonych skrawków jest dokładniejszym sposobem obserwacji precyzyjnej lokalizacji komórek nowotworowych.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsza praca opisuje metodę ilościowego oznaczania akumulacji komórek nowotworowych w płucach w modelu zwierzęcym przerzutów nowotworowych. Technika ta umożliwia kwantyfikację rekrutacji komórek nowotworowych w odległym narządzie, dostarczając wiedzy na temat molekularnych mechanizmów przerzutowania.
Analiza ta umożliwia ilościową ocenę rekrutacji komórek nowotworowych do odległych narządów, co wspomaga ograniczanie ryzyka mechanistycznego w procesie odkrywania leków ukierunkowanych na przerzuty. Poprzez pominięcie etapów inwazji guza pierwotnego, metoda ta skupia się na oddziaływaniach ze stromą oraz zdarzeniach ekstrawasacji, które są kluczowe dla przedklinicznej walidacji celu terapeutycznego. Metoda ta zapewnia powtarzalny i skalowalny odczyt służący do oceny związków przeciwprzerzutowych in vivo.
Pozycje w kontinuum odkrywania leków, od testowania hipotez dotyczących celu po optymalizację związku wiodącego, umożliwiające ilościową ocenę związków modulujących przerzuty.