-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Advanced Biology
Indukowana pluripotencja
Indukowana pluripotencja
JoVE Science Education
Developmental Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Developmental Biology
Induced Pluripotency

2.9: Indukowana pluripotencja

27,200 Views
08:58 min
April 30, 2023
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Indukowane pluripotencjalne komórki macierzyste (iPSC) to komórki somatyczne, które zostały genetycznie przeprogramowane w celu tworzenia niezróżnicowanych komórek macierzystych. Podobnie jak embrionalne komórki macierzyste, iPSC mogą być hodowane w warunkach hodowli, które sprzyjają różnicowaniu w różne typy komórek. Tym samym iPSC mogą stanowić potencjalnie nieograniczone źródło dowolnego typu komórek ludzkich, co stanowi duży przełom w dziedzinie medycyny regeneracyjnej. Jednak nadal potrzebne są dalsze badania nad pochodzeniem i różnicowaniem iPSC, aby faktycznie wykorzystać te komórki w praktyce klinicznej.

Ten film najpierw przedstawia podstawowe zasady rządzące przeprogramowywaniem komórek, a następnie demonstruje protokół generowania iPSC ze zróżnicowanych fibroblastów embrionalnych myszy. Na koniec omówionych zostanie kilka eksperymentów, w których naukowcy ulepszają lub stosują techniki generowania iPSC.

Procedure

Indukowane pluripotencjalne komórki macierzyste, takie jak ludzkie embrionalne komórki macierzyste, mogą różnicować się w prawie każdą komórkę w organizmie i dlatego są bardzo obiecujące w dziedzinie medycyny regeneracyjnej.

Ludzkie embrionalne komórki macierzyste (hESC) są pozyskiwane z zarodków przedimplantacyjnych, podczas gdy w pełni zróżnicowane komórki somatyczne są wykorzystywane do wytwarzania indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych, które są również określane jako iPSC.

W tym filmie dowiesz się o podstawowych zasadach generowania iPSC, protokole krok po kroku indukującym pluripotencję w zróżnicowanych komórkach oraz o niektórych z wielu dalszych zastosowań i modyfikacji tego protokołu.

Zacznijmy od omówienia zasad powstawania iPSC z typów komórek somatycznych.

Zróżnicowane komórki, takie jak komórki skóry lub neurony, są tymi, których los jest przesądzony. Są zobowiązani do pełnienia określonej funkcji. Z drugiej strony, pluripotencjalne komórki macierzyste to te, których los jest nierozstrzygnięty i mogą różnicować się w dowolny typ komórek.

Proces zmiany tożsamości już zróżnicowanej komórki na stan pluripotencjalny nazywa się przeprogramowaniem komórkowym. Wiąże się to ze zmianą wzorca ekspresji genów w komórce, ponieważ liczba i rodzaje białek wytwarzanych przez komórkę odgrywają główną rolę w definiowaniu tożsamości komórki.

Jednym ze sposobów wywołania przeprogramowania komórkowego jest indukowanie ekspresji pewnych czynników transkrypcyjnych. Czynniki transkrypcyjne to białka, które wiążą się z sekwencjami regulatorowymi w genie. Niektóre z tych sekwencji nazywane są "promotorami" i dlatego promują transkrypcję genu. Kilka czynników transkrypcyjnych może wpływać na ekspresję wielu genów, co ma ogromny wpływ na tożsamość komórki.

Cztery klasyczne czynniki transkrypcyjne, które, jak wykazano, indukują pluripotencję, to Oct4, Sox2, cMyc i Klf4. Czynniki te są również znane jako czynniki Yamanaka, od nazwiska badacza, który odkrył ich efekty przeprogramowania.

Do indukowania ekspresji tych czynników transkrypcyjnych można zastosować wiele metod. Najczęstszą i najskuteczniejszą metodą jest wykorzystanie zmodyfikowanego wirusa do dostarczenia genów czynnika transkrypcyjnego do jądra, gdzie zintegrują się one z genomem.

W tej metodzie geny kodujące cztery czynniki Yamanaka są indywidualnie pakowane w różne retrowirusy i dodawane do zróżnicowanych komórek. Kiedy komórki są wystawione na działanie zmodyfikowanych wirusów, niewielka część zróżnicowanych komórek zostaje zainfekowana wszystkimi czterema wirusami przenoszącymi czynniki transkrypcyjne. Zaczynają się deróżnicować, aż do momentu powstania dużych kulistych skupisk pluripotencjalnych komórek macierzystych. Tworzenie klastrów pomaga iPSC stworzyć mikrośrodowisko, które jest podobne do komórek macierzystych in vivo, a tym samym pomaga im w utrzymaniu pluripotencji.

Ponieważ rozumiesz już podstawowe zasady rządzące generowaniem iPSC, przejdźmy do ogólnego protokołu indukcji pluripotencji w mysich fibroblastach embrionalnych lub MEF, przy użyciu systemu transdukcji wirusa.

Przed rozpoczęciem tej procedury należy pamiętać, że wirusy mogą infekować komórki w organizmie, dlatego niezwykle ważne jest przestrzeganie wytycznych dotyczących bezpieczeństwa.

Aby rozpocząć proces transfekcji, pożywkę hodowlaną wyjmuje się z płytki zawierającej MEF-y o dużej gęstości, a komórki przemywa się roztworem buforowym. Następnie dodaje się roztwór zawierający enzym rozkładający białka, taki jak trypsyna, aby podnieść komórki z dna naczynia. Pożywkę hodowlaną dodaje się następnie do płytki, a oderwane komórki przenosi się do probówki wirówkowej.

Po odwirowaniu osad jest ponownie zawieszany w pożywce hodowlanej. Następnie komórki są zliczane, a stężenie dostosowywane tak, aby optymalna liczba komórek mogła zostać zainfekowana wirusem następnego dnia. Inkubuj komórki przez noc.

Po tym, jak komórki osiądą na nowym szalisku, stare pożywki są zastępowane świeżymi pożywkami, a zmodyfikowane wirusy zawierające pożądane czynniki transkrypcyjne są dodawane do płytki. Komórki są następnie inkubowane z wirusami przez wystarczająco długi czas, aby umożliwić infekcję. Po inkubacji pożywka zawierająca wolne wirusy jest usuwana i zastępowana świeżą pożywką z embrionalnych komórek macierzystych.

Przez 2-3 tygodnie po przemianie komórki powinny być hodowane w inkubatorze w temperaturze 37°, a pożywki hodowlane powinny być wymieniane codziennie.

Po tym okresie kolonie iPSC, które wyglądają podobnie do kolonii embrionalnych komórek macierzystych, powinny stać się wystarczająco duże, aby można je było zebrać. Kolonie można przenieść na świeżą płytkę zawierającą podłoże z odpowiednimi czynnikami wzrostu i pozostawić do dalszego wzrostu. Aby potwierdzić pluripotencję, część populacji komórek jest barwiona markerami pluripotencji.

Teraz, gdy już wiesz, jak generować iPSC ze zróżnicowanych komórek, przyjrzyjmy się niektórym dalszym zastosowaniom i modyfikacjom tej bardzo przydatnej metody.

Ważną cechą iPSC jest to, że można je wykorzystać do wytworzenia prawie każdej komórki w organizmie. Ten przykład pokazuje generowanie komórek mięśnia sercowego, zwanych kardiomiocytami, z iPSC. W tym celu iPSC są przenoszone na nieprzylegające płytki, które umożliwiają im tworzenie ciał embrionalnych, które są agregatami pluripotencjalnych komórek macierzystych. Ciała zarodków są hodowane w specjalistycznej pożywce zawierającej surowicę i kwas askorbinowy, co zwiększa różnicowanie serca. Pomyślne różnicowanie można łatwo zaobserwować, gdy niektóre komórki zaczynają bić.

Ponieważ iPSC mogą potencjalnie różnicować się w dowolny typ komórek, mogą również tworzyć cały organizm, jak mysz. Można to zrobić za pomocą testu zwanego komplementacją tetraploidalną. Po pierwsze, zarodek tetraploidalny, zarodek zawierający cztery zestawy chromosomów, powstaje w wyniku połączenia dwóch komórek wczesnego zarodka za pomocą pola elektrycznego. Zarodek tetraploidalny może rozwijać się do stadium blastocysty. IPSC są następnie wstrzykiwane do blastocysty, która jest następnie przeszczepiana samicy biorcy w celu zajścia w ciążę. Komórki tetraploidalne są zdolne do tworzenia struktur pozaembrionalnych, takich jak łożysko, więc zwierzęta powstałe w wyniku tej metody pochodzą wyłącznie z iPSC.

Niektórzy badacze modyfikują procedurę przeprogramowywania, aby proces identyfikacji pomyślnie przeprogramowanych komórek był bardziej wydajny. Na przykład w tym eksperymencie MEF-y ze zdolnością do ekspresji białka zielonej fluorescencji pod wpływem promotora Oct4 pomogły naukowcom łatwo zidentyfikować komórki, które nabyły pluripotencję.

Właśnie obejrzałeś film JoVE na temat generowania indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych. W tym filmie omówiono zasady stojące za tą procedurą oraz protokół krok po kroku do generowania iPSC ze zróżnicowanych komórek. Sprawdziliśmy również, w jaki sposób ta metoda może być stosowana lub modyfikowana w eksperymentach laboratoryjnych.

Odkrycie iPSC wywarło ogromny wpływ na dziedzinę biologii komórek macierzystych, ponieważ ma ono ogromny potencjał w zakresie opracowywania terapii, które mogą być stosowane w leczeniu chorób zwyrodnieniowych. Chociaż poczyniono znaczne postępy w zakresie iPSC, przeszkodą, którą nadal należy pokonać, jest związane z tym ryzyko zachorowania na raka. Obecne procedury przeprogramowania mogą potencjalnie spowodować nieuregulowany wzrost komórek, co może prowadzić do raka. Dlatego potrzebne są dalsze badania, aby faktycznie wykorzystać iPSC klinicznie. Jak zawsze, dziękujemy za oglądanie!

Transcript

Indukowane pluripotencjalne komórki macierzyste, takie jak ludzkie embrionalne komórki macierzyste, mogą różnicować się w prawie każdą komórkę w organizmie i dlatego są bardzo obiecujące w dziedzinie medycyny regeneracyjnej.

Ludzkie embrionalne komórki macierzyste (hESC) są pozyskiwane z zarodków przedimplantacyjnych, podczas gdy w pełni zróżnicowane komórki somatyczne są wykorzystywane do wytwarzania indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych, które są również określane jako iPSC.

W tym filmie dowiesz się o podstawowych zasadach generowania iPSC, protokole krok po kroku indukującym pluripotencję w zróżnicowanych komórkach oraz o niektórych z wielu dalszych zastosowań i modyfikacji tego protokołu.

Zacznijmy od omówienia zasad powstawania iPSC z typów komórek somatycznych.

Zróżnicowane komórki, takie jak komórki skóry lub neurony, są tymi, których los jest przesądzony. Są zobowiązani do pełnienia określonej funkcji. Z drugiej strony, pluripotencjalne komórki macierzyste to te, których los jest nierozstrzygnięty i mogą różnicować się w dowolny typ komórek.

Proces zmiany tożsamości już zróżnicowanej komórki na stan pluripotencjalny nazywa się przeprogramowaniem komórkowym. Wiąże się to ze zmianą wzorca ekspresji genów w komórce, ponieważ liczba i rodzaje białek wytwarzanych przez komórkę odgrywają główną rolę w definiowaniu tożsamości komórki.

Jednym ze sposobów wywołania przeprogramowania komórkowego jest indukowanie ekspresji pewnych czynników transkrypcyjnych. Czynniki transkrypcyjne to białka, które wiążą się z sekwencjami regulatorowymi w genie. Niektóre z tych sekwencji nazywane są "promotorami" i dlatego promują transkrypcję genu. Kilka czynników transkrypcyjnych może wpływać na ekspresję wielu genów, co ma ogromny wpływ na tożsamość komórki.

Cztery klasyczne czynniki transkrypcyjne, które, jak wykazano, indukują pluripotencję, to Oct4, Sox2, cMyc i Klf4. Czynniki te są również znane jako czynniki Yamanaka, od nazwiska badacza, który odkrył ich efekty przeprogramowania.

Do indukowania ekspresji tych czynników transkrypcyjnych można zastosować wiele metod. Najczęstszą i najskuteczniejszą metodą jest wykorzystanie zmodyfikowanego wirusa do dostarczenia genów czynnika transkrypcyjnego do jądra, gdzie zintegrują się one z genomem.

W tej metodzie geny kodujące cztery czynniki Yamanaka są indywidualnie pakowane w różne retrowirusy i dodawane do zróżnicowanych komórek. Kiedy komórki są wystawione na działanie zmodyfikowanych wirusów, niewielka część zróżnicowanych komórek zostaje zainfekowana wszystkimi czterema wirusami przenoszącymi czynniki transkrypcyjne. Zaczynają się deróżnicować, aż do momentu powstania dużych kulistych skupisk pluripotencjalnych komórek macierzystych. Tworzenie klastrów pomaga iPSC w tworzeniu mikrośrodowiska podobnego do komórek macierzystych in vivo, a tym samym pomaga im w utrzymaniu ich pluripotencji.

Ponieważ rozumiesz już podstawowe zasady rządzące generowaniem iPSC, przejdźmy do ogólnego protokołu indukcji pluripotencji w mysich fibroblastach embrionalnych lub MEF, przy użyciu systemu transdukcji wirusa.

Przed rozpoczęciem tej procedury należy pamiętać, że wirusy mogą infekować komórki w organizmie, dlatego niezwykle ważne jest przestrzeganie wytycznych dotyczących bezpieczeństwa.

Aby rozpocząć proces transfekcji, pożywkę hodowlaną wyjmuje się z płytki zawierającej MEF-y o dużej gęstości, a komórki przemywa się roztworem buforowym. Następnie dodaje się roztwór zawierający enzym rozkładający białka, taki jak trypsyna, aby podnieść komórki z dna naczynia. Pożywkę hodowlaną dodaje się następnie do płytki, a oderwane komórki przenosi się do probówki wirówkowej.

Po odwirowaniu osad jest ponownie zawieszany w pożywce hodowlanej. Następnie komórki są zliczane, a stężenie dostosowywane tak, aby optymalna liczba komórek mogła zostać zainfekowana wirusem następnego dnia. Inkubuj komórki przez noc.

Po tym, jak komórki osiądą na nowym szalisku, stare pożywki są zastępowane świeżymi pożywkami, a zmodyfikowane wirusy zawierające pożądane czynniki transkrypcyjne są dodawane do płytki. Komórki są następnie inkubowane z wirusami przez wystarczająco długi czas, aby umożliwić infekcję. Po inkubacji pożywka zawierająca wolne wirusy jest usuwana i zastępowana świeżą pożywką z embrionalnych komórek macierzystych.

Przez 2-3 tygodnie po transformacji komórki powinny być hodowane w temperaturze 37? w inkubatorze, a podłoża hodowlane należy wymieniać codziennie.

Po tym okresie kolonie iPSC, które wyglądają podobnie do kolonii embrionalnych komórek macierzystych, powinny stać się wystarczająco duże, aby można je było zebrać. Kolonie można przenieść na świeżą płytkę zawierającą podłoże z odpowiednimi czynnikami wzrostu i pozostawić do dalszego wzrostu. Aby potwierdzić pluripotencję, część populacji komórek jest barwiona markerami pluripotencji.

Teraz, gdy już wiesz, jak generować iPSC ze zróżnicowanych komórek, przyjrzyjmy się niektórym dalszym zastosowaniom i modyfikacjom tej bardzo przydatnej metody.

Ważną cechą iPSC jest to, że można je wykorzystać do wytworzenia prawie każdej komórki w organizmie. Ten przykład pokazuje generowanie komórek mięśnia sercowego, zwanych kardiomiocytami, z iPSC. W tym celu iPSC są przenoszone na nieprzylegające płytki, które umożliwiają im tworzenie ciał embrionalnych, które są agregatami pluripotencjalnych komórek macierzystych. Ciała zarodków są hodowane w specjalistycznej pożywce zawierającej surowicę i kwas askorbinowy, co zwiększa różnicowanie serca. Pomyślne różnicowanie można łatwo zaobserwować, gdy niektóre komórki zaczynają bić.

Ponieważ iPSC mogą potencjalnie różnicować się w dowolny typ komórek, mogą również tworzyć cały organizm, jak mysz. Można to zrobić za pomocą testu zwanego komplementacją tetraploidalną. Po pierwsze, zarodek tetraploidalny, zarodek zawierający cztery zestawy chromosomów, powstaje w wyniku połączenia dwóch komórek wczesnego zarodka za pomocą pola elektrycznego. Zarodek tetraploidalny może rozwijać się do stadium blastocysty. IPSC są następnie wstrzykiwane do blastocysty, która jest następnie przeszczepiana samicy biorcy w celu zajścia w ciążę. Komórki tetraploidalne są zdolne do tworzenia struktur pozaembrionalnych, takich jak łożysko, więc zwierzęta powstałe w wyniku tej metody pochodzą wyłącznie z iPSC.

Niektórzy badacze modyfikują procedurę przeprogramowywania, aby proces identyfikacji pomyślnie przeprogramowanych komórek był bardziej wydajny. Na przykład w tym eksperymencie MEF-y ze zdolnością do ekspresji białka zielonej fluorescencji pod wpływem promotora Oct4 pomogły naukowcom łatwo zidentyfikować komórki, które nabyły pluripotencję.

Właśnie obejrzałeś film JoVE na temat generowania indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych. W tym filmie omówiono zasady stojące za tą procedurą oraz protokół krok po kroku do generowania iPSC ze zróżnicowanych komórek. Sprawdziliśmy również, w jaki sposób ta metoda może być stosowana lub modyfikowana w eksperymentach laboratoryjnych.

Odkrycie iPSC wywarło ogromny wpływ na dziedzinę biologii komórek macierzystych, ponieważ ma ono ogromny potencjał w zakresie opracowywania terapii, które mogą być stosowane w leczeniu chorób zwyrodnieniowych. Chociaż poczyniono znaczne postępy w zakresie iPSC, przeszkodą, którą nadal należy pokonać, jest związane z tym ryzyko zachorowania na raka. Obecne procedury przeprogramowania mogą potencjalnie spowodować nieuregulowany wzrost komórek, co może prowadzić do raka. Dlatego potrzebne są dalsze badania, aby faktycznie wykorzystać iPSC klinicznie. Jak zawsze, dziękujemy za oglądanie!

Explore More Videos

Indukowana pluripotencja pluripotencjalne komórki macierzyste medycyna regeneracyjna ludzkie embrionalne komórki macierzyste IPSC komórki somatyczne przeprogramowanie komórkowe ekspresja genów czynniki transkrypcyjne

Related Videos

Wprowadzenie do genetyki rozwojowej

09:06

Wprowadzenie do genetyki rozwojowej

Developmental Biology

37.9K Wyświetlenia

Wyciszanie genów za pomocą Morpholinos

08:47

Wyciszanie genów za pomocą Morpholinos

Developmental Biology

35.1K Wyświetlenia

Inżynieria genetyczna organizmów modelowych

09:36

Inżynieria genetyczna organizmów modelowych

Developmental Biology

21.8K Wyświetlenia

Wprowadzenie do molekularnej biologii rozwoju

09:27

Wprowadzenie do molekularnej biologii rozwoju

Developmental Biology

32.5K Wyświetlenia

Hodowla eksplantatów do badań rozwojowych

06:25

Hodowla eksplantatów do badań rozwojowych

Developmental Biology

24.6K Wyświetlenia

Hybrydyzacja <em>in situ</em> z pełnym montażem

08:00

Hybrydyzacja <em>in situ</em> z pełnym montażem

Developmental Biology

66.4K Wyświetlenia

Wprowadzenie do biologii komórek macierzystych

11:19

Wprowadzenie do biologii komórek macierzystych

Developmental Biology

37.6K Wyświetlenia

Hodowla i różnicowanie embrionalnych komórek macierzystych

09:52

Hodowla i różnicowanie embrionalnych komórek macierzystych

Developmental Biology

36.1K Wyświetlenia

Wprowadzenie do organogenezy

11:58

Wprowadzenie do organogenezy

Developmental Biology

36.0K Wyświetlenia

Mapowanie losu

06:58

Mapowanie losu

Developmental Biology

61.8K Wyświetlenia

Badania transplantacyjne

06:21

Badania transplantacyjne

Developmental Biology

9.0K Wyświetlenia

Wprowadzenie do starzenia się i regeneracji

09:14

Wprowadzenie do starzenia się i regeneracji

Developmental Biology

14.7K Wyświetlenia

Kwantyfikacja długości życia bezkręgowców

08:44

Kwantyfikacja długości życia bezkręgowców

Developmental Biology

6.5K Wyświetlenia

Regeneracja tkanek za pomocą somatycznych komórek macierzystych

07:06

Regeneracja tkanek za pomocą somatycznych komórek macierzystych

Developmental Biology

21.3K Wyświetlenia

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code